Subsequent trypsinization, removal

Subsequent trypsinization, removal of the clumps of tissue,
and re-plating of the cells generates sufficient cells
for cryopreservation and for later use. Cryopreservation
follows standard protocols used in tissue culture labs for
somatic cell lines. At the time of nuclear transfer, cells are
synchronized to G0/G1 of their cell cycle by either serum
starvation or growth to confluence. Chemical treatments
of the donor cells prior to nuclear transfer to increase the
chances of reprogramming have also been attempted in the
horse. We have investigated the use of TSA (Trichostatin
A), a deacetylase inhibitor, and did not observe any effect
on blastocyst development (Table 22.5) or on development
to term. Roscovitine treatment used to synchronize the cell
cycle (Hinrichs et al., 2006, 2007) did not increase blastocyst
rates; however, a very high development rate to term
was reported. Nevertheless, in the horse as well as in other
species there is an evident cell line effect in determining the
successful outcome of any cloning experiment (Lagutin

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ต่อมา trypsinization เอาของกระจุกของเนื้อเยื่อและชุบของเซลล์ใหม่สร้างเซลล์เพียงพอสำหรับ cryopreservation และ สำหรับใช้ในภายหลัง Cryopreservationตามโพรโทคอลมาตรฐานที่ใช้ในห้องแล็บเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อในมาติกเซลล์รายการ ในขณะโอนนิวเคลียร์ เซลล์อยู่ซิงโครไนส์ G0/G1 ของวงจรเซลล์ โดยเป็นเซรั่มความอดอยากหรือเติบโตไปบรรจบ เคมีบำบัดเซลล์ผู้บริจาคก่อนโอนนิวเคลียร์เพื่อเพิ่มการนอกจากนี้ยังมีการพยายามโอกาส reprogramming ในการม้า เราได้ตรวจสอบการใช้ของ TSA (TrichostatinA) ผลการ deacetylase และไม่เห็นผลใด ๆในอดีตพัฒนา (22.5 ตาราง) หรือพัฒนาในระยะนั้น ใช้ในการซิงโครไนส์เซลล์รักษา Roscovitineวงจร (Hinrichs et al., 2006, 2007) ได้เพิ่มอดีตราคา อย่างไรก็ตาม การพัฒนาสูงมากอัตราการระยะมีรายงาน อย่างไรก็ตาม ในม้าด้วยเหมือนกันมีชนิดเดียวคือ ผลบรรทัดเซลล์ที่เห็นได้ชัดในการกำหนดผลสำเร็จของการทดลอง cloning (Lagutin

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

trypsinization ที่เกิดขึ้นภายหลังการกำจัดของกอของเนื้อเยื่อ
และ re-ชุบของเซลล์ที่สร้างเซลล์ที่เพียงพอ
สำหรับการเก็บรักษาและเพื่อใช้ในภายหลัง อยู่รอด
ต่อไปนี้โปรโตคอลมาตรฐานที่ใช้ในห้องปฏิบัติการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อสำหรับ
เซลล์ร่างกาย ในช่วงเวลาของการถ่ายโอนนิวเคลียร์เซลล์จะ
ตรงกับ G0 / G1 ของวงจรมือถือของตนโดยทั้งซีรั่ม
ความอดอยากหรือการเจริญเติบโตไปบรรจบ การรักษาทางเคมี
ของเซลล์บริจาคก่อนที่จะมีการถ่ายโอนนิวเคลียร์เพื่อเพิ่ม
โอกาสในการปรับผังรายการยังได้รับการพยายามใน
ม้า เราได้ตรวจสอบการใช้งานของ TSA (Trichostatin
) ยับยั้ง deacetylase และไม่ได้สังเกตเห็นผลกระทบใด ๆ
ต่อการพัฒนาตัวอ่อน (ตารางที่ 22.5) หรือในการพัฒนา
ระยะ การรักษา Roscovitine ใช้ในการประสานเซลล์
วงจรไม่ได้เพิ่มขึ้นตัวอ่อน (Hinrichs et al, 2006, 2007.)
อัตรา; แต่อัตราการพัฒนาสูงมากกับคำที่
มีรายงาน อย่างไรก็ตามในม้าเช่นเดียวกับคนอื่น ๆ ใน
สายพันธุ์ที่มีเซลล์ที่เห็นได้ชัดมีผลในการพิจารณา
ผลสำเร็จของการทดลองโคลนใด ๆ (Lagutin

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ต่อมา trypsinization , การกำจัดของกอเนื้อเยื่อ
และชุบ Re ของเซลล์สร้างเซลล์เพียงพอสำหรับการเก็บรักษา
และใช้ในภายหลัง
ตามโปรโตคอลมาตรฐานที่ใช้ในระบบบำบัดปฏิบัติการการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อเพื่อ
เซลล์โซมาติก . ในช่วงเวลาของการถ่ายโอนนิวเคลียร์เซลล์ / G1 G0
ประสานของวัฎจักรเซลล์ด้วยเซรั่ม
ความอดอยากหรือการบรรจบกันสารเคมี
ของเซลล์ผู้บริจาคก่อนนิวเคลียร์โอนเพื่อเพิ่มโอกาสของการ reprogramming ด้วย

พยายามในม้า เราได้ศึกษาการใช้ TSA ( ไตรโคส ตติน
) , ในฐานะ , และไม่ได้สังเกตผลกระทบใด ๆต่อการพัฒนาตัวอ่อน ( โต๊ะ

ถึง 22.5 ) หรือในการพัฒนาระยะยาว การใช้ roscovitine ประสานรอบเซลล์
( Hinrichs et al . ,2006 , 2007 ) ไม่ได้เพิ่มอัตราบลาสโตซิส
; อย่างไรก็ตาม , อัตราการพัฒนาสูงมากในระยะ
รายงาน อย่างไรก็ตามในม้าเช่นเดียวกับในสายพันธุ์อื่น ๆมีหลักฐาน
ไพรทีผลในการกำหนดผลของการโคลน
ประสบความสำเร็จทดลอง ( lagutin