and 37 °C) was 96.9% with only two

and 37 °C) was 96.9% with only two out of 64 bottles remaining undetected (Table 6). These two bottles had been inoculated with the HC of E. corrodens and had shown visible indicator alteration after preincubation at 37 °C. They were positive on subculture before and after the five day protocol in the instrument.
Direct loading of the LC inoculated bottles resulted in TTDs between 2 h (G. sanguinis) and 264 h (E. corrodens). Preincubation of LC inoculated bottles at 4 °C resulted in TTDs between 50 h (G. sanguinis) and 336 h (G. sanguinis), preincubation at RT for 24 h resulted in TTDs between 48 h (G. sanguinis) and 360 h (G. sanguinis) and preincubation at 37 °C for 24 h showed TTDs for LC inoculated bottles between five and 48 h. The relatively high variation within the results for the TTD of samples held under the same condition is surprising and cannot be explained by the author. Of all bottles TTD of 12 bottles was longer than 5 days (120 h). All bottles which exceeded the five day protocol had been inoculated with the LC inoculum.
There are two approaches to determine the reliability of blood culture media. Firstly one can use real patient's blood cultures and determine the rate of false negative bottles by performing subcultures of negative bottles on suitable medium (Riley et al., 2005; Petti et al., 2006). Secondly one can use an experimental approach, i.e. inoculat- ing the bottles in question with a defined amount of bacteria (Sautter et al., 2006; Klaerner et al., 2000; Seegmuller et al., 2004). Using clinical samples for rare organisms like the HACEK bacteria would imply the need for thousands of blind subcultures (Petti et al., 2006). On the other hand using artificial inocula not only reduces the amount of material needed and shortens the time until results are available but opens up the possibility to study different preincubation conditions, i.e. temperature and time (Sautter et al., 2006; Klaerner et al., 2000; Seegmuller et al., 2004). Additionally different amounts of bacteria could be used, i.e. a low concentration (LC) inoculum mimicking bacterial load in septicemia (Whimbey et al., 1984) and an additional high concentration (HC) inoculum to detect any subtle weaknesses of the medium. A medium capable of sustaining the growth of the HC inoculum mimicking “maximum stress” is unlikely

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

และ 37 ° C) เป็น 96.9% มีเพียงขวดสองจาก 64 เหลือวเวอร์ (ตาราง 6) ขวดที่สองเหล่านี้ได้ถูก inoculated กับ corrodens HC E. และได้แสดงการแก้ไขตัวบ่งชี้ที่ปรากฏหลังจาก preincubation ที่ 37 องศาเซลเซียส พวกบวกกับวัฒนธรรมก่อน และ หลังการโพรโทคอลห้าวันในเครื่องมือโหลดของ LC ตรงขวด inoculated ผลใน TTDs ระหว่าง h 2 (sanguinis กรัม) และ h 264 (E. corrodens) Preincubation LC inoculated ขวดที่ 4 ° C ส่งผลให้ TTDs ระหว่าง h 50 (sanguinis กรัม) และ h 336 (กรัม sanguinis), preincubation ที่ RT สำหรับ 24 ชมส่งผลให้ TTDs ระหว่าง 48 h (sanguinis กรัม) และ 360 h (sanguinis กรัม) และ preincubation ที่ 37 ° C ใน 24 h พบ TTDs สำหรับ LC inoculated ขวดระหว่างห้า และ 48 h การเปลี่ยนแปลงค่อนข้างสูงภายในผลลัพธ์สำหรับ TTD จัดขึ้นภายใต้เงื่อนไขเดียวกันอย่างน่าแปลกใจ และไม่สามารถอธิบายได้ โดยผู้เขียน ขวดทั้งหมด TTD 12 ขวดได้ยาวเกินกว่า 5 วัน (เอช 120) ขวดทั้งหมดซึ่งเกินกว่าโพรโทคอล 5 วันมีการ inoculated กับ LC inoculumมีสองวิธีในการตรวจสอบความน่าเชื่อถือของสื่อวัฒนธรรมเลือด ประการแรก สามารถใช้วัฒนธรรมเลือดของผู้ป่วยจริง และกำหนดอัตราขวดลบเท็จ โดยทำ subcultures ขวดลบสื่อที่เหมาะสม (Riley et al., 2005 Petti et al., 2006) ประการที่สอง หนึ่งสามารถใช้วิธีการทดลอง inoculat กำลังเช่นขวดสอบถาม มีจำนวนแบคทีเรีย (Sautter และ al., 2006 การกำหนด Klaerner และ al., 2000 Seegmuller et al., 2004) ใช้ทางคลินิกอย่างในสิ่งมีชีวิตที่หายากเช่นแบคทีเรีย HACEK จะเป็นสิทธิ์แบบต้องพัน subcultures ตาบอด (Petti et al., 2006) คง ใช้ประดิษฐ์ inocula ไม่เพียงแต่ลดจำนวนวัสดุที่ต้องการ และช่วยประหยัดเวลาจนมีผลลัพธ์ แต่เปิดขึ้นความสามารถในการเรียนต่าง ๆ เงื่อนไข preincubation เช่นอุณหภูมิและเวลา (Sautter และ al., 2006 Klaerner และ al., 2000 Seegmuller et al., 2004) จำนวนแบคทีเรียที่แตกต่างกันนอกจากนี้สามารถใช้ได้ เช่น inoculum ความเข้มข้นต่ำ (LC) ที่ mimicking โหลดแบคทีเรียในบริการ (Whimbey et al., 1984) และ inoculum ความเข้มข้นสูงเพิ่มเติม (HC) เพื่อตรวจหาจุดอ่อนใด ๆ รายละเอียดของสื่อได้ สื่อสามารถเสริมการเจริญเติบโตของ inoculum HC mimicking "สูงสุดเครียด" ไม่น่า

