2.9. Ferric reducing antioxidant po

2.9. Ferric reducing antioxidant power (FRAP)
The FRAP reagentwas prepared minutes prior to initiation of the
assay by mixing 10 mM TPTZ (1 mL, dissolved in 40 mM HCl),
20 mM FeCl3 (1 mL) and 300 mM acetate buffer, pH 3.6 (10 mL)
(Benzie & Strain, 1996). The sample (200 mL) was mixed with FRAP
reagent (1.5 mL). The reactionwas incubated at 37 C for 5 min and
measured at 593 nm. The results are expressed as mg of trolox
equivalents per gram of extract (dw).
2.10. High-performance liquid chromatography coupled with
electrospray ionization and mass detection (HPLC-ESI-TOF)
The seed and peel extracts were dissolved in methanol-water
(3:1) at a concentration of 5 mg/mL; the polyphenol standards
(epicatechin, catechin, caffeic acid, ferulic acid, quercetin, gallic
acid, and rutin) were prepared in the same manner as the extracts.
HPLC analyses were performed with the Ultimate 3000 Basic
Automated (ThermoScientific-Dionex, CA, USA), and a Poroshell
120 EC-C18 column (2.7 mm, 4.6 50 mm; Agilent Technologies,
Santa Clara, CA, USA). Mobile phasewas carried out using a gradient
of methanol and acetonitrile with a flow of 0.5 mL/min at 25 C. The
liquid chromatography was coupled to an electrospray mass spectrometer
ESI-MS MicroTOF (Bruker Daltonik, Bremen, Germany),
utilizing an electrospray interface operated in negative mode with a
voltage of 4.5 kV. The drying gas temperature was 190 C, the
drying gas flow was 8 L/min, and the nebulizer gas pressure was
3 bar. The data obtained from the molecular ions were processed by
means of Compass Data Analysis 4.1 (Bruker Daltonik) software and
the SmartFormula Editor tool.
2.11. Antimicrobial activity
Bacterial strains: Listeria innocua (ATCC 33090), Escherichia coli
(JMP101), Lactobacillus sakei, Weissella viridescens, and Leuconostoc
mesenteroides were isolated from meat products and identified by
rDNA16S in our laboratory. The antimicrobial activity of extracts
alone or in combination with nisin was determined by the brothbased
turbidimetric method (Othman et al., 2011) with some
modifications. Forty microliters of inoculum (103 colony-forming
units per mL) was mixed with one hundred and sixty microliters
of extracts, nisin, or as a combination and then they were incubated
at 35 C. The optical densitywas monitored at 600 nmevery 30 min
with a 10 s agitation prior to each measurement for 24 h in a
Synergy HT microplate reader. Lag time and maximum growth rate
were calculated using Gen5™software. Lag time was considered in
the mixture design because it is the time during which a bacterium
does not grow. The antimicrobial activity of nisin and its combination
with the extracts was measured only with L. innocua.
2.12. Simplex lattice mixture design for optimization of
antimicrobial and antioxidant response
A simplex lattice augment mixture design was utilized to
determine the effect of interactions among nisin, seed extract, and
peel extract on antimicrobial and antioxidant properties. Component
proportions were expressed as a fraction of the mixture with a
sum of one. Response variables comprised antioxidant (ORAC
method) and antimicrobial (turbidimetric assay, measured as lag
time) activities. Mixture design experiments were designed and
analyzed using Statgraphics Centurion XV, version 15.2.6 (StatPoint
Technologies, USA). A total of 10 combinations are presented in
Table 1. The following polynomial equation of function Xi was fitted
for each factor assessed at each experimental point, where Y is the
predicted response and b1, b2, b3, b12, b13, and b23 are constant
coefficients for each linear and non-linear interaction terms:
Y ¼ b1X1 þ b2X2 þ b3X3 þ b12X1X2 þ b13X1X3 þ b23X2X3 (1)
The data were analyzed by a general linear model. Optimum
values of the independent variables were elucidated by conducting
a three-dimensional response surface analysis of the independent
and dependent variables.
2.13. Statistical analysis
Radical scavenging activity and the characteristics of byproducts
and extracts were analyzed at least six times and data were
expressed as mean ± standard deviation. One-way ANOVA and the
Tukey's multiple comparisons test were conducted utilizing the
software Prism ver. 5.0 (GraphPad, San Diego, CA, USA). A p-value <
0.05 was considered statistically significant.

