Microalgae cultivation and intracel

Microalgae cultivation and intracellular lipid detection
Each microalgae can grow rapidly under specific cultivation condition and nutrients. Microalgae growth is directly affected by the availability of nutrients and suitability of the cultivation condition to microalgae isolate. In addition, initial inoculum density also leads better microalgae growth during cultivation time (Li et al., 2011). Five strains of microalgae were cultivated on AF6 medium and incubate at 12:12 (light:dark) condition. Measurements of the microalgae growth were measured as turbidity cells at OD (optical density) of lambda 680 nm wavelength. The specific growth rate (umax) of LIPI11-2-Al005; LIPI11-2-Al010; LIPI11-2-Al015; LIPI11-2-Al018; LIPI11-2 Al019 were 0.065; 0.097; 0.157; 0.088; and 0.062 respectively. The result exhibited LIPI11-2-Al015 have growth rate faster than other selected four (4) microalgae. As is faster growing algae LIPI11-2-Al015 reached the stationer phase earlier than other microalgae isolate.
Detection intracellular lipid were performed by staining of dye Nile red which have been use to evaluate the lipid content of animal cells and microorganism, such as mammalian cell, bacteria, yeasts, zooplankton and microalgae. Nile red is a lipid-soluble florescent dye. Nile red emits a yellow gold fluorescence when dissolved in neutral lipid which is the best substrate to produce biodiesel [20] and [21].
Fluorescence microscope observation of five microalgae strains shows all microalgae strain emit yellow glow fluorescence, but different intensity. Based on the fluorescence result, LIPI11-2-Al018 gives high and bright intensity of yellow gold. The lowest intensity of Nile red stain is isolate LIPI11-2-Al010 (Fig. 2). This result used as the preliminary lipid detection which all the strains have intracellular lipid but the yield of each strain were different one another. Nile red observation can used as early detection of lipid content in microalgae cell[22].

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เพาะปลูก Microalgae และตรวจพบไขมัน intracellularแต่ละ microalgae สามารถเติบโตอย่างรวดเร็วภายใต้เงื่อนไขเฉพาะการเพาะปลูกและสารอาหาร เจริญเติบโตของ Microalgae โดยตรงได้รับผลกระทบจากความพร้อมของสารอาหาร และความเหมาะสมของสภาพการเพาะปลูกการ microalgae แยก นอกจากนี้ ความหนาแน่นเริ่มต้น inoculum ยังนำ microalgae เติบโตที่ดีขึ้นในช่วงเวลาเพาะปลูก (Li et al., 2011) สายพันธุ์ที่ห้าของ microalgae ถูก cultivated บนกลาง AF6 และฟักที่ 12:12 (แสง: มืด) เงื่อนไขการ การวัดการเจริญเติบโตของ microalgae ถูกวัดเป็นเซลล์ความขุ่นที่ OD (ความหนาแน่นออปติคอล) ของแลมบ์ดา 