Content1. Scope 2. Definitions and

Content

1. Scope
2. Definitions and abbreviations
3. Personnel qualifications
3.1 Medical fitness
3.2 Education and training
4. Procedure
4.1 Principle
4.2 Samples
4.3 Equipment and materials
4.4 Reagents and solutions
4.5 Detailed procedure
4.6 Result and interpretation
4.7 Quality control
4.8 Waste management
5. Related documents

Compiled by Examined by Approved by Replaced New version
Name Code: Code:
Date
Signature
Laboratory area: No of copies: Reason for change:

1. Scope
This SOP describes the procedure for the culturing test that detects the capacity for bacterial growth on solid culture media containing p-nitrobenzoate, which is used for the identification of Mycobacterium tuberculosis.
Because suspensions with high concentrations of viable, infectious bacteria are handled, strict compliance with safety and protection measures is mandatory. The procedure must be carried out in a laboratory meeting the WHO standards for biosafety level 3 with access restricted to authorized personnel only.
2. Definitions and abbreviations
BSC: biological safety cabinet
DST: drug susceptibility testing
LJ: Löwenstein–Jensen
PNB: p-nitrobenzoate
3. Personnel qualifications
3.1 Medical fitness
In accordance with national laws and practices, arrangements should be made for appropriate health surveillance of TB laboratory workers:
 before enrolment in the TB laboratory;
 at regular intervals thereafter, annually or bi-annually;
 after any biohazard incident;
 at the onset of TB symptoms.
Ideally, individual medical records shall be kept for up to 10 years following the end of occupational exposure.
Laboratory workers should be educated about the symptoms of TB and provided with ready access to free medical care if symptoms arise.
Confidential HIV counselling and testing should be offered to laboratory workers. Options for reassignment of HIV-positive or immuno-suppressed individuals away from the high-risk areas of the TB laboratory should be considered.
All cases of disease or death identified in accordance with national laws and/or practice as resulting from occupational exposure to biological agents shall be notified to the competent authority.
3.2 Education and training
Education and training must be given on the following topics:
 potential risks to health (symptoms of TB disease and transmission);
 precautions to be taken to minimize aerosol formation and prevent exposure;
 hygiene requirements;
 wearing and use of protective equipment and clothing;
 handling of potentially infectious materials;
 laboratory design, including airflow conditions;
 use of biological safety cabinets (operation, identification of malfunctions, maintenance);
 use of autoclaves, incubators (operation, identification of malfunctions, maintenance);
 prevention of incidents and steps to be taken by workers in the case of incidents (biohazard incidents, chemical, electrical and fire hazards);
 good laboratory practice and good microbiological techniques;
 organization of work flow;
 procedures;
 waste management;
 importance of laboratory results for patient management;
 importance of laboratory results for the national TB programme.
The training shall be:
 given before a staff member takes up his/her post;
 strictly supervised;
 adapted to take account of new or changed conditions; and
 repeated periodically, preferably every year.
4. Procedure
4.1 Principle
Inability to grow in the presence of PNB is one of the key elements in the phenotypic differentiation of tubercle bacilli from other mycobacterial species and is part of the identification process for M. tuberculosis.
M. tuberculosis and other tubercle bacilli will not grow on culture medium containing PNB, 500 µg/ml; other mycobacterial species, with the exception of M. gastri and some strains of M. kansasii and M. marinum, will grow in the presence of PNB.
The test must be carried out on pure cultures otherwise it will yield false results.
4.2 Samples
Pure cultures of acid-fast bacilli grown on solid media, age 21–28 days, with more than 50 colonies.
4.3 Equipment and materials
BSC, class I or II, annually certified
Incubator
Autoclave
Reference strains of M. tuberculosis (or a previously identified strain) and a reference strain of M. terrae (saprophytic strain).
4.4 Reagents and solutions
4.4.1 PNB solution, 500 µg/ml
Weigh 250 mg PNB. Dissolve in 10 ml propylene glycol while heating in a water-bath at 37°C.
4.4.2 Löwenstein–Jensen medium with PNB
Add 10 ml PNB solution (500 μg/ml) to 490 ml of LJ medium and mix well before dispensing.
Coagulate the medium by inspissation as for plain LJ medium (see relevant SOP).
4.5 Detailed procedure
The entire procedure must be carried out in a biological safety cabinet.
• Inoculate a slope of LJ medium containing PNB and a slope of LJ medium with no PNB (control) with bacterial suspension adjusted to McFarland turbidity standard No. 1.
• For convenience, the PNB tube is added to drug-containing tubes and inoculated while DST is carried out. The results of the PNB test and of DST are therefore available at the same time.
• Incubate at 37 °C and compare growth on both slopes after 28 days of incubation.
4.6 Result and interpretation
• Abundant growth on both slopes – mycobacterial strain other than tubercle bacilli.
• Abundant growth on the control tube and little or no growth on PNB medium – M. tuberculosis complex strain.
• No growth on either slope – non-interpretable result, test to be repeated.
4.7 Quality control
4.7.1 Morphology of colonies
Observe the morphology of colonies on solid medium to check culture purity.
4.7.2 Positive control
No growth on PNB medium – carry out the test with a previously identified M. tuberculosis strain or a reference strain from a culture collection.
4.7.3 Negative control
Growth on PNB medium – carry out the test with a reference strain such as M. terrae (saprophytic strain) from a culture collection.
4.8 Waste management
Autoclave all contaminated materials.
5. Related documents
Kent PT, Kubica GP. Public health mycobacteriology: a guide for the level III laboratory. Atlanta, GA, United States Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control, 1985.
Laboratory services in tuberculosis control. Part III: Culture. Geneva, World Health Organization, 1998.
Vincent V, Gutiérrez MC. Mycobacterium: laboratory characteristics of slowly growing mycobacteria. In: Manual of clinical microbiology. Washington, DC, American Society for Microbiology, 2007:573–588.