2.9. Ferric reducing antioxidant power (FRAP)
The FRAP reagentwas prepared minutes prior to initiation of the
assay by mixing 10 mM TPTZ (1 mL, dissolved in 40 mM HCl),
20 mM FeCl3 (1 mL) and 300 mM acetate buffer, pH 3.6 (10 mL)
(Benzie & Strain, 1996). The sample (200 mL) was mixed with FRAP
reagent (1.5 mL). The reactionwas incubated at 37 C for 5 min and
measured at 593 nm. The results are expressed as mg of trolox
equivalents per gram of extract (dw).
2.10. High-performance liquid chromatography coupled with
electrospray ionization and mass detection (HPLC-ESI-TOF)
The seed and peel extracts were dissolved in methanol-water
(3:1) at a concentration of 5 mg/mL; the polyphenol standards
(epicatechin, catechin, caffeic acid, ferulic acid, quercetin, gallic
acid, and rutin) were prepared in the same manner as the extracts.
HPLC analyses were performed with the Ultimate 3000 Basic
Automated (ThermoScientific-Dionex, CA, USA), and a Poroshell
120 EC-C18 column (2.7 mm, 4.6  50 mm; Agilent Technologies,
Santa Clara, CA, USA). Mobile phasewas carried out using a gradient
of methanol and acetonitrile with a flow of 0.5 mL/min at 25 C. The
liquid chromatography was coupled to an electrospray mass spectrometer
ESI-MS MicroTOF (Bruker Daltonik, Bremen, Germany),
utilizing an electrospray interface operated in negative mode with a
voltage of 4.5 kV. The drying gas temperature was 190 C, the
drying gas flow was 8 L/min, and the nebulizer gas pressure was
3 bar. The data obtained from the molecular ions were processed by
means of Compass Data Analysis 4.1 (Bruker Daltonik) software and
the SmartFormula Editor tool.
2.11. Antimicrobial activity
Bacterial strains: Listeria innocua (ATCC 33090), Escherichia coli
(JMP101), Lactobacillus sakei, Weissella viridescens, and Leuconostoc
mesenteroides were isolated from meat products and identified by
rDNA16S in our laboratory. The antimicrobial activity of extracts
alone or in combination with nisin was determined by the brothbased
turbidimetric method (Othman et al., 2011) with some
modifications. Forty microliters of inoculum (103 colony-forming
units per mL) was mixed with one hundred and sixty microliters
of extracts, nisin, or as a combination and then they were incubated
at 35 C. The optical densitywas monitored at 600 nmevery 30 min
with a 10 s agitation prior to each measurement for 24 h in a
Synergy HT microplate reader. Lag time and maximum growth rate
were calculated using Gen5™software. Lag time was considered in
the mixture design because it is the time during which a bacterium
does not grow. The antimicrobial activity of nisin and its combination
with the extracts was measured only with L. innocua.
2.12. Simplex lattice mixture design for optimization of
antimicrobial and antioxidant response
A simplex lattice augment mixture design was utilized to
determine the effect of interactions among nisin, seed extract, and
peel extract on antimicrobial and antioxidant properties. Component
proportions were expressed as a fraction of the mixture with a
sum of one. Response variables comprised antioxidant (ORAC
method) and antimicrobial (turbidimetric assay, measured as lag
time) activities. Mixture design experiments were designed and
analyzed using Statgraphics Centurion XV, version 15.2.6 (StatPoint
Technologies, USA). A total of 10 combinations are presented in
Table 1. The following polynomial equation of function Xi was fitted
for each factor assessed at each experimental point, where Y is the
predicted response and b1, b2, b3, b12, b13, and b23 are constant
coefficients for each linear and non-linear interaction terms:
Y ¼ b1X1 þ b2X2 þ b3X3 þ b12X1X2 þ b13X1X3 þ b23X2X3 (1)
The data were analyzed by a general linear model. Optimum
values of the independent variables were elucidated by conducting
a three-dimensional response surface analysis of the independent
and dependent variables.
2.13. Statistical analysis
Radical scavenging activity and the characteristics of byproducts
and extracts were analyzed at least six times and data were
expressed as mean ± standard deviation. One-way ANOVA and the
Tukey's multiple comparisons test were conducted utilizing the
software Prism ver. 5.0 (GraphPad, San Diego, CA, USA). A p-value <
0.05 was considered statistically significant.