680 nm ความยาวคลื่น อัตราการเจริญเติบโต (umax) LIPI11-2-Al005 LIPI11-2-Al010 LIPI11-2-Al015 LIPI11-2-Al018 LIPI11-2 Al019 ได้ 0.065 0.097 0.157 0.088 และ 0.062 ตามลำดับ LIPI11-2-Al015 จัดแสดงผลมีอัตราการเติบโตเร็วกว่าอื่น ๆ เลือก microalgae สี่ (4) เป็นเร็ว สาหร่ายเติบโต LIPI11-2-Al015 ถึงระยะ stationer ก่อนหน้า microalgae แยกอื่น ๆตรวจไขมัน intracellular ถูกดำเนินการ โดยการย้อมสีของแม่น้ำไนล์สีแดงซึ่งมีการประเมินกระบวนการเนื้อหาของเซลล์สัตว์และจุลินทรีย์ เซลล์ mammalian แบคทีเรีย yeasts, zooplankton และ microalgae สีย้อม แม่น้ำไนล์สีแดงเป็นสี florescent ไขมันละลาย แม่น้ำไนล์เรด emits เป็นสีเหลืองทอง fluorescence เมื่อละลายในไขมันที่เป็นกลางซึ่งเป็นพื้นผิวที่ดีที่สุดเพื่อผลิตไบโอดีเซล [20] [21]สังเกตกล้องจุลทรรศน์ fluorescence ของ microalgae สายพันธุ์ที่ห้าแสดงต้องใช้ทั้งหมด microalgae คายสีเหลืองเรืองแสง fluorescence แต่ความเข้มที่แตกต่างกัน ขึ้นอยู่กับผล fluorescence, LIPI11-2-Al018 ให้ความเข้มสูง และสว่างสีเหลืองทอง ความเข้มต่ำของแม่น้ำไนล์สีแดงคราบจะแยก LIPI11-2-Al010 (Fig. 2) ผลลัพธ์นี้ใช้เป็นการตรวจพบเบื้องต้นกระบวนการทั้งหมดสายพันธุ์มีไขมัน intracellular แต่ผลตอบแทนของแต่ละต้องใช้แตกต่างกัน แม่น้ำไนล์สังเกตสีแดงสามารถใช้เป็นต้นการตรวจสอบเนื้อหาของไขมันในเซลล์ microalgae [22]

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การเพาะปลูกสาหร่ายและการตรวจสอบของไขมันภายในเซลล์สาหร่ายแต่ละคนสามารถเติบโตอย่างรวดเร็วภายใต้เงื่อนไขการเพาะปลูกที่เฉพาะเจาะจงและสารอาหาร การเจริญเติบโตของสาหร่ายทะเลขนาดเล็กได้รับผลกระทบโดยตรงจากความพร้อมของสารอาหารและความเหมาะสมของสภาพการเพาะปลูกที่จะแยกสาหร่าย นอกจากนี้ความหนาแน่นของเชื้อเริ่มต้นนำไปสู่การเจริญเติบโตยังสาหร่ายที่ดีขึ้นในช่วงเวลาการเพาะปลูก (Li et al., 2011) ห้าสายพันธุ์ของสาหร่ายทะเลขนาดเล็กได้รับการปลูกฝังในสื่อ AF6 และฟักไข่ที่ 00:12 (แสง: ที่มืด) เงื่อนไข การวัดการเจริญเติบโตของสาหร่ายวัดความขุ่นเป็นเซลล์ที่ OD (ความหนาแน่นแสง) ของแลมบ์ดาความยาวคลื่น 680 นาโนเมตร อัตราการเจริญเติบโตที่เฉพาะเจาะจง (UMAX) ของ LIPI11-2-Al005; LIPI11-2-Al010; LIPI11-2-Al015; LIPI11-2-Al018; LIPI11-2 Al019 เป็น 0.065; 0.097; 0.157; 0.088; และ 0.062 ตามลำดับ ผลที่ได้แสดง LIPI11-2-Al015 มีอัตราการเจริญเติบโตได้เร็วขึ้นกว่าที่อื่น ๆ ที่เลือกสี่ (4) สาหร่าย ในฐานะที่เป็นสาหร่ายเจริญเติบโตเร็ว LIPI11-2-Al015 ถึงขั้นตอนเครื่องเขียนเร็วกว่าแยกสาหร่ายอื่น ๆ .
การตรวจหาเซลล์ไขมันที่ดำเนินการโดยการย้อมสีของสีย้อมแม่น้ำไนล์สีแดงที่ได้รับการใช้งานในการประเมินเนื้อหาของเซลล์ไขมันสัตว์และจุลินทรีย์เช่นเซลล์เลี้ยงลูกด้วยนม แบคทีเรียยีสต์และสาหร่ายแพลงก์ตอนสัตว์ แม่น้ำไนล์สีแดงเป็นสีย้อมเรืองไขมันละลาย แม่น้ำไนล์สีแดงส่งเสียงเรืองแสงสีเหลืองทองเมื่อละลายในไขมันที่เป็นกลางซึ่งเป็นสารตั้งต้นที่ดีที่สุดในการผลิตไบโอดีเซล [20] และ [21].