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

และ 37 องศาเซลเซียส) เป็น 96.9% มีเพียงสองออกจาก 64 ขวดที่เหลือตรวจไม่พบ (ตารางที่ 6) ทั้งสองขวดได้รับเชื้อด้วย HC ของ corrodens อีและได้แสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลงตัวบ่งชี้ที่มองเห็นได้หลังจาก preincubation ที่ 37 ° C พวกเขาอยู่ในเชิงบวกต่อวัฒนธรรมก่อนและหลังการโพรโทคอห้าวันในตราสาร.
โหลดโดยตรงของขวดเชื้อ LC ผลใน TTDs ระหว่าง 2 ชั่วโมง (G. sanguinis) และ 264 ชั่วโมง (อี corrodens) Preincubation ของ LC เชื้อขวดที่ 4 ° C ผลใน TTDs ระหว่าง 50 ชั่วโมง (G. sanguinis) และ 336 ชั่วโมง (G. sanguinis) preincubation ที่ RT เป็นเวลา 24 ชั่วโมงส่งผลให้ใน TTDs ระหว่าง 48 ชั่วโมง (G. sanguinis) และ 360 ชั่วโมง ( G. sanguinis) และ preincubation ที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงแสดงให้เห็น TTDs สำหรับขวดเชื้อ LC ระหว่างห้าและ 48 ชั่วโมง การเปลี่ยนแปลงที่ค่อนข้างสูงในผลสำหรับ TTD ของกลุ่มตัวอย่างที่จัดขึ้นภายใต้เงื่อนไขเดียวกันเป็นที่น่าแปลกใจและไม่สามารถอธิบายได้โดยผู้เขียน ขวดทั้งหมด TTD 12 ขวดเป็นเวลานานกว่า 5 วัน (120 ชั่วโมง) ขวดทั้งหมดซึ่งเกินโปรโตคอลวันที่ห้าได้รับเชื้อด้วยเชื้อ LC.
มีสองวิธีที่จะตรวจสอบความน่าเชื่อถือของสื่อวัฒนธรรมเลือดเป็น ประการแรกหนึ่งสามารถใช้ผู้ป่วยที่แท้จริงของวัฒนธรรมเลือดและกำหนดอัตราของขวดลบเท็จโดยการดำเนินการวัฒนธรรมของขวดเชิงลบเกี่ยวกับสื่อที่เหมาะสม (ไรลีย์, et al, 2005;.. Petti et al, 2006) ประการที่สองหนึ่งสามารถใช้วิธีการทดลองคือ inoculat- ไอเอ็นจีขวดในคำถามกับจำนวนเงินที่กำหนดไว้ของเชื้อแบคทีเรีย (Sautter et al, 2006;.. Klaerner et al, 2000;. Seegmuller et al, 2004) ตัวอย่างการใช้ทางคลินิกสำหรับการมีชีวิตที่หายากเช่นแบคทีเรีย Hacek จะบ่งบอกถึงความจำเป็นในการพันของวัฒนธรรมคนตาบอด (Petti et al., 2006) ในทางตรงกันข้ามการใช้ inocula เทียมไม่เพียง แต่ช่วยลดปริมาณของวัสดุที่จำเป็นและลดระยะเวลาจนกว่าผลมี แต่เปิดขึ้นเป็นไปได้ที่จะศึกษาสภาพ preincubation ที่แตกต่างกันกล่าวคืออุณหภูมิและเวลา (Sautter et al, 2006;. Klaerner และคณะ 2000. Seegmuller et al, 2004) นอกจากนี้จำนวนเงินที่แตกต่างกันของเชื้อแบคทีเรียที่สามารถนำมาใช้คือความเข้มข้นต่ำ (LC) เชื้อแบคทีเรียล้อเลียนโหลดในภาวะโลหิตเป็นพิษ (Whimbey et al., 1984) และความเข้มข้นสูงเพิ่มเติม (HC) หัวเชื้อในการตรวจสอบจุดอ่อนใด ๆ ที่ลึกซึ้งของกลาง กลางความสามารถในการสนับสนุนการเติบโตของเชื้อ HC ล้อเลียน "ความเครียดสูงสุด" ไม่น่า