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2.9. Ferric reducing antioxidant power (FRAP)The FRAP reagentwas prepared minutes prior to initiation of theassay by mixing 10 mM TPTZ (1 mL, dissolved in 40 mM HCl),20 mM FeCl3 (1 mL) and 300 mM acetate buffer, pH 3.6 (10 mL)(Benzie & Strain, 1996). The sample (200 mL) was mixed with FRAPreagent (1.5 mL). The reactionwas incubated at 37 C for 5 min andmeasured at 593 nm. The results are expressed as mg of troloxequivalents per gram of extract (dw).2.10. High-performance liquid chromatography coupled withelectrospray ionization and mass detection (HPLC-ESI-TOF)The seed and peel extracts were dissolved in methanol-water(3:1) at a concentration of 5 mg/mL; the polyphenol standards(epicatechin, catechin, caffeic acid, ferulic acid, quercetin, gallicacid, and rutin) were prepared in the same manner as the extracts.HPLC analyses were performed with the Ultimate 3000 BasicAutomated (ThermoScientific-Dionex, CA, USA), and a Poroshell120 EC-C18 column (2.7 mm, 4.6 50 mm; Agilent Technologies,Santa Clara, CA, USA). Mobile phasewas carried out using a gradientof methanol and acetonitrile with a flow of 0.5 mL/min at 25 C. Theliquid chromatography was coupled to an electrospray mass spectrometerESI-MS MicroTOF (Bruker Daltonik, Bremen, Germany),utilizing an electrospray interface operated in negative mode with avoltage of 4.5 kV. The drying gas temperature was 190 C, thedrying gas flow was 8 L/min, and the nebulizer gas pressure was3 bar. The data obtained from the molecular ions were processed bymeans of Compass Data Analysis 4.1 (Bruker Daltonik) software andthe SmartFormula Editor tool.2.11. Antimicrobial activityBacterial strains: Listeria innocua (ATCC 33090), Escherichia coli(JMP101), Lactobacillus sakei, Weissella viridescens, and Leuconostocmesenteroides were isolated from meat products and identified byrDNA16S in our laboratory. The antimicrobial activity of extractsalone or in combination with nisin was determined by the brothbasedturbidimetric method (Othman et al., 2011) with somemodifications. Forty microliters of inoculum (103 colony-formingunits per mL) was mixed with one hundred and sixty microlitersof extracts, nisin, or as a combination and then they were incubatedat 35 C. The optical densitywas monitored at 600 nmevery 30 minwith a 10 s agitation prior to each measurement for 24 h in aSynergy HT microplate reader. Lag time and maximum growth ratewere calculated using Gen5™software. Lag time was considered inthe mixture design because it is the time during which a bacteriumdoes not grow. The antimicrobial activity of nisin and its combinationwith the extracts was measured only with L. innocua.2.12. Simplex lattice mixture design for optimization ofantimicrobial and antioxidant responseA simplex lattice augment mixture design was utilized todetermine the effect of interactions among nisin, seed extract, andpeel extract on antimicrobial and antioxidant properties. Componentproportions were expressed as a fraction of the mixture with asum of one. Response variables comprised antioxidant (ORACmethod) and antimicrobial (turbidimetric assay, measured as lagtime) activities. Mixture design experiments were designed andanalyzed using Statgraphics Centurion XV, version 15.2.6 (StatPointTechnologies, USA). A total of 10 combinations are presented inTable 1. The following polynomial equation of function Xi was fittedfor each factor assessed at each experimental point, where Y is thepredicted response and b1, b2, b3, b12, b13, and b23 are constantcoefficients for each linear and non-linear interaction terms:Y ¼ b1X1 þ b2X2 þ b3X3 þ b12X1X2 þ b13X1X3 þ b23X2X3 (1)The data were analyzed by a general linear model. Optimumvalues of the independent variables were elucidated by conductinga three-dimensional response surface analysis of the independentand dependent variables.2.13. Statistical analysisRadical scavenging activity and the characteristics of byproductsand extracts were analyzed at least six times and data wereexpressed as mean ± standard deviation. One-way ANOVA and theTukey's multiple comparisons test were conducted utilizing thesoftware Prism ver. 5.0 (GraphPad, San Diego, CA, USA). A p-value <0.05 was considered statistically significant.

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2.9 . สารต้านอนุมูลอิสระลดพลังงานเฟอริค ( VDO )
reagentwas Frap เตรียมนาทีก่อนเริ่มต้นของการทดสอบ โดยการผสม tptz
10 มม. ( 1 มิลลิลิตร ละลายใน 40 มม. , 20 มม. FeCl3 HCl )
( 1 มิลลิลิตร ) และอะซิเตทบัฟเฟอร์ pH 3.6 300 มม. ( 10 ml )
( benzie &สายพันธุ์ , 2539 ) . ตัวอย่าง ( 200 มิลลิลิตร ) ผสมกับ Frap
Reagent ( 1.5 ml ) ที่พบว่า บ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาทีและ
วัดที่ 593 nm .ผลลัพธ์ที่ได้จะแสดงเป็นมิลลิกรัมสารสกัด 1 กรัม เทียบเท่า
( DW ) .
2.10 . โครมาโตกราฟีของเหลวสมรรถนะสูงควบคู่กับวิธีพ่นละอองไฟฟ้ามีประจุและมวลการตรวจหา (

hplc-esi-tof ) สารสกัดจากเมล็ดและเปลือกถูกละลายในเมทานอลน้ำ
( 3 : 1 ) ที่ระดับความเข้มข้น 5 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร ; มาตรฐาน
( แคเทชิน Catechin , โพลีฟีนอล , กรด Caffeic กรด ferulic , quercetin , ฝรั่งเศส
กรดและรูติน ) เตรียมในลักษณะเดียวกันเป็นสารสกัด การวิเคราะห์ HPLC ได้ด้วย

สุดยอด 3000 พื้นฐานอัตโนมัติ ( thermoscientific DIONEX , CA , USA ) และ poroshell
120 ec-c18 คอลัมน์ ( 2.7 มม. 4.6 50 มม. ; Agilent Technologies ,
ซานตาคลารา แคลิฟอร์เนีย สหรัฐอเมริกา ) มือถือ phasewas โดยใช้การไล่ระดับสี
ของเมทานอลและไนกับการไหลของ 0.5 มล. / นาทีที่อุณหภูมิ 25
Cวิธีโครมาโทกราฟีของเหลวอยู่คู่กับ microtof วิธีพ่นละอองไฟฟ้าแมสสเปกโตรมิเตอร์ (
esi-ms BRUKER daltonik เบรเมน , เยอรมัน ) ,
การใช้วิธีพ่นละอองไฟฟ้าอินเตอร์เฟซที่ดำเนินการในโหมดลบด้วย
แรงดัน 4.5 กิโล . การอบแห้งอุณหภูมิของก๊าซคือ 190 C
แห้ง อัตราการไหลของแก๊สเป็นลิตร / นาทีและ nebulizer ความดันก๊าซเป็น
3 บาร์ ข้อมูลที่ได้จากการประจุโมเลกุลที่ถูกประมวลผลโดย
วิธีการวิเคราะห์ข้อมูลเข็มทิศ 4.1 ( BRUKER daltonik ) smartformula Editor เครื่องมือซอฟต์แวร์และ
.
2.11 . กิจกรรมการยับยั้งแบคทีเรีย Listeria
: innocua ( ATCC 33090 ) , Escherichia coli
( jmp101 ) , Lactobacillus sakei weissella , viridescens และลิวโคน ตอค
ฆ่าเชื้อแล้วผสมที่แยกได้จากเนื้อและผลิตภัณฑ์ที่ระบุโดย
rdna16s ในห้องปฏิบัติการของเรา กิจกรรมต้านจุลชีพของสารสกัด

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.