กล้องจุลทรรศน์เรืองแสงสังเกตของห้าสายพันธุ์สาหร่ายสาหร่ายสายพันธุ์ที่แสดงให้เห็นทุกเปล่งแสงเรืองแสงสีเหลือง แต่ความรุนแรงที่แตกต่างกัน ขึ้นอยู่กับผลการเรืองแสงที่ LIPI11-2-Al018 ให้ความเข้มสูงและสดใสของสีเหลืองทอง ความเข้มต่ำสุดของแม่น้ำไนล์คราบสีแดงแยก LIPI11-2-Al010 (รูปที่. 2) ผลที่ได้นี้ใช้เป็นไขมันการตรวจสอบเบื้องต้นซึ่งทุกสายพันธุ์มีไขมันภายในเซลล์ แต่ผลผลิตของแต่ละสายพันธุ์เป็นหนึ่งที่แตกต่างกันอีก แม่น้ำไนล์สังเกตสีแดงสามารถใช้การตรวจสอบก่อนว่าเป็นของไขมันในเซลล์สาหร่าย [22]

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การตรวจหาไขมันในเซลล์สาหร่ายและสาหร่าย
แต่ละสามารถเติบโตอย่างรวดเร็วภายใต้สภาพการปลูกที่เฉพาะเจาะจงและสารอาหาร การเจริญเติบโตของสาหร่ายขนาดเล็กจะได้รับผลกระทบโดยตรง โดยความพร้อมของรัง และความเหมาะสมของการเพาะเลี้ยงสาหร่ายแยกสภาพ . นอกจากนี้ ยังนำสาหร่ายความหนาแน่นของเชื้อเริ่มต้นการเจริญเติบโตได้ดีในช่วงเวลาการเพาะปลูก ( Li et al . , 2011 )ห้าสายพันธุ์ของสาหร่ายขนาดเล็กปลูกในเพลงรวม ปานกลาง และบ่มเพาะที่ 12 : 12 ( สว่าง : มืด ) เงื่อนไข การวัดการเจริญเติบโตของสาหร่ายเซลล์วัดค่า OD ( ความหนาแน่นของแสง ) ของ lambda 680 nm ความยาวคลื่น อัตราการเจริญเติบโตจำเพาะ ( umax ) ของ lipi11-2-al005 ; lipi11-2-al010 ; lipi11-2-al015 ; lipi11-2-al018 ; lipi11-2 al019 เป็น 0.065 ; 0.097 ; 0.157 ; 0.088 ; และลักษณะตามลำดับผลมี lipi11-2-al015 มีอัตราการเจริญเติบโตเร็วกว่ากันเลือกสี่ ( 4 ) Server เป็นเร็วเติบโตสาหร่าย lipi11-2-al015 ถึงสถานีระยะก่อนหน้านี้กว่าสาหร่ายขนาดเล็กอื่น ๆแยกเซลล์ไขมัน .
ตรวจจับได้ย้อมสีย้อมไนล์เรดซึ่งได้ถูกใช้เพื่อประเมินปริมาณไขมันในเซลล์สัตว์ และจุลินทรีย์ เช่น mammalian เซลล์แบคทีเรีย , ยีสต์ , แพลงก์ตอนสัตว์ และ Server ปลานิลสีแดงเป็นไขมันที่ละลายน้ำได้เรืองแสงสี ไนล์เรดปล่อยเรืองแสงสีเหลืองทองเมื่อละลายในไขมันที่เป็นกลางซึ่งพื้นผิวที่ดีที่สุดเพื่อผลิตไบโอดีเซล [ 20 ] และ [ 21 ] .
จากกล้องจุลทรรศน์แบบห้าสายพันธุ์สาหร่ายสาหร่ายเรืองแสงเรืองแสงเปล่งแสดงทุกสายพันธุ์สีเหลือง แต่แตกต่างกันที่ความเข้มจากผลเรืองแสง , lipi11-2-al018 ให้สูงและความเข้มสดใสของสีเหลืองทอง ความเข้มข้นต่ำสุดของปลานิลสีแดงเปื้อนเป็นแยก lipi11-2-al010 ( รูปที่ 2 ) ผลการตรวจสอบในเบื้องต้น ที่ใช้เป็นสายพันธุ์ทั้งหมดมีไขมันภายในเซลล์ แต่ผลผลิตของแต่ละสายพันธุ์ที่แตกต่างกันไนล์เรดการสังเกตสามารถใช้ตรวจหาปริมาณไขมันในสาหร่ายเซลล์ [ 22 ] ก่อน