Chicken sera rarely give nonspecifi

Chicken sera rarely give nonspecific positive agglutination reactions in this test and any pretreatment of
the sera is unnecessary. Sera from species other than chickens may sometimes cause agglutination of
chicken RBCs resulting in nonspecific agglutination. Therefore, each serum should first be tested for
this idiosyncrasy and, if present, it should be inhibited by adsorption of the serum with chicken RBCs.
This is done by adding 0.025 ml of packed chicken RBCs to each 0.5 ml of antisera, mixing gently and
leaving for at least 30 minutes; the RBCs are then pelleted by centrifugation at 800 g for 2–5 minutes
and the adsorbed sera are decanted. Alternatively, RBCs of the avian species under investigation
could be used. Nonspecific inhibition of agglutination can be caused by steric inhibition when the H
antigen and serum in the HI test have the same N subtype. The steric inhibition reaction can result in
RBC buttoning in the bottom of the plate or streaming at the same rate as the control. To prevent steric
nonspecific inhibition the H antigen used to test unknown serum must be of a different N subtype than
the unknown sera, or the H antigen use can be recombinant or purified H protein that lacks N protein.
The HI test is based on antigenic binding between the H antigen and antisera and thus other factors
may cause nonspecific binding of the H antigen and sera leading to a nonspecific inhibition reaction. At
this time there are no documented cross reactions or nonspecific inhibition reactions between the
different haemagglutinin subtypes of influenza A.
The neuraminidase-inhibition test has been used to identify the influenza A neuraminidase type of
isolates as well as to characterise the antibody in infected birds. The procedure requires specialised
expertise and reagents; consequently this testing is usually done in an OIE Reference Laboratory. The
DIVA (differentiating infected from vaccinated animals) strategy used in Italy also relies on a serological
test to detect specific anti-N antibodies; the test procedure has been described (Capua et al., 2003).

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ซีรั่มไก่ไม่ค่อยให้เกิดปฏิกิริยาการจับกลุ่มบวกเชิญชมในการทดสอบนี้และปรับสภาพใด ๆ
ซีรั่มที่ไม่จำเป็น ซีรั่มจากสายพันธุ์อื่น ๆ นอกเหนือจากไก่บางครั้งอาจทำให้เกิดการจับกลุ่มของ
เม็ดเลือดแดงไก่ที่มีผลในการเกาะติดกันเชิญชม ดังนั้นซีรั่มแต่ละครั้งแรกควรจะทดสอบสำหรับ
นิสัยนี้และถ้ามีก็ควรจะยับยั้งโดยการดูดซับของซีรั่มที่มีเม็ดเลือดแดงไก่.
นี้จะกระทำโดยการเพิ่ม 0.025 มิลลิลิตรของเม็ดเลือดแดงไก่บรรจุให้แต่ละ 0.5 มิลลิลิตรฉีดผสมเบา ๆ และ
ทิ้งไว้อย่างน้อย 30 นาที เม็ดเลือดแดงจะมีเม็ดแล้วโดยการหมุนเหวี่ยงที่ 800 กรัมสำหรับ 2-5 นาที
และซีรั่มที่มีการดูดซับ decanted อีกทางเลือกหนึ่งเม็ดเลือดแดงของสายพันธุ์นกภายใต้การตรวจสอบ
สามารถนำมาใช้ การยับยั้งที่ไม่เฉพาะเจาะจงของการเกาะติดกันอาจเกิดจากการยับยั้ง steric เมื่อ H
แอนติเจนและซีรั่มในการทดสอบ HI มีชนิดย่อยไม่มีข้อความเดียวกัน ปฏิกิริยาการยับยั้ง steric สามารถทำให้
RBC buttoning ในด้านล่างของแผ่นหรือสตรีมมิ่งในอัตราเดียวกับการควบคุม เพื่อป้องกันไม่ให้ steric
ยับยั้งเชิญชมแอนติเจน H ใช้ในการทดสอบซีรั่มที่ไม่รู้จักจะต้องเป็นชนิดย่อยยังไม่มีข้อความที่แตกต่างจาก
ซีรั่มที่ไม่รู้จักหรือใช้แอนติเจน H สามารถโปรตีน H หรือ recombinant บริสุทธิ์ที่ขาดโปรตีน N. การ
ทดสอบ HI จะขึ้นอยู่กับแอนติเจนผูกพัน ระหว่างแอนติเจนเอชและมาฉีดและทำให้ปัจจัยอื่น ๆ ที่
อาจก่อให้เกิดผลผูกพันเชิญชมของแอนติเจน H และซีรั่มที่นำไปสู่การยับยั้งปฏิกิริยาเชิญชม ใน
เวลานี้จะไม่มีการเกิดปฏิกิริยาระหว่างเอกสารหรือยับยั้งปฏิกิริยา nonspecific ระหว่าง
เชื้อ haemagglutinin แตกต่างกันของ A. ไข้หวัดใหญ่
ทดสอบ neuraminidase-ยับยั้งได้ถูกนำมาใช้เพื่อระบุไข้หวัดใหญ่ชนิด neuraminidase ของ
สายพันธุ์เช่นเดียวกับลักษณะแอนติบอดีในนกที่ติดเชื้อ ขั้นตอนที่ต้องใช้ความเชี่ยวชาญ
ชำนาญและน้ำยา; ดังนั้นการทดสอบนี้มักจะทำในห้องปฏิบัติการอ้างอิง OIE
DIVA (ความแตกต่างของการติดเชื้อจากสัตว์ฉีดวัคซีน) กลยุทธ์ที่ใช้ในอิตาลียังขึ้นอยู่กับภูมิคุ้มกัน
ทดสอบเพื่อตรวจหาแอนติบอดีที่เฉพาะเจาะจงต่อต้าน-N; ขั้นตอนการทดสอบได้รับการอธิบาย (ปัว et al., 2003)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เซร่า ไก่ไม่ค่อยให้เจาะจงบวกปฏิกิริยาการจับกลุ่มในการทดสอบและการ
( ไม่จำเป็น ซีรั่มชนิดอื่นกว่าไก่อาจทำให้บางครั้งการจับกลุ่มของ
ไก่ rbcs ผลในการติดเชื้อการจับกลุ่ม ดังนั้นในแต่ละระดับแรกควรจะทดสอบ
ลักษณะเฉพาะนี้ ถ้าปัจจุบันมันควรจะถูกยับยั้งโดยการดูดซับเซรั่มกับไก่ rbcs .
นี้จะกระทำโดยการเพิ่ม 0.025 ml บรรจุไก่ rbcs แต่ละ 0.5 ml ของแอนติ ผสมเบาๆ
ทิ้งไว้อย่างน้อย 30 นาที และ rbcs แล้วอัดเม็ด โดยปั่นที่ 800 กรัม 2 – 5 นาที
และดูดซับเซราเป็น ริน . อีกวิธีหนึ่งคือ rbcs ของสายพันธุ์นกในการสืบสวน
อาจจะใช้การยับยั้งการจับกลุ่ม อาจเกิดจากการติดเชื้อของเอ ยับยั้ง เมื่อ H
แอนติเจนและซีรั่มในการทดสอบเดียวกันมีทั้ง Hi n . ปฏิกิริยาเอสามารถยับยั้งผลการติดกระดุม
RBC ในด้านล่างของจานหรือสตรีมมิ่งในอัตราเดียวกับการควบคุม เพื่อป้องกันการติดเชื้อ ยับยั้ง เอ
H แอนติเจนที่ใช้ทดสอบซีรั่มไม่ทราบต้องแตกต่างกว่า
n กลุ่ม( ที่ไม่รู้จักหรือ H แอนติเจนใช้สามารถรีคอมบิแนนท์โปรตีน หรือที่ขาดโปรตีนบริสุทธิ์ H N .
ทดสอบไงขึ้นอยู่กับชนิดผูกพันระหว่าง H แอนติเจนและแอนติและปัจจัยอื่น ๆอาจทำให้เกิดการติดเชื้อ
( H แอนติเจนและเซร่าที่นำไปสู่ปฏิกิริยายับยั้งการติดเชื้อ . ที่
คราวนี้ไม่มีเอกสารข้ามปฏิกิริยาหรือปฏิกิริยายับยั้งการติดเชื้อระหว่างชนิดย่อยของไข้หวัดใหญ่ A ที่แตกต่างกัน haemagglutinin

นิวรามินิเดสยับยั้งการทดสอบถูกใช้เพื่อระบุชนิดของเชื้อไข้หวัดใหญ่นิวรามินิเดส
เช่นเดียวกับชันแอนติบอดีในนกที่ติดเชื้อ ขั้นตอนที่ต้องใช้ความเชี่ยวชาญและสารเคมีเฉพาะ
;ดังนั้นการทดสอบนี้มักจะทำในองค์กรที่อ้างอิงทางห้องปฏิบัติการ
Diva ( การติดเชื้อจากวัคซีนสัตว์ ) กลยุทธ์ที่ใช้ใน อิตาลี ยังอาศัยการทดสอบเพื่อตรวจหาแอนติบอดีที่เฉพาะเจาะจงมาก
anti-n ; ขั้นตอนการทดสอบได้รับการอธิบาย ( คาปัว et al . , 2003 )