Content

1. Scope 
2. Definitions and abbreviations
3. Personnel qualifications
3.1 Medical fitness
3.2 Education and training
4. Procedure
4.1 Principle
4.2 Samples 
4.3 Equipment and materials
4.4 Reagents and solutions
4.5 Detailed procedure
4.6 Result and interpretation
4.7 Quality control
4.8 Waste management
5. Related documents

Compiled by Examined by Approved by Replaced New version
Name Code: Code:
Date 
Signature 
Laboratory area: No of copies: Reason for change:

1. Scope
This SOP describes the procedure for the culturing test that detects the capacity for bacterial growth on solid culture media containing p-nitrobenzoate, which is used for the identification of Mycobacterium tuberculosis.
Because suspensions with high concentrations of viable, infectious bacteria are handled, strict compliance with safety and protection measures is mandatory. The procedure must be carried out in a laboratory meeting the WHO standards for biosafety level 3 with access restricted to authorized personnel only.
2. Definitions and abbreviations
BSC: biological safety cabinet
DST: drug susceptibility testing
LJ: Löwenstein–Jensen
PNB: p-nitrobenzoate
3. Personnel qualifications 
3.1 Medical fitness
In accordance with national laws and practices, arrangements should be made for appropriate health surveillance of TB laboratory workers:
 before enrolment in the TB laboratory;
 at regular intervals thereafter, annually or bi-annually;
 after any biohazard incident;
 at the onset of TB symptoms.
Ideally, individual medical records shall be kept for up to 10 years following the end of occupational exposure.
Laboratory workers should be educated about the symptoms of TB and provided with ready access to free medical care if symptoms arise.
Confidential HIV counselling and testing should be offered to laboratory workers. Options for reassignment of HIV-positive or immuno-suppressed individuals away from the high-risk areas of the TB laboratory should be considered.
All cases of disease or death identified in accordance with national laws and/or practice as resulting from occupational exposure to biological agents shall be notified to the competent authority.
3.2 Education and training
Education and training must be given on the following topics:
 potential risks to health (symptoms of TB disease and transmission);
 precautions to be taken to minimize aerosol formation and prevent exposure;
 hygiene requirements;
 wearing and use of protective equipment and clothing;
 handling of potentially infectious materials;
 laboratory design, including airflow conditions;
 use of biological safety cabinets (operation, identification of malfunctions, maintenance);
 use of autoclaves, incubators (operation, identification of malfunctions, maintenance);
 prevention of incidents and steps to be taken by workers in the case of incidents (biohazard incidents, chemical, electrical and fire hazards);
 good laboratory practice and good microbiological techniques;
 organization of work flow;
 procedures;
 waste management;
 importance of laboratory results for patient management;
 importance of laboratory results for the national TB programme.
The training shall be:
 given before a staff member takes up his/her post;
 strictly supervised;
 adapted to take account of new or changed conditions; and
 repeated periodically, preferably every year.
4. Procedure
4.1 Principle
Inability to grow in the presence of PNB is one of the key elements in the phenotypic differentiation of tubercle bacilli from other mycobacterial species and is part of the identification process for M. tuberculosis.
M. tuberculosis and other tubercle bacilli will not grow on culture medium containing PNB, 500 µg/ml; other mycobacterial species, with the exception of M. gastri and some strains of M. kansasii and M. marinum, will grow in the presence of PNB.
The test must be carried out on pure cultures otherwise it will yield false results.
4.2 Samples
Pure cultures of acid-fast bacilli grown on solid media, age 21–28 days, with more than 50 colonies.
4.3 Equipment and materials
BSC, class I or II, annually certified
Incubator
Autoclave
Reference strains of M. tuberculosis (or a previously identified strain) and a reference strain of M. terrae (saprophytic strain).
4.4 Reagents and solutions
4.4.1 PNB solution, 500 µg/ml
Weigh 250 mg PNB. Dissolve in 10 ml propylene glycol while heating in a water-bath at 37°C.
4.4.2 Löwenstein–Jensen medium with PNB
Add 10 ml PNB solution (500 μg/ml) to 490 ml of LJ medium and mix well before dispensing.
Coagulate the medium by inspissation as for plain LJ medium (see relevant SOP).
 4.5 Detailed procedure
The entire procedure must be carried out in a biological safety cabinet.
• Inoculate a slope of LJ medium containing PNB and a slope of LJ medium with no PNB (control) with bacterial suspension adjusted to McFarland turbidity standard No. 1.
• For convenience, the PNB tube is added to drug-containing tubes and inoculated while DST is carried out. The results of the PNB test and of DST are therefore available at the same time. 
• Incubate at 37 °C and compare growth on both slopes after 28 days of incubation.
4.6 Result and interpretation
• Abundant growth on both slopes – mycobacterial strain other than tubercle bacilli.
• Abundant growth on the control tube and little or no growth on PNB medium – M. tuberculosis complex strain.
• No growth on either slope – non-interpretable result, test to be repeated.
4.7 Quality control
4.7.1 Morphology of colonies 
Observe the morphology of colonies on solid medium to check culture purity.
4.7.2 Positive control 
No growth on PNB medium – carry out the test with a previously identified M. tuberculosis strain or a reference strain from a culture collection.
4.7.3 Negative control 
Growth on PNB medium – carry out the test with a reference strain such as M. terrae (saprophytic strain) from a culture collection.
4.8 Waste management
Autoclave all contaminated materials. 
5. Related documents
Kent PT, Kubica GP. Public health mycobacteriology: a guide for the level III laboratory. Atlanta, GA, United States Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control, 1985.
Laboratory services in tuberculosis control. Part III: Culture. Geneva, World Health Organization, 1998.
Vincent V, Gutiérrez MC. Mycobacterium: laboratory characteristics of slowly growing mycobacteria. In: Manual of clinical microbiology. Washington, DC, American Society for Microbiology, 2007:573–588.

