The dense andcompact nature of the

The dense and
compact nature of the chrysanthemum canopy limits the radiation interception reducing the canopy photosynthesis (Clemson
Extension, 1995). Therefore, this work attempted to (i) test the
biochemical model of photosynthesis (Sharkey et al., 2007 and
references there in) for a short and dense canopy of pot chrysanthemum under variable levels of irradiance, CO2concentrations and
leaf temperatures, in comparison with the leaf model of photosynthesis (Thornley and Cannell, 2004), (ii) estimate the contribution
of leaf photosynthetic rate of different leaf strata on the canopy
photosynthetic rate, and (iii) estimate the light distribution and
net assimilation rates within the pot chrysanthemum canopy for
integrating greenhouse environment control with cultural canopy
management.
2. Materials and methods
2.1. Cultural conditions and environment control
Three step glass house experiments were conducted for
chrysanthemum cv. Covington at 3 weeks before the flower bud
initiation (8–10 weeks after transplanting) during December 2007.
Rooted cuttings of chrysanthemum obtained from a commercial
propagator (Yoder Toddington, Littlehampton, UK) were transplanted in 14 cm diameter pots, containing 80% sphagnum peat
(Evergreen, Tyrone, N. Ireland) and 20% bark growing medium (Sinclair, Lincoln, England). Pots were placed on raised benches in a fully
automated greenhouse at Wellesbourne, UK (latitude: 52.2
◦
N; longitude: −1.59
◦
E). The initial density was 25 pots m−2
and parted
to 14.5 pots m−2
six weeks after transplanting. A mineral solution
derived from Van de Vooren et al. (1986) with pH of 5.2–5.9 and
conductivity of 2.4 mS cm
−1
was delivered to plants through the
Priva Inte´ ıgro “Nutrifix” dosing unit (De Lier, The Netherlands). The
composition of nitrate-N, P and K in the nutrient solution was 6,
0.5 and 2.4 mmol L
−1
, respectively while other macro elements (at
the range of 0.6–1.4 mmol L
−1
) and trace elements (at the range of
0.5–8 mol L
−1
) were also included. In order to increase vegetative
vigour, a high EC feed solution was used during early vegetative
growth (5 mS cm
−1
) and reduced gradually to 2.4 mS cm
−1
during
3–6 weeks after transplanting. The number of fertigation cycles was
determined based on the incident solar radiation. The day and night
temperatures (21
◦
C and 16
◦
C, respectively), and short days (13 h
nights) were maintained during the experimental period. Supplemental lighting was given during the day by 150 W high-pressure
sodium lamps (HPSL) mounted at a rate of 9.6 m−2
per lamp. Overall climate control was manoeuvred via a LCC 1200 Super 4 climate
computer (DGT-V2.4, Volumatic, Denmark) as described by Adams
et al. (2002).
2.2. Leaf photosynthesis measurements
Leaf net photosynthetic rate (A) was measured during the late
vegetative growth stage using a portable infrared gas analyser
(IRGA) system (PP Systems model CIRAS-1, Amesbury, MA, USA).
Measurements were made following the protocol described by
Parsons et al. (1997). The relative humidity of the incoming air in to
the IRGA chamber was maintained within 40–80%. Photosynthetically Active Radiation (PAR) (Q), CO2concentration (Ci
) and air/leaf
temperature in the leaf chamber (T1) were the independent variables that were varied within specific ranges as described under
Section 2.3. Net rate of photosynthesis (A) was estimated based on
the deficit CO2concentration in the incoming and outgoing air in
the leaf chamber. In each experiment, measurements were made
in 1–3 leaves per plant and in six plant replicates. Measurements
taken from three plants were used to derive the model parameters presented in Table 1 and other three plants to represent the
observed values in subsequent figures.
2.3. Series of experiments
In the first experiment (Expt. I), response of A to increase in partial pressure of CO2(A/Ci
) was determined by keeping the PAR at
2000 mol m−2
s
−1
and the air temperature at 20
◦
C. Chrysanthemum leaves located at the mid canopy (5–7th leaf from the apical
bud) were used to determine A at Ci in the range of 100–1000 ppm.
In the second experiment (Expt. II) the response of A to varying
PAR (A/Q) and leaf temperatures were examined. Four different air
temperatures (∼12.5, 20, 28.8 and 36.2
◦
C) and two CO2set points
in the leaf chamber (380 and 1000 ppm) were used. Leaf net photosynthetic rate was estimated at the mid canopy at five PAR levels