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

และ 37 ° C ) คือ 96.9 % มีเพียงสองจาก 64 ขวดที่เหลือย ( ตารางที่ 6 ) เหล่านี้สองขวดถูก inoculated กับ HC . corrodens และได้แสดงการมองเห็นหลังจากพบตัวบ่งชี้ที่ 37 องศา พวกเขาเป็นบวกในวัฒนธรรมก่อนและหลังวันที่ห้าโปรโตคอลในตราสาร
โหลดโดยตรงของ LC ที่ใส่ขวดให้ ttds ระหว่าง 2 H ( gsanguinis ) 264 H ( E corrodens ) พบเชื้อของ LC ขวดที่ 4 ° C ( 50 ttds ระหว่าง H ( g sanguinis ) และ H ( , sanguinis 336 กรัม ) พบใน RT 24 ชั่วโมงมีความสามารถใน ttds ระหว่าง 48 h ( G . sanguinis ) และ 360 H ( G . sanguinis ) และพบใน 37 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่พบเชื้อ ttds สำหรับ LC ขวดระหว่างห้าและ 48 ชั่วโมงค่อนข้างสูง การเปลี่ยนแปลงภายในผลสำหรับ ดอลลาร์ตรินิแดดและโตเบโก ตัวอย่างที่จัดขึ้นภายใต้เงื่อนไขเดียวกัน เป็นที่น่าแปลกใจ และไม่สามารถอธิบายได้โดยผู้เขียน ทุกดอลลาร์ตรินิแดดและโตเบโกขวด 12 ขวดนานกว่า 5 วัน ( 120 ชั่วโมง ) ทุกขวดซึ่งเกิน 5 วัน โปรโตคอลถูก inoculated กับ LC 3 .
มีสองวิธีในการตรวจสอบความน่าเชื่อถือของสื่อวัฒนธรรมในเลือดประการแรกอย่างใดอย่างหนึ่งสามารถใช้เลือดที่แท้จริงของคนไข้วัฒนธรรมและหาอัตราของขวดเท็จเชิงลบโดยการพัฒนาจนขวดลบเหมาะสมปานกลาง ( Riley et al . , 2005 ; petti et al . , 2006 ) ประการที่สอง หนึ่งสามารถใช้ทดลอง เช่น inoculat - ing ขวดในคำถามที่มีกำหนดปริมาณของแบคทีเรีย ( เซาเทอร์ et al . , 2006 ; klaerner et al . , 2000 ; seegmuller et al . ,2004 ) ใช้ตัวอย่างทางคลินิกสำหรับสิ่งมีชีวิตที่หายาก เช่น hacek แบคทีเรียจะบ่งบอกถึงความต้องการพัน subcultures ตาบอด ( petti et al . , 2006 ) บนมืออื่น ๆที่ใช้ inocula เทียมไม่เพียงแค่ช่วยลดปริมาณของวัสดุที่จำเป็น และช่วยลดระยะเวลาจนกว่าผลลัพธ์จะใช้ได้แต่เปิดขึ้นเป็นไปได้พบสภาพแตกต่างกัน เช่นอุณหภูมิและเวลา ( เซาเทอร์ et al . , 2006 ; klaerner et al . , 2000 ; seegmuller et al . , 2004 ) ปริมาณของแบคทีเรียที่แตกต่างกันนอกจากนี้ยังสามารถใช้เช่นความเข้มข้นต่ำ ( LC ) โดยเลียนแบบแบคทีเรียโหลดในหลัก ( whimbey et al . , 1984 ) และความเข้มข้นสูงเพิ่มเติม ( HC ) ปริมาณที่ตรวจพบสีสัน จุดอ่อนของสื่อเป็นสื่อที่สามารถรักษาอัตราการเติบโตของปริมาณ HC เลียนแบบ " ความเครียด " สูงสุดไม่น่าจะ