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

เนื้อหา1. ขอบเขต 2. คำนิยามและคำย่อ3. บุคลากรคุณสมบัติ3.1 แพทย์ฟิตเนส3.2 ศึกษาและฝึกอบรม4 ขั้นตอน4.1 หลัก4.2 ตัวอย่าง 4.3 อุปกรณ์และวัสดุ4.4 reagents และโซลูชั่น4.5 ขั้นตอนที่รายละเอียด4.6 ผลและตีความ4.7 การควบคุมคุณภาพ4.8 การจัดการขยะ5. เอกสาร รวบรวม โดย Examined โดยอนุมัติ โดยรุ่นใหม่แทนชื่อรหัส: รหัส:วัน ลายเซ็น ที่ตั้งห้องปฏิบัติการ: จำนวนสำเนา: เหตุผลการเปลี่ยนแปลง:1. ขอบเขตSOP นี้อธิบายขั้นตอนการทดสอบ culturing ที่ตรวจพบว่ากำลังการผลิตสำหรับการเจริญเติบโตของแบคทีเรียบนสื่อวัฒนธรรมแข็งประกอบด้วย p-nitrobenzoate ซึ่งใช้สำหรับการระบุของมัยโคแบคทีเรียวัณโรคเนื่องจากมีจัดการบริการกับความเข้มข้นสูงของแบคทีเรียทำงานได้ ติดเชื้อ ปฏิบัติตามกฎระเบียบที่เข้มงวดกับมาตรการความปลอดภัยและการป้องกันเป็นข้อบังคับ ขั้นตอนต้องทำในห้องปฏิบัติการประชุมมาตรฐาน biosafety ระดับ 3 มีการเข้าถึงที่จำกัดเฉพาะบุคลากรที่ได้รับอนุญาต2. คำนิยามและคำย่อบีเอสซี: ความปลอดภัยทางชีวภาพคณะรัฐมนตรีDST: ยาภูมิไวรับทดสอบLJ: Löwenstein – เจนเซนพี: p-nitrobenzoate3. บุคลากรคุณสมบัติ 3.1 แพทย์ฟิตเนสกฎหมายแห่งชาติและแนวทางปฏิบัติ จัดควรมีการเฝ้าระวังสุขภาพที่เหมาะสมของ TB ห้องปฏิบัติงาน:ก่อนเล่าเรียนในห้องปฏิบัติการ TBอย่างสม่ำเสมอหลังจากนั้น ทุกปี หรือสอง ปีหลังจากแก้ไขปัญหา biohazardอย่างอาการ TBดาว แพทย์แต่ละระเบียนจะเก็บถึง 10 ปีต่อไปนี้จุดสิ้นสุดของอุบัติเหตุห้องปฏิบัติการผู้ปฏิบัติงานควรศึกษาเกี่ยวกับโรค TB และให้พร้อมเข้าถึงฟรีแพทย์ถ้าอาการเกิดขึ้นเอชไอวีที่เป็นความลับให้คำปรึกษา และทดสอบควรได้รับการปฏิบัติงาน ควรพิจารณาตัวเลือกสำหรับศัลยกรรมแปลงของเชื้อเอชไอวีบวก หรือ ถูกระงับ immuno บุคคลจากพื้นที่เป็นอิก TB ห้องปฏิบัติการกรณีทั้งหมดของโรคหรือตายที่ระบุตามกฎหมายแห่งชาติหรือการปฏิบัติเป็นผลจากอุบัติเหตุกับตัวแทนทางชีวภาพจะได้รับการแจ้งให้ผู้เชี่ยวชาญ3.2 ศึกษาและฝึกอบรมต้องได้รับการศึกษาและการฝึกอบรมในหัวข้อต่อไปนี้:เสี่ยงสุขภาพ (อาการของโรค TB และส่ง);ข้อควรระวังจะต้องดำเนิน การลดการก่อตัวสเปรย์ป้องกันแสงอนามัยความสวมใส่และการใช้อุปกรณ์ป้องกันและเสื้อผ้าการจัดการวัสดุที่อาจติดเชื้อห้องปฏิบัติการออกแบบ รวมทั้งสภาพการไหลของอากาศใช้ตู้ความปลอดภัยทางชีวภาพ (การดำเนินงาน ระบุความบกพร่อง การบำรุงรักษา);ใช้ autoclaves ผลิตและ (การดำเนินงาน ระบุความบกพร่อง การบำรุงรักษา);ป้องกันปัญหาและขั้นตอนจะต้องดำเนินการ โดยผู้ปฏิบัติงานในกรณีของเหตุการณ์ (เหตุการณ์ใน biohazard เคมี ไฟฟ้า และไฟอันตราย);ห้องปฏิบัติฝึกและเทคนิคทางจุลชีววิทยาดีจัดขั้นตอนการทำงานกระบวนจัดการเสียความสำคัญของผลการปฏิบัติสำหรับการจัดการผู้ป่วยความสำคัญของการปฏิบัติผลลัพธ์สำหรับโปรแกรม TB ชาติการฝึกจะต้อง:ให้ก่อนเจ้าหน้าที่จะขึ้นลงเขา/เธอแบบมีผู้สอนอย่างเคร่งครัดปรับใช้บัญชีใหม่ หรือเปลี่ยนแปลงเงื่อนไข และซ้ำ เด่นกว่าทุกปี4 ขั้นตอน4.1 