Differentiated shoots with an elong

Differentiated shoots with an elongated stem, a
normal appearance, fully formed leaves, and no hyperhydration
(i.e. ready for rooting; Fig. 1d) could only be observed
in 51 out of the 2703 calli (M1 ? M4). M1 was also
better than M4 in producing this type of shoot (37 vs 14
shoots, respectively). All these results considered, M1
clearly appeared as better than M4 for organogenesis induction,
but none of the media tested was appropriate to
promote shoot growth and elongation efficiently. It is interesting
to note that, as opposed to our results, Corral-
Martı´nez and Seguı´-Simarro (2012) chose M4 instead of
M1. This apparent discrepancy can be explained by the
time point used for the analysis. In the previous work,
shoots were studied after 5 weeks of culture (not after
4 months as hereby). Although M1 and M4 produced callus
growth and shoot induction at a similar rate, M4 promoted
rooting at a higher rate. Nevertheless, the final
percentage of entire DH plants was very low, justifying the
need for the improved regeneration protocol we hereby
present.
To increase the rate of normal-appearing, elongated
shoots, we tested the effect of different media on shoot
growth and elongation (Table 1) as a previous step before
rooting. We produced a new batch of 1,855 calli cultured in
M1 medium. From them, we excised 555 shoots with leaf
primordia surrounding a visible meristem, and transferred
the shoots to four different media: M11, M12, M13 and
M14. All of them included MS medium (pH 5.8), 0.8 %
plant-agar and different growth regulators, as follows. M11
included no regulators, M12 was supplemented with 0.3 g/l
BA according to Kaur et al. (2011), M13 was supplemented
with 1.5 mg/l GA3 (Shivaraj and Rao 2011) and
M14 was supplemented with 1.5 mg/l GA3 and 8 mg/l
AgNO3 (Xing et al. 2010). A minimum of 124 shoots were
cultured in each of the four media. First, we evaluated
shoot elongation after 30 days of culture, classifying them
in five discrete types: (0) dead shoots; (1) no growth, or
formation of swollen, hyperhydrated organs with no stem
growth (Fig. 2a); (2) formation of new, no hyperhydrated
organs, but no stem elongation (Fig. 2b); (3) formation of
new, no hyperhydrated organs and stem elongation
(Fig. 2c); (4) root formation in addition to all the features
of type 3 (Fig. 2d). Shoot development was found to be
dependent on the elongation medium used according to a
v2 test (p B 0.05). As seen in Fig. 3, 61 % of the shoots
cultured in M11 formed new, normal-appearing organs
(type 2, 3 and 4). From them, elongation was limited to
11 % of the shoots, and formation of roots was observed in
some cases (3 %). In contrast, in GA3-containing media
(M13 and M14) the production of new organs was lower
than in M11 (55 and 53 %, respectively), although elongation
was induced in a percentage of shoots similar to
M11

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

แตกต่างกันถ่ายภาพกับก้านอีลองเกต การลักษณะปกติ ใบไม้เต็มรูปแบบ และ hyperhydration ไม่(เช่นพร้อมสำหรับ rooting เพียงได้พบ fig. 1 d)ใน 51 จาก calli 2703 (M1 M4) M1 เป็นยังดีกว่า M4 ในการผลิตชนิดนี้ยิง (37 vs 14หน่อ ตามลำดับ) ผลลัพธ์เหล่านี้พิจารณา M1ชัดเจนปรากฏเป็นดีกว่า M4 สำหรับเหนี่ยวนำการเกิดของอวัยวะแต่ไม่มีสื่อทดสอบความเหมาะสมสนับสนุน elongation และยิงเติบโตได้อย่างมีประสิทธิภาพ เป็นที่น่าสนใจให้สังเกตว่า ตรงข้ามกับผลของเรา พิชิต-Martı´nez และ Seguı´-Simarro (2012) เลือก M4 แทนM1 ความขัดแย้งนี้ชัดที่สามารถอธิบายความหมายจุดเวลาที่ใช้สำหรับวิเคราะห์ ในการทำงานก่อนหน้านี้ถ่ายภาพได้เรียนหลังสัปดาห์ที่ 5 (ไม่หลังจากวัฒนธรรม4 เดือนเป็นแปลง) แม้ว่า M1 และ M4 ผลิตแคลลัสเจริญเติบโตและเหนี่ยวนำยิงอัตราคล้าย M4 ส่งเสริมrooting ในอัตราสูง อย่างไรก็ตาม สุดท้ายเปอร์เซ็นต์ของทั้ง DH พืชถูกมาก justifyingจำเป็นสำหรับโพรโทคอลฟื้นฟูปรับปรุงเราขอปัจจุบันเพื่อเพิ่มอัตราปกติปรากฏ อีลองเกตถ่ายภาพ ที่เราทดสอบผลของสื่ออื่นยิงเจริญเติบโตและ elongation (ตาราง 1) เป็นขั้นตอนก่อนหน้านี้ก่อนrooting เราผลิตชุดใหม่ calli อ่างใน 1,855M1 ปานกลาง จากนั้น เรา excised 555 ถ่ายภาพกับลีฟprimordia รอบ meristem ที่มองเห็นได้ และโอนย้ายถ่ายภาพสื่อต่าง ๆ สี่: M13 M11, M12 และM14 ทั้งหมดรวม MS ปานกลาง (pH 5.8), 0.8%โรงงาน-agar และเจริญเติบโตแตกต่างกันเร็คกูเลเตอร์ ดัง M11รวมไม่เร็คกูเลเตอร์ M12 ถูกเสริม ด้วย 0.3 g/lมีเสริม BA ตามสต et al. (2011), M13ด้วย GA3 1.5 mg/l (Shivaraj และราว 2011) และM14 ถูกเสริม ด้วย 1.5 mg/l GA3 และ 8 mg/lAgNO3 (Xing et al. 2010) อย่างน้อย 124 ถ่ายภาพได้อ่างในแต่ละสื่อ 4 ครั้งแรก เราประเมินelongation ยิงหลังจาก 30 วันของวัฒนธรรม การจัดประเภทในห้าชนิดแยกกัน: ยอดตาย (0) (1) ไม่เจริญเติบโต หรือก่อตัวของอวัยวะ hyperhydrated บวม มีต้นกำเนิดไม่เจริญเติบโต (Fig. 2a); (2) การก่อตัวของใหม่ ไม่ hyperhydratedอวัยวะ แต่ไม่ elongation ก้าน (Fig. 2b); (3) การก่อตัวของใหม่ อวัยวะไม่ hyperhydrated และเกิด elongationกิน 2c); (4) รากก่อนอกจากคุณลักษณะทั้งหมดชนิดที่ 3 (Fig. 2d) ยิง พัฒนาพบจะขึ้นอยู่กับสื่อ elongation ที่ใช้ตามความทดสอบ v2 (p B 0.05) เห็นใน Fig. 3, 61% ของการถ่ายภาพอ่างใน M11 เกิดอวัยวะใหม่ ปรากฏปกติ(ชนิด 2, 3 และ 4) จากพวกเขา elongation ถูกจำกัด11% ของการถ่ายภาพ และการก่อตัวของรากที่พบในกรณีที่บาง (3%) ในทางตรงกันข้าม ใน GA3 ที่ประกอบด้วยสื่อ(M13 M14) การผลิตของอวัยวะใหม่ไม่ต่ำกว่ากว่าใน M11 (55 และ 53% ตามลำดับ), แม้ว่า elongationถูกทำให้เกิดเป็นเปอร์เซ็นต์ของยอดที่คล้ายกับM11

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

หน่อที่แตกต่างที่มีลำต้นยาวเป็นลักษณะปกติใบเกิดขึ้นอย่างเต็มที่และไม่มี hyperhydration (เช่นความพร้อมสำหรับการขจัด. รูปที่ 1 d) เท่านั้นที่สามารถสังเกตได้ใน51 ออกจาก 2703 แคลลัส (M1 M4) M1 ก็ยังดีกว่าM4 ในการผลิตประเภทของการถ่ายนี้ (37 เทียบกับ 14 ใบตามลำดับ) ทั้งหมดเหล่านี้ผลการพิจารณา M1 อย่างชัดเจนดูเหมือนจะเป็นดีกว่า M4 สำหรับการเหนี่ยวนำอวัยวะ, แต่ไม่มีของสื่อที่ได้รับการทดสอบที่เหมาะสมในการส่งเสริมการเจริญเติบโตและการยืดตัวยิงได้อย่างมีประสิทธิภาพ เป็นที่น่าสนใจที่จะทราบว่าเมื่อเทียบกับผลของเรา Corral- Martı'nezและSeguı'-Simarro (2012) เลือก M4 แทนM1 ความแตกต่างที่เห็นได้ชัดนี้สามารถอธิบายได้โดยจุดเวลาที่ใช้ในการวิเคราะห์ ในการทำงานที่ผ่านมายอดการศึกษาหลังจาก 5 สัปดาห์ที่ผ่านมาของวัฒนธรรม (ไม่ได้หลังจาก 4 เดือนขอ) แม้ว่า M1 และ M4 ผลิตแคลลัสการเจริญเติบโตและการเหนี่ยวนำการถ่ายภาพในอัตราที่ใกล้เคียงกันM4 เลื่อนการขจัดในอัตราที่สูง แต่สุดท้ายร้อยละของพืช DH ทั้งหมดอยู่ในระดับต่ำมากสมควรต้องใช้โปรโตคอลการฟื้นฟูที่ดีขึ้นเราขอนำเสนอ. เพื่อเพิ่มอัตราปกติปรากฏยาวหน่อเราได้ทดสอบผลกระทบของสื่อที่แตกต่างกันเกี่ยวกับการถ่ายภาพการเจริญเติบโตและการยืดตัว( ตารางที่ 1) เป็นขั้นตอนก่อนหน้านี้ก่อนการขจัด เราผลิตชุดใหม่ของแคลลัส 1855 เลี้ยงในกลางM1 จากพวกเราพอมี 555 ใบใบprimordia รอบเนื้อเยื่อที่มองเห็นและโอนยอดถึงสี่สื่อที่แตกต่างกัน: M11, M12, M13 และM14 ทั้งหมดของพวกเขารวมถึงสูตร MS (pH 5.8) 0.8% จากพืชอาหารเลี้ยงเชื้อและการเจริญเติบโตที่แตกต่างกันกำกับดูแลดังต่อไปนี้ M11 รวมถึงหน่วยงานกำกับดูแลไม่มี M12 ได้รับการเสริมด้วย 0.3 g / l BA ตามคอร์ตอัล (2011), M13 ก็ตบท้ายกับ1.5 mg / l GA3 (Shivaraj และราวปี 2011) และM14 ได้รับการเสริมด้วย 1.5 mg / l GA3 และ 8 มิลลิกรัม / ลิตรAgNO3 (Xing et al. 2010) อย่างน้อย 124 ใบถูกเลี้ยงในแต่ละสี่สื่อ ครั้งแรกที่เราประเมินการยืดตัวยิงหลังจาก 30 วันของวัฒนธรรมแบ่งพวกเขาในห้าชนิดที่ไม่ต่อเนื่อง: (0) ยอดตาย (1) ไม่มีการเจริญเติบโตหรือการก่อตัวของบวมอวัยวะhyperhydrated ที่มีต้นกำเนิดที่ไม่มีการเจริญเติบโต(รูปที่ 2a.); (2) การก่อตัวของใหม่ไม่มี hyperhydrated อวัยวะ แต่ไม่มีการยืดตัวของลำต้น (รูปที่ 2b.); (3) การก่อตัวของใหม่ไม่มีอวัยวะhyperhydrated ต้นกำเนิดและการยืดตัว(รูปที่ 2 c.); (4) การสร้างรากนอกเหนือไปจากคุณสมบัติทุกประเภท3 (รูป. 2d) การพัฒนายิงพบว่าขึ้นอยู่กับขนาดกลางที่ใช้ในการยืดตัวตามการทดสอบv2 (พีบี 0.05) เท่าที่เห็นในรูป 3, 61% ของยอดเลี้ยงในM11 ที่เกิดขึ้นใหม่อวัยวะปกติที่ปรากฏ(ชนิดที่ 2, 3 และ 4) จากพวกเขายืดตัวถูก จำกัด ให้11% ของยอดและการก่อตัวของรากพบว่าในบางกรณี(3%) ในทางตรงกันข้ามในสื่อ GA3 ที่มี(M13 และ M14) การผลิตของอวัยวะใหม่ต่ำกว่าในM11 (55 และ 53% ตามลำดับ) แม้การยืดตัวถูกชักนำในอัตราร้อยละของยอดที่คล้ายกับM11

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ไทยยิงยาวลำต้น ,
ลักษณะปกติเกิดขึ้นอย่างเต็มที่ใบและไม่มี hyperhydration
( เช่นพร้อมราก ; ฟิค 1D ) สามารถสังเกต
51 ออกจาก 385 แคลลัส ( M1 ? M4 ) M1 ยัง
ดีกว่า M4 ในการผลิตของการถ่ายภาพประเภทนี้ ( 37 VS 14
ยิงตามลำดับ ) ผลทั้งหมดเหล่านี้ถือว่า , M1
ชัดเจนขึ้นกว่า M4
แกโนเจเนซีส ชุมชน ,แต่ไม่มีสื่อทดสอบ มีความเหมาะสมในการส่งเสริมการเจริญเติบโตและการยืดตัว
ยิงได้อย่างมีประสิทธิภาพ เป็นที่น่าสนใจที่จะทราบว่า
เมื่อเทียบกับผลของเรา , คอก -
มาร์ทและı´เนซผสมผสานı´ - simarro ( 2012 ) เลือก M4 แทน
M1 ความแตกต่างที่ชัดเจนนี้สามารถอธิบายได้โดย
เวลาจุดใช้สำหรับการวิเคราะห์ ในงานก่อนหน้านี้
ยอดการศึกษาหลังจาก 5 สัปดาห์วัฒนธรรม ( หลังจาก
4 เดือนที่ขอ ) แม้ว่าการเติบโตของแคลลัสและผลิต M1 M4
และยิงด้วยอัตราที่คล้ายกัน M4
รากได้ในอัตราที่สูง อย่างไรก็ตาม ร้อยละสุดท้าย
พืช DH ทั้งหมดต่ำมาก เหตุผลที่ต้องปรับปรุงใหม่


) เราขอเสนอ เพื่อเพิ่มอัตราปกติปรากฏยาว
หน่อ เราทดสอบผลกระทบของสื่อที่แตกต่างกันในการถ่ายภาพ
การเจริญเติบโตและการยืดตัว ( ตารางที่ 1 ) เป็นขั้นตอนก่อนหน้าก่อน
เชียร์ เราผลิตชุดใหม่ หรือในการเพาะเลี้ยงแคลลัส
M1 ) จากพวกเขา เราตัด 555 ยอดกับใบ
ไพรม ์เดียโดยรอบเป็นเนื้อเยื่อเจริญที่มองเห็นได้และโอน
หน่อสี่สื่อที่แตกต่างกัน : m11 m12 M13 และ
, , m14 . ทั้งหมดของพวกเขารวมอาหาร MS ( pH 5.8 ) 0.8%
โรงงานวุ้นและสารควบคุมการเจริญเติบโตที่แตกต่างกัน ดังนี้ m11
รวม m12 ไม่มีเร็คกูเลเตอร์ เสริมด้วย 0.3 กรัม / ลิตร
ตาม kaur et al . ( 2011 ) , M13 เสริม
กับ 1.5 mg / l ( shivaraj GA3 และ ราว 2011 ) และเสริมด้วย
m14 1.5 มก. / ล. GA3 และ 8 มิลลิกรัม / ลิตร
agno3 ( ซิ่ง et al . 2010 ) อย่างน้อย 124 ยอด
เพาะในแต่ละสี่สื่อ ก่อนอื่น เราประเมิน
ยิงยืดตัวหลังจาก 30 วันของวัฒนธรรม แบ่งประเภทของพวกเขา
ในห้าประเภทต่อเนื่อง : ( 0 ) ยอดตาย ; ( 1 ) ไม่เติบโตหรือ
เกิดบวม hyperhydrated อวัยวะที่ไม่มีการเจริญเติบโตต้น
( รูปที่ 2A ) ; ( 2 ) การสร้างใหม่ ไม่ hyperhydrated
อวัยวะ แต่ไม่มีก้านยืด ( รูปที่ 2B ) ; ( 3 ) การพัฒนา
ใหม่ ไม่ hyperhydrated อวัยวะ
ยืดก้าน ( รูปที่ 2 ) ; ( 4 ) การสร้างรากนอกจากคุณลักษณะทั้งหมด
ประเภท 3 ( รูปที่ 2 ) ยิงพัฒนา คือ
ขึ้นอยู่กับการใช้สื่อตาม
V2 ทดสอบ ( p B ตามลำดับ ตามที่เห็นในรูปที่ 3 , 61 % ของยอด
เพาะเลี้ยง m11 รูปแบบใหม่ ปกติปรากฏอวัยวะ
( ประเภท 2 , 3 และ 4 ) จากพวกเขา ยืดเฉพาะ
11 % ของยอด และสร้างรากพบว่า
บางกรณี ( 3% ) ในทางตรงกันข้าม , ใน GA3 ที่มีสื่อ
( M13 และ m14 ) การผลิตลดลง
อวัยวะใหม่กว่าใน m11 ( 55 และ 53% ตามลำดับ แม้ว่าการยืดตัว
นำเปอร์เซ็นต์ของยอดเหมือนกัน

m11