All physiological tests for this st

All physiological tests for this study were performed at 28 uC
using strain No.164T and cultures of B. pelovolcani DSM
46698T
, B. baltica DSM 15883T and Nitritalea halalkaliphila
DSM 46695T in parallel assays. Cultural characteristics were
tested on marine agar (DSMZ medium 123), R2A agar
(DSMZ medium 830), LB agar (DSMZ medium 381) and
nutrient agar (DSMZ medium 1) for 7 days. Colony features
were observed after 5 days under a binocular microscope
according to the method of Pelczar (1957). Exponentially
growing bacterial cultures were observed with an optical
microscope (AxioScope A1; Zeiss) with a 61000 magnification
and phase-contrast illumination. Photomicrographs of
bacterial cells of strain No.164T grown in marine broth after
3 days were taken with a field-emission scanning electron
microscope (FE-SEM Merlin; Zeiss). The Gram reaction was
performed using the KOH test described by Gregersen
(1978). Motility was determined on wet mounts under
phase-contrast microscopy (6400 magnification). Growth
was assessed at 10–55 uC (in increments of 5 uC), pH values
from pH 5.0 to 13.0 (in increments of 1.0 pH unit) and 0, 1–
15 % (w/v) NaCl (in increments of 2 units). Biochemical
characteristics such as hydrolysis of casein, xanthine, tyrosine,
starch and DNA and sensitivity to different antibiotics were
determined by previously described methods (Smibert &
Krieg, 1994). Anaerobic growth was checked using the
Anaerocult system (Merck) on marine agar. For the detection
of flexirubin-type pigments, bacterial cell mass was
exposed to a 20 % (w/v) KOH solution, as described by
Reichenbach (1981); this was then examined for an eventual
colour shift. Cellular pigments were extracted with acetone/
methanol (7 : 2, v/v) (Arun et al., 2009) from cultures grown
on marine agar. Absorption spectra were determined with
a scanning UV/visible spectrophotometer (BioMATE 6) at
350–700 nm. Strains were additionally characterized using
API 20 NE and API ZYM (bioMe´rieux) identification
systems according to the manufacturer’s instructions.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การทดสอบทางสรีรวิทยาทั้งหมดสำหรับการศึกษานี้ดำเนินการที่ 28 uCใช้สายพันธุ์ No.164T และวัฒนธรรมของ B. pelovolcani DSM46698T, DSM B. baltica 15883T และ Nitritalea halalkaliphilaDSM 46695T assays ขนาน มีลักษณะทางวัฒนธรรมทดสอบบนวุ้นทะเล (DSMZ กลาง 123), อาหารเลี้ยงเชื้อ R2A(DSMZ กลาง 830), วุ้นปอนด์ (DSMZ กลาง 381) และวุ้นสารอาหาร (DSMZ กลาง 1) 7 วัน ลักษณะการทำงานของอาณานิคมสังเกตได้หลังจาก 5 วันภายใต้กล้องจุลทรรศน์ส่องทางไกลตามวิธีการของ Pelczar (1957) ชี้แจงแบคทีเรียเติบโตวัฒนธรรมถูกตั้งข้อสังเกต ด้วยการออปติคอลกล้องจุลทรรศน์ (AxioScope A1 Zeiss) กับขยาย 61000และสว่างคมชัดระยะ Photomicrographs ของเซลล์แบคทีเรียของสายพันธุ์ปลูกในซุปทะเลหลัง No.164Tถ่าย 3 วัน ด้วยอิเล็กตรอนเป็นแกนการปล่อยกล้องจุลทรรศน์ (เมอร์ลิน FE SEM Zeiss) ปฏิกิริยากรัมดำเนินการโดยใช้การทดสอบเกาะโดย Gregersen(1978) การเคลื่อนไหวถูกกำหนดบนม้าเปียกภายใต้กล้องจุลทรรศน์เฟสคอนทราสต์ (6400 ขยาย) เจริญเติบโตถูกประเมินว่า uC 10 – 55 (ที่เพิ่มขึ้น 5 uC), ค่า pHจากค่า pH 5.0 13.0 (ในทีละหน่วย pH 1.0) และ 0, 1 –15% (w/v) NaCl (ที่เพิ่มขึ้น 2 หน่วย) ทางชีวเคมีลักษณะเช่นการย่อยสลายของเคซีน xanthine ไทโร ซีนแป้ง และดีเอ็นเอ และไวต่อยาปฏิชีวนะแตกต่างกันกำหนด โดยวิธีการอธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Smibert &Krieg, 1994) ไม่ใช้ออกซิเจนในการเจริญเติบโตถูกตรวจสอบโดยใช้การระบบ Anaerocult (Merck) บนวุ้นทะเล สำหรับการตรวจสอบของเม็ดสีชนิด flexirubin แบคทีเรียเซลล์มวลคือสัมผัสกับ 20% (w/v) แก้ปัญหาเกาะ ตามที่อธิบายไว้โดยReichenbach (1981); นี้แล้วมีการตรวจสอบสำหรับที่สุดกะสี เซลล์เม็ดสีที่สกัด ด้วยอะซิโตน /เมทานอล (7:2, v/v) (อรุณ et al. 2009) จากวัฒนธรรมที่เติบโตขึ้นบนวุ้นทะเล สเปกตรัมการดูดซึมถูกกำหนดด้วยเป็นการสแกน UV เห็นสเปค (BioMATE 6) ที่350 – 700 nm สายพันธุ์นอกจากนี้มีลักษณะการใช้API 20 NE และรหัส ZYM API (bioMe´rieux)ระบบตามคำแนะนำของผู้ผลิต

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การทดสอบทางสรีรวิทยาสำหรับการวิจัยดำเนินการที่ 28 เป็นต้นการใช้ no.164t สายพันธุ์และวัฒนธรรมของ pelovolcani DSM B46698tบี และ halalkaliphila nitritalea DSM 15883t บัลติก้าในส่วน 46695t ) ขนาน ลักษณะทางวัฒนธรรมคือทดสอบในทะเล ( dsmz ( 123 ) r2a วุ้น( dsmz ( 830 ) ปอนด์ ( dsmz ( 381 )NUMB3RS ( dsmz ( 1 ) เป็นเวลา 7 วัน ลักษณะโคโลนีพบว่าหลังจาก 5 วันภายใต้กล้องจุลทรรศน์กล้องส่องทางไกลตามวิธีการของ pelczar ( 1957 ) ชี้แจงปลูกวัฒนธรรมแบคทีเรียพบด้วยแสงกล้องจุลทรรศน์ ( axioscope A1 ; Zeiss 50 ) ด้วยแว่นขยายส่องสว่างและความคมชัดที่ระยะ photomicrographs ของเซลล์แบคทีเรียสายพันธุ์ที่ปลูกในน้ำซุปหลังจาก no.164t มารีน3 วันกับเขตข้อมูลการถ่ายด้วยกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนกล้องจุลทรรศน์ ( fe-sem เมอร์ลิน ; Zeiss ) กรัมปฏิกิริยา คือเคยใช้เกาะทดสอบอธิบายโดยเกรเกอร์เซิ่น( 1978 ) การเคลื่อนที่ถูกกำหนดบน mounts เปียกภายใต้กล้องจุลทรรศน์ตรงกันข้าม ( 6400 ( ขยาย ) การเจริญเติบโตประเมินที่ 10 – 55 UC ( ในการเพิ่มขึ้นของค่า pH 5 UC )จาก pH 5.0 ก็ดี ( ในการเพิ่มขึ้นของ 1.0 หน่วย pH ) และ 1 – 015 % ( w / v ) NaCl ( เพิ่มขึ้นครั้งละ 2 หน่วย ) ชีวเคมีลักษณะ เช่น การย่อยสลายของซีนเคซีน ,แป้งและดีเอ็นเอและความไวต่อยาปฏิชีวนะต่าง ๆกำหนดโดยอธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( smibert & วิธีการครีก , 1994 ) ระบบการตรวจสอบโดยใช้ระบบ anaerocult ( Merck ) ในทะเลวุ้น สำหรับการตรวจสอบของ flexirubin ชนิดผงมวลเซลล์แบคทีเรียคือเปิดเผยถึง 20 % ( w / v ) เกาะโซลูชั่นตามที่อธิบายไว้โดยไรเคนบาค ( 1981 ) ; นี้แล้วตรวจสอบในที่สุดเปลี่ยนสี สีถูกสกัดด้วยอะซีโตน / เซลล์เมทานอล ( 7 : 2 v / v ) ( อรุณ et al . , 2009 ) จากวัฒนธรรมที่โตในทะเลวุ้น การดูดกลืนรังสี เป็น กับสแกน / มองเห็น UV Spectrophotometer ( ไบโอเมท 6 ) ใน350 - 700 nm . สายพันธุ์ นอกจากนี้ลักษณะ โดยใช้และ API ( API 20 Ne zym ระบบนิเวศใหม่ rieux ) ระบุระบบตามคำแนะนำของผู้ผลิต