หลักไม่สามารถเติบโตในต่อหน้าของพีเป็นองค์ประกอบสำคัญในการสร้างความแตกต่างไทป์ของ bacilli นอยด์จากสปีชีส์อื่น mycobacterial อย่างใดอย่างหนึ่ง และเป็นส่วนหนึ่งของกระบวนการรหัสสำหรับวัณโรคม. วัณโรคและ bacilli นอยด์อื่น ๆ จะไม่เติบโตในวัฒนธรรมสื่อที่ประกอบด้วยพี 500 ไมโครกรัมเป็น เครื่อง/ml ชนิดอื่น ๆ mycobacterial ยกเว้น M. gastri และบางสายพันธุ์ M. kansasii และ M. marinum จะเติบโตในต่อหน้าของพีต้องทำการทดสอบออกในวัฒนธรรมบริสุทธิ์มิฉะนั้น มันจะผลลัพธ์เท็จ4.2 ตัวอย่างวัฒนธรรมบริสุทธิ์ของ acid-fast bacilli พัฒนาสื่อแข็ง อายุ 21-28 วัน กับอาณานิคมมากกว่า 504.3 อุปกรณ์และวัสดุบีเอสซี คลาฉันหรือ II ได้รับการรับรองเป็นรายปีบ่มเพาะวิสาหกิจด้วยอ้างอิงถึงสายพันธุ์ของม.วัณโรคหรือต้องใช้ระบุก่อนหน้านี้) และต้องใช้การอ้างอิงของ terrae M. (saprophytic ต้องใช้)4.4 reagents และโซลูชั่น4.4.1 พีโซลูชั่น ml 500 ไมโครกรัมเป็นเครื่องน้ำหนัก 250 มิลลิกรัมพี ละลายใน 10 ml glycol โพรพิลีนในขณะที่ความร้อนในห้องน้ำที่ 37 องศาเซลเซียส4.4.2 Löwenstein – เจนกลางกับพีเพิ่มโซลูชั่นพี 10 ml (500 μg/ml) 490 ml LJ กลางและผสมดีก่อนมหาศาลจับตัวเป็นสื่อ โดย inspissation ส่วนกลาง LJ ธรรมดา (ดู SOP ที่เกี่ยวข้อง) 4.5 ขั้นตอนที่รายละเอียดกระบวนการทั้งหมดต้องทำได้ในความปลอดภัยทางชีวภาพคณะรัฐมนตรี•ฉีดความชันปานกลาง LJ ประกอบด้วยพีและความชันปานกลาง LJ มีไม่พี (ควบคุม) กับเชื้อแบคทีเรียระงับปรับปรุง McFarland ความขุ่นมาตรฐานหมายเลข 1•สะดวก ท่อพีเพิ่มยาที่ประกอบด้วยท่อ และ inoculated ในขณะดำเนินการ DST ผล ของการทดสอบพี และ DST มีดังนั้นในเวลาเดียวกัน •ฟักที่ 37 ° C และเปรียบเทียบการเจริญเติบโตบนลาดทั้งสองหลังจาก 28 วันของคณะทันตแพทยศาสตร์4.6 ผลและตีความ•เจริญเติบโตอุดมสมบูรณ์บนทั้งลาด – mycobacterial สายพันธุ์อื่นที่ไม่ใช่ปุ่ม bacilli•บนหลอดควบคุมการเจริญเติบโตอุดมสมบูรณ์และเจริญเติบโตน้อย หรือไม่มีในพีกลาง – ม.วัณโรคซับซ้อนต้องใช้•ไม่เจริญเติบโตบนความชันใด – ผลลัพธ์ไม่ใช่ interpretable ทดสอบการ4.7 การควบคุมคุณภาพ4.7.1 สัณฐานวิทยาของอาณานิคม สังเกตสัณฐานวิทยาของอาณานิคมบนกลางทึบเพื่อตรวจสอบความบริสุทธิ์ของวัฒนธรรม4.7.2 บวกควบคุม ไม่เจริญเติบโตบนพีกลาง – ดำเนินการทดสอบต้องใช้วัณโรคม.ระบุก่อนหน้านี้หรือต้องใช้อ้างอิงจากกลุ่มวัฒนธรรม4.7.3 ลบควบคุม เจริญเติบโตบนพีกลาง – ดำเนินการทดสอบต้องใช้อ้างอิงเช่น terrae M. (saprophytic ต้องใช้) จากกลุ่มวัฒนธรรม4.8 การจัดการขยะวัสดุปนเปื้อนของด้วยทั้งหมด 5. เอกสารPT เคนท์ Kubica GP Mycobacteriology สาธารณสุข: คู่มือสำหรับห้องปฏิบัติการ III ระดับ แอตแลนตา GA สหรัฐอเมริกากรมของสุขภาพและฝ่ายบริการ ศูนย์ควบคุมและป้องกันโรค 1985บริการห้องปฏิบัติการในการควบคุมวัณโรค ส่วนที่ III: วัฒนธรรมการ เจนีวา องค์การอนามัยโลก 1998Vincent V, Gutiérrez MC มัยโคแบคทีเรีย: ปฏิบัติลักษณะของ mycobacteria การเจริญเติบโตช้า ใน: คู่มือจุลชีววิทยาทางคลินิก แห่งสหรัฐอเมริกาวอชิงตัน DC จุลชีววิทยา 2007:573-588

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

เนื้อหา1 ขอบเขต2 คำนิยามและตัวย่อที่3 คุณสมบัติบุคลากร3.1 การออกกำลังกายการแพทย์3.2 การศึกษาและการฝึกอบรม4 ขั้นตอน4.1 หลักการ4.2 ตัวอย่าง4.3 อุปกรณ์และวัสดุ4.4 รีเอเจนต์และการแก้ปัญหา4.5 ขั้นตอนโดยละเอียด4.6 ผลและการตีความ4.7 การควบคุมคุณภาพ4.8 การจัดการของเสีย5 เอกสารที่เกี่ยวข้องรวบรวมโดยการตรวจสอบโดยการอนุมัติโดยเวอร์ชั่นใหม่แทนที่ชื่อรหัส: รหัสสินค้า: วันที่ลายเซ็นพื้นที่ของห้องปฏิบัติการ: ไม่มีสำเนา: เหตุผลในการเปลี่ยนแปลง: 1 ขอบเขตSOP นี้อธิบายขั้นตอนการทดสอบการเพาะเลี้ยงที่ตรวจพบความสามารถในการเจริญเติบโตของแบคทีเรียบนสื่อวัฒนธรรมที่เป็นของแข็งที่มี P-nitrobenzoate ซึ่งถูกนำมาใช้เพื่อระบุตัวตนของเชื้อวัณโรค. เพราะสารแขวนลอยที่มีความเข้มข้นสูงของการทำงานได้ติดเชื้อแบคทีเรียที่ได้รับการจัดการที่เข้มงวด การปฏิบัติตามมาตรการด้านความปลอดภัยและการป้องกันมีผลบังคับใช้ ขั้นตอนที่จะต้องดำเนินการในการประชุมห้องปฏิบัติการมาตรฐาน WHO ในการความปลอดภัยทางชีวภาพระดับ 3 ที่มีการ จำกัด การเข้าถึงบุคลากรที่ได้รับอนุญาตเท่านั้น. 2 ความหมายและตัวย่อBSC: ตู้ความปลอดภัยทางชีวภาพDST: การทดสอบความไวต่อยาเสพติดLJ: Löwensteinเซ่นPNB: p-nitrobenzoate 3 คุณสมบัติบุคลากร3.1 การออกกำลังกายการแพทย์ตามกฎหมายของประเทศและการปฏิบัติ, การจัดควรจะทำสำหรับการเฝ้าระวังสุขภาพที่เหมาะสมของคนงานห้องปฏิบัติการ TB: ก่อนที่จะลงทะเบียนเรียนในห้องปฏิบัติการ TB; ในช่วงปกติหลังจากนั้นเป็นประจำทุกปีหรือสองปี; หลังจากเชื้อใด ๆ เหตุการณ์ที่เกิดขึ้น; . ที่มีอาการวัณโรคจะเป็นการดีที่บันทึกทางการแพทย์แต่ละคนจะได้รับการเก็บรักษาไว้ได้นานถึง 10 ปีหลังจากการสิ้นสุดของการเปิดรับการประกอบอาชีพ. คนงานห้องปฏิบัติการควรจะศึกษาเกี่ยวกับอาการของวัณโรคและให้กับพร้อมที่จะเข้าถึงการรักษาพยาบาลฟรีถ้า อาการที่เกิดขึ้น. การให้คำปรึกษาที่เป็นความลับเอชไอวีและการทดสอบควรจะนำเสนอให้กับคนงานในห้องปฏิบัติการ ตัวเลือกสำหรับการโอนสิทธิของบุคคลที่ติดเชื้อ HIV หรือภูมิคุ้มกันปราบปรามห่างจากพื้นที่ที่มีความเสี่ยงสูงของห้องปฏิบัติการวัณโรคควรได้รับการพิจารณา. ทุกกรณีของโรคหรือความตายที่ระบุไว้ในสอดคล้องกับกฎหมายของประเทศและ / หรือการปฏิบัติที่เป็นผลจากการสัมผัสอาชีพเพื่อชีวภาพ ตัวแทนจะต้องแจ้งให้เจ้าหน้าที่ผู้มีอำนาจ. 3.2 การศึกษาและการฝึกอบรมการศึกษาและการฝึกอบรมจะต้องได้รับในหัวข้อต่อไปนี้: ความเสี่ยงที่อาจเกิดขึ้นต่อสุขภาพ (อาการของโรควัณโรคและการส่ง); ข้อควรระวังจะต้องดำเนินการเพื่อลดการก่อตัวของละอองและป้องกันการสัมผัส ; ความต้องการสุขอนามัย; การสวมใส่และการใช้อุปกรณ์ป้องกันและเสื้อผ้า; การจัดการของวัสดุที่อาจติดเชื้อ; การออกแบบห้องปฏิบัติการรวมทั้งสภาพการไหลของอากาศ; การใช้งานของตู้ความปลอดภัยทางชีวภาพ (การทำงาน, การระบุความผิดปกติของการบำรุงรักษา); การใช้หม้อต้ม , ตู้อบ (การทำงาน, การระบุความผิดปกติของการบำรุงรักษา); การป้องกันปัญหาและขั้นตอนที่จะต้องดำเนินการโดยคนงานในกรณีของเหตุการณ์ (เหตุการณ์เชื้อสารเคมีอันตรายจากไฟฟ้าและไฟ); การปฏิบัติในห้องปฏิบัติการที่ดีและเทคนิคทางจุลชีววิทยาที่ดี องค์กรของกระบวนการทำงาน; ขั้นตอน; การจัดการของเสีย; ความสำคัญของผลการตรวจทางห้องปฏิบัติการสำหรับการจัดการผู้ป่วย. ความสำคัญของผลการตรวจทางห้องปฏิบัติการสำหรับโปรแกรมวัณโรคแห่งชาติการฝึกอบรมจะได้รับ: รับก่อนพนักงานจะขึ้น / เธอโพสต์ของเขา; ภายใต้การดูแลอย่างเคร่งครัด; ปรับให้คำนึงถึงเงื่อนไขใหม่หรือมีการเปลี่ยนแปลง; และซ้ำแล้วซ้ำอีกเป็นระยะ ๆ โดยเฉพาะอย่างยิ่งทุกปี. 4 ขั้นตอน4.1 หลักการไม่สามารถที่จะเจริญเติบโตได้ในการแสดงตนของ PNB เป็นหนึ่งในองค์ประกอบที่สำคัญในการสร้างความแตกต่างฟีโนไทป์ของแบคทีเรียตุ่มจากสายพันธุ์แบคทีเรียอื่น ๆ และเป็นส่วนหนึ่งของการระบุสำหรับวัณโรค. M. วัณโรคและแบคทีเรียตุ่มอื่น ๆ จะไม่เติบโตในอาหารเลี้ยงเชื้อที่มี PNB 500 ไมโครกรัม / มิลลิลิตร; สายพันธุ์แบคทีเรียอื่น ๆ ที่มีข้อยกเว้นของ M. gastri และบางสายพันธุ์ M. kansasii และเอ็ม Marinum จะเติบโตในที่ที่มี PNB. การทดสอบจะต้องดำเนินการในวัฒนธรรมบริสุทธิ์มิฉะนั้นมันจะให้ผลลัพธ์ที่ผิดพลาด. 4.2 ตัวอย่างบริสุทธิ์ วัฒนธรรมของแบคทีเรียกรดอย่างรวดเร็วที่ปลูกในสื่อที่เป็นของแข็งอายุ 21-28 วันมีมากกว่า 50 อาณานิคม. 4.3 อุปกรณ์และวัสดุBSC ชั้น I หรือ II ได้รับการรับรองเป็นประจำทุกปีศูนย์บ่มเพาะAutoclave สายพันธุ์อ้างอิงของเชื้อวัณโรค (หรือสายพันธุ์ที่ระบุก่อนหน้านี้ ) และสายพันธุ์อ้างอิง M. แผ่นดิน (สายพันธุ์พืชกินซาก). 4.4 รีเอเจนต์และการแก้ปัญหาการแก้ปัญหา 4.4.1 PNB 500 ไมโครกรัม / มลชั่งน้ำหนัก 250 มิลลิกรัม PNB ละลายใน 10 ml โพรพิลีนไกลคอลในขณะที่ความร้อนในน้ำอาบน้ำที่อุณหภูมิ 37 ° C. 4.4.2 Lowenstein-Jensen medium กับ PNB เพิ่ม 10 ml แก้ปัญหา PNB (500 ไมโครกรัม / ml) 490 มล. ของกลาง LJ และผสมให้เข้ากันก่อนที่จะจ่ายแข็งตัวกลางโดย inspissation เป็นสื่อกลางใน LJ ธรรมดา (ดูที่เกี่ยวข้อง SOP). 4.5 ขั้นตอนรายละเอียดขั้นตอนทั้งหมดจะต้องดำเนินการในตู้ความปลอดภัยทางชีวภาพ. •เพาะเชื้อความลาดเอียงของกลาง LJ มี PNB และความลาดชันของกลาง LJ ที่ไม่มี PNB (ควบคุม) ด้วยการระงับแบคทีเรียปรับให้ McFarland ขุ่นมาตรฐานที่ 1. •เพื่ออำนวยความสะดวกหลอด PNB ถูกเพิ่มเข้าไปในหลอดยาเสพติดที่มีเชื้อและในขณะที่ DST จะดำเนินการ ผลของการทดสอบ PNB และ DST จึงสามารถใช้ได้ในเวลาเดียวกัน. •ฟักที่อุณหภูมิ 37 ° C และเปรียบเทียบการเจริญเติบโตบนเนินเขาทั้งสองหลังจาก 28 วันของการบ่ม. 4.6 ผลและการตีความ•การเจริญเติบโตอุดมสมบูรณ์บนเนินเขาทั้งสอง - ไมโคแบคทีเรียสายพันธุ์อื่นที่ไม่ใช่ แบคทีเรียตุ่ม. •การเจริญเติบโตมากมายในหลอดการควบคุมและการเจริญเติบโตเพียงเล็กน้อยหรือไม่มีในสื่อ PNB - วัณโรคสายพันธุ์ที่มีความซับซ้อน. •การเจริญเติบโตไม่มีความลาดชันทั้ง -. ผลที่ไม่ interpretable ทดสอบเพื่อจะซ้ำ4.7 การควบคุมคุณภาพ4.7.1 สัณฐานวิทยาของ อาณานิคมสังเกตสัณฐานวิทยาของโคโลนีบนอาหารแข็งที่จะตรวจสอบความบริสุทธิ์วัฒนธรรม. 4.7.2 การควบคุมบวกการเจริญเติบโตไม่มีในสื่อ PNB -. ดำเนินการทดสอบกับระบุก่อนหน้านี้เอ็มสายพันธุ์วัณโรคหรือความเครียดอ้างอิงจากการเก็บวัฒนธรรม4.7.3 ลบ การควบคุมการเจริญเติบโตในสื่อ PNB - ดำเนินการทดสอบกับสายพันธุ์อ้างอิงเช่น M. แผ่นดิน (สายพันธุ์พืชกินซาก) จากการเก็บรวบรวมวัฒนธรรม. 4.8 การจัดการของเสียAutoclave วัสดุที่ปนเปื้อน. 5 เอกสารที่เกี่ยวข้องเคนท์ PT คิวบิกา GP สาธารณสุข mycobacteriology: คู่มือสำหรับระดับ III ห้องปฏิบัติการ แอตแลนตา, GA, สหรัฐอเมริกากรมอนามัยและมนุษย์บริการศูนย์ควบคุมโรค 1985. บริการห้องปฏิบัติการในการควบคุมวัณโรค ส่วนที่สาม: วัฒนธรรม เจนีวา, องค์การอนามัยโลก, 1998. วินเซนต์ V, Gutiérrez MC Mycobacterium ลักษณะห้องปฏิบัติการของเชื้อมัยโคแบคทีเรียเจริญเติบโตช้า ใน: คู่มือการใช้งานจุลชีววิทยาคลินิก วอชิงตันดีซี, สมาคมจุลชีววิทยาอเมริกัน 2007: 573-588

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

เนื้อหา

1 ขอบเขต
2 คำนิยามและอักษรย่อ
3 2 . บุคลากรทางการแพทย์
3.1 3.2 การศึกษาและการฝึกอบรมฟิตเนส

4 . ขั้นตอนหลักการ

4.1 4.2 4.3 ตัวอย่างวัสดุอุปกรณ์ สารเคมี และโซลูชั่น

4.4 4.5 รายละเอียดขั้นตอนและผลการตีความ

4.6 ควบคุมการจัดการของเสีย 4.7 4.8 คุณภาพ
5 เอกสารที่เกี่ยวข้อง

เรียบเรียงโดย ตรวจสอบโดยอนุมัติ โดยแทนที่รุ่นใหม่
ชื่อรหัส : รหัส :

วันที่ลายเซ็นปฏิบัติการพื้นที่ : ไม่มีสำเนา : เหตุผลสำหรับการเปลี่ยนแปลง :

1 ขอบเขต
SOP นี้อธิบายขั้นตอนสำหรับการทดสอบที่ตรวจพบสามารถเจริญเติบโตของแบคทีเรียบนอาหารเลี้ยงเชื้อแข็งที่มี p-nitrobenzoate ซึ่งจะใช้สำหรับการระบุของเชื้อวัณโรค .
เพราะช่วงล่างที่มีความเข้มข้นสูงของรัฐ ติดเชื้อแบคทีเรีย มีการจัดการการปฏิบัติตามเข้มงวดกับความปลอดภัย และการคุ้มครองเป็นข้อบังคับ ขั้นตอนที่ต้องดำเนินการในห้องประชุมที่มาตรฐานความปลอดภัยทางชีวภาพระดับ 3 ที่มีการเข้าถึงเฉพาะเจ้าหน้าที่เท่านั้น .
2 คำนิยามและอักษรย่อ
BSC : เวลาตู้
ความปลอดภัยทางชีวภาพการทดสอบความไวของยาแอล
: L ö wenstein –เจนเซ่น
น่า : p-nitrobenzoate
3 2 . บุคลากรทางการแพทย์ที่ฟิตเนส

3.1 สอดคล้องกับกฎหมายระดับชาติ และแนวทางปฏิบัติ การจัดเรียงของที่ควรจะทำสำหรับการเฝ้าระวังสุขภาพที่เหมาะสมของคนงานห้องปฏิบัติการวัณโรค :
ก่อนที่จะลงทะเบียนเรียนใน tb ห้องปฏิบัติการ ;
ในช่วงเวลาปกติหลังจากนั้น ปีหรือสองปี หลังจากเหตุการณ์ที่เกิดขึ้นใด ๆ  Biohazard

;ที่มีอาการวัณโรค .
ใจกลาง ประวัติทางการแพทย์ส่วนบุคคลจะถูกเก็บไว้ถึง 10 ปี หลังสิ้นสุดการสัมผัส .
คนงานห้องปฏิบัติการควรศึกษาเกี่ยวกับอาการของวัณโรคและมีการเข้าถึงพร้อมที่จะดูแลทางการแพทย์ฟรี ถ้าอาการเกิดขึ้น .
ความลับเอชไอวีให้คำปรึกษาและการทดสอบควรจะเสนอให้คนงาน ห้องปฏิบัติการตัวเลือกสำหรับการย้ายของเอชไอวีหรือมมูโนยับยั้งบุคคลจากพื้นที่ที่มีความเสี่ยงสูงของวัณโรคทางห้องปฏิบัติการควรพิจารณา กรณีของโรคหรือตาย
ระบุสอดคล้องกับกฎหมายระดับชาติ และ / หรือ ปฏิบัติที่เกิดจากการสัมผัสสารชีวภาพจะต้องแจ้งให้เจ้าหน้าที่ที่เชี่ยวชาญ .

3.2 การศึกษาและฝึกอบรมการศึกษาและการฝึกอบรมจะต้องได้รับในหัวข้อต่อไปนี้ :
ความเสี่ยงที่อาจเกิดขึ้นกับสุขภาพ ( อาการของโรค วัณโรค และ ส่ง ) ;
มาตรการป้องกันการลดและป้องกันการเกิดละออง ;
สุขอนามัยความต้องการ ;
สวมใส่ และใช้อุปกรณ์ป้องกันและเสื้อผ้า ;
การจัดการวัสดุที่อาจติดเชื้อ
ห้องปฏิบัติการการออกแบบ รวมถึงเงื่อนไขการให้ ;
ใช้ตู้ความปลอดภัยทางชีวภาพ ( การระบุความผิดปกติ , ซ่อมบำรุง ) ;
ใช้ autoclaves ผลิตและ ( การระบุความผิดปกติ , ซ่อมบำรุง ) ;
การป้องกันเหตุการณ์และขั้นตอนที่จะต้องดำเนินการโดยคนงานในกรณีของเหตุการณ์ ( เหตุการณ์ , เคมี , ไฟฟ้าและอันตรายไฟ
 Biohazard ) ฝึกปฏิบัติการที่ดีและเทคนิคทางจุลชีววิทยาที่ดี ;
องค์กรของการไหลของงาน ;
ขั้นตอน ; การจัดการของเสีย
;
ความสำคัญของผลทางห้องปฏิบัติการเพื่อการจัดการผู้ป่วย ;
ความสำคัญของผลทางห้องปฏิบัติการสำหรับแผนงานวัณโรคแห่งชาติ .
:
การฝึกอบรมจะได้รับก่อนที่พนักงานจะใช้ของเขา / เธอโพสต์ ;
ดูแลอย่างเคร่งครัด ;
ปรับให้ใช้บัญชีใหม่ หรือเปลี่ยนแปลงเงื่อนไข และ
ซ้ำเป็นระยะโดยทุกปี .
4 4.1 หลักการ

ขั้นตอนการเติบโตในการปรากฏตัวของ PNB เป็นหนึ่งในองค์ประกอบหลักในการฟีโนไทป์ของเชื้อชนิดอื่นๆ จากตุ่มเล็กๆเวลาและเป็นส่วนหนึ่งของกระบวนการระบุวัณโรค วัณโรคและเชื้อ M .
ตุ่มเล็กๆอื่นๆจะไม่เติบโตในวัฒนธรรมอาหารที่มีกว่า 500 µ g / ml ; ชนิด เวลาอื่น ๆด้วยข้อยกเว้นของ gastri และบางสายพันธุ์ของเชื้อ M . marinum เมตรและจะเติบโตในการปรากฏตัวของ PNB .
ทดสอบต้องดำเนินการในวัฒนธรรมบริสุทธิ์ มิฉะนั้นจะให้ผลลัพธ์ที่ผิด

4.2 ตัวอย่างเชื้อบริสุทธิ์ของเชื้อกรดอย่างรวดเร็วเติบโตในสื่อที่เป็นของแข็ง อายุ 21 – 28 วันด้วย กว่า 50 อาณานิคม .
4.3 อุปกรณ์และวัสดุ
บีเอสซี Class I หรือ II ปีรับรอง

เครื่องฟักไข่Autoclave
สายพันธุ์อ้างอิงของวัณโรค ( หรือระบุก่อนหน้านี้สายพันธุ์ ) และการอ้างอิงสายพันธุ์ของม. เญิน ( สายพันธุ์ โดยกินสิ่งที่เน่าเปื่อย )

4.4.1 กว่า 4.4 สารเคมีและโซลูชั่น โซลูชั่น , 500 µ g / ml
หนักกว่า 250 มิลลิกรัม ละลายใน 10 propylene glycol มล ในขณะที่ความร้อนในอ่างน้ำที่อุณหภูมิ 37 องศา wenstein
4.4.2 L ö–กลางด้วยน่า
เจนเซ่นเพิ่ม 10 โซลูชั่น PNB ml ( 500 μ g / ml ) 490 ml ของ LJ ขนาดกลางและผสมให้เข้ากันก่อนจ่ายยา .
จากอาหารโดยสมพงค์เป็นขนาดกลาง แอลเจธรรมดา ( ดู SOP ที่เกี่ยวข้อง ) .

4.5 รายละเอียดขั้นตอนกระบวนการทั้งหมดต้องดำเนินการในตู้ปลอดภัยทางชีวภาพ
บริการฉีดวัคซีนความลาดชันของ LJ ขนาดกลางที่มีกว่าและความชันของแอลกลางไม่น่า ( ควบคุม ) กับ bacterial suspension ปรับแมคฟาร์แลนด์ความขุ่นมาตรฐาน 1 .
- เพื่อความสะดวก , PNB หลอดเพิ่มยาที่มีหลอดและเชื้อในขณะที่เวลาจะดำเนินการออก ผลของ PNB การทดสอบและเวลาจึงใช้ได้ในเวลาเดียวกัน
- บ่มที่ 37 ° C และเปรียบเทียบการเจริญเติบโตทั้งลาดหลังจาก 28 วัน 1 .

- 4.6 ผลและการตีความมากมายของทั้งลาดเมื่อย–ดีเอ็นเอ นอกจากตุ่มเล็กๆ Bacilli .
- การเจริญเติบโตมากมายในการควบคุมหลอดและการเจริญเติบโตเพียงเล็กน้อยหรือไม่มีเลยใน PNB ขนาดกลาง–วัณโรคซับซ้อนเมื่อย
- ไม่มีการเจริญเติบโต ทั้งชันและไม่ interpretable ผลการทดสอบซ้ำ .
47 การควบคุมคุณภาพ
4.7.1 สัณฐานวิทยาของอาณานิคม
สังเกตลักษณะของโคโลนีบนอาหารแข็งเพื่อตรวจสอบความบริสุทธิ์วัฒนธรรม .
4.7.2 บวกการควบคุม
ไม่เติบโตบน–กลาง PNB ดำเนินการทดสอบกับระบุก่อนหน้านี้วัณโรคสายพันธุ์หรือสายพันธุ์อ้างอิงจากวัฒนธรรมคอลเลกชัน .
4.7.3 ลบควบคุมการเจริญเติบโตในสื่อน่าพก
จำกัด ไปทดสอบกับสายพันธุ์อ้างอิง เช่น ม.เญิน ( สายพันธุ์ โดยกินสิ่งที่เน่าเปื่อย ) จากวัฒนธรรมการจัดการคอลเลกชัน นึ่ง

ทั้งหมด 4.8 ของเสียปนเปื้อนวัสดุ
5 เอกสารที่เกี่ยวข้อง
เคนท์ PT , คูบิซาจีพี mycobacteriology สาธารณสุข : คู่มือปฏิบัติการ 3 ระดับ แอตแลนตา , GA , สหรัฐอเมริกากรมสุขภาพและบริการมนุษย์ , ศูนย์ควบคุมโรค , 2528 .
บริการห้องปฏิบัติการในการควบคุมวัณโรค ส่วนที่สาม : วัฒนธรรมเจนีวา องค์กรอนามัยโลก 1998
วินเซนต์ วี กูตี จาก rrez MC โดย : ลักษณะปฏิบัติการเติบโตช้า . ใน : คู่มือการใช้งานจุลชีววิทยาคลินิก Washington , DC , สมาคมจุลชีววิทยาอเมริกัน 2007:573 –คุณ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.