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

หนาแน่น และกระชับลักษณะของขีดจำกัดฝาครอบเบญจมาศสกัดกั้นรังสีที่ลดการสังเคราะห์ด้วยแสงฝาครอบ (Clemsonนามสกุล 1995) ดังนั้น งานนี้พยายามที่จะ (i) ทดสอบรุ่นชีวเคมีของการสังเคราะห์ด้วยแสง (Sharkey et al., 2007 และอ้างอิงมีใน) สำหรับฝาครอบที่สั้น และหนาแน่นของเบญจมาศกระถางภายใต้ตัวแปรระดับ irradiance, CO2concentrations และใบอุณหภูมิ เมื่อเปรียบเทียบกับแบบใบสังเคราะห์ด้วยแสง (Thornley และ Cannell, 2004), (ii) ประเมินผลอัตรา photosynthetic ใบของใบไม้ต่าง ๆ ชั้นบนฝาครอบอัตรา photosynthetic และ (iii) ประเมินการกระจายแสง และราคาสุทธิผสมภายในฝาครอบเบญจมาศกระถางสำหรับรวมเรือนกระจกควบคุมสภาพแวดล้อมกับฝาครอบทางวัฒนธรรมการจัดการ2. วัสดุและวิธีการ2.1. วัฒนธรรมเงื่อนไขและสภาพแวดล้อมการควบคุมสามขั้นตอนแก้วบ้านทดลองได้ดำเนินการพันธุ์เบญจมาศ Covington ที่ 3 สัปดาห์ก่อนฟลาวเวอร์บัดเริ่มต้นที่ (8-10 สัปดาห์หลัง transplanting) ในเดือนธันวาคมปี 2550ราก cuttings เบญจมาศที่ได้รับจากการพาณิชย์propagator (Yoder Toddington, Littlehampton, UK) ได้ transplanted ในกระถางเส้นผ่าศูนย์กลาง 14 ซม. ประกอบด้วยพรุยาก 80%(เอเวอร์กรีน Tyrone ไอร์แลนด์ตอนเหนือ) และ 20% เปลือกเติบโตปานกลาง (นแคลร์ ลินคอล์น อังกฤษ) หม้อใส่ในแถวยกตัวอย่างเรือนกระจกโดยอัตโนมัติที่ Wellesbourne, UK (ละติจูด: 52.2◦N ลองจิจูด: −1.59◦อี) ความหนาแน่นเริ่มต้น 25 หม้อ m−2และ partedการ m−2 หม้อ 14.5หกสัปดาห์หลัง transplanting ปัญหาแร่มาจาก Van de Vooren et al. (1986) มี pH 5.2-5.9 และนำของ 2.4 mS ซม.−1ไปพืชที่ผ่านการPriva Inte´ ıgro "Nutrifix" ในหน่วย (เด Lier ประเทศเนเธอร์แลนด์) ที่องค์ประกอบของไนเตรต-N, P และ K ในโซลูชันธาตุอาหารถูก 60.5 และ 2.4 mmol L−1ตามลำดับในขณะที่องค์ประกอบ (ที่โคอื่น ๆช่วง 0.6-1.4 mmol L−1) และติดตามองค์ประกอบที่หลากหลาย0.5 – 8 โมล L−1) ก็ยังอยู่ การเพิ่มผักเรื้อรังเฟะ EC สูงอาหารราคาโซลูชั่นถูกใช้ในระหว่างต้นผักเรื้อรังเจริญเติบโต (5 mS ซม.−1) และค่อย ๆ ลด 2.4 mS ซม.−1ในระหว่างการ3 – 6 สัปดาห์หลัง transplanting จำนวน fertigation เนื่องจากวงจรได้กำหนดตามรังสีแสงอาทิตย์เหตุการณ์ วันและคืนอุณหภูมิ (21◦C และ 16◦C ตามลำดับ), และสั้น (13 h วันคืน) ถูกรักษาไว้ในระหว่างระยะเวลาทดลอง แสงสว่างเพิ่มเติมถูกจัดขึ้นในระหว่างวัน โดย 150 W ปั้มหลอดโซเดียม (HPSL) ติดตั้งในอัตรา 9.6 m−2ต่อหลอดไฟ โดยรวม อุณหภูมิถูก manoeuvred ทางสภาพภูมิอากาศ 4 ซูเปอร์ 1200 LCCคอมพิวเตอร์ (DGT V2.4, Volumatic เดนมาร์ก) อธิบายไว้โดย Adamsal. ร้อยเอ็ด (2002)2.2. ใบวัดการสังเคราะห์ด้วยแสงใบสุทธิอัตรา photosynthetic (A) ที่วัดระหว่างเอระยะเจริญเติบโตของผักเรื้อรังใช้ analyser แก๊สอินฟราเรดแบบพกพา(IRGA) ระบบ (ระบบ PP รุ่น CIRAS-1 อัมสบิวรี่ MA สหรัฐอเมริกา)วัดได้ทำการต่อโดยโพรโทคอลพาร์สันส์และ al. (1997) ความชื้นสัมพัทธ์ของอากาศขาเข้าในการหอ IRGA ถูกรักษาภายใน 40 – 80% Photosynthetically Active รังสี (หุ้น) (Q), CO2concentration (Ci) และอากาศ /อุณหภูมิในห้องใบไม้ (T1) มีตัวแปรอิสระที่มีแตกต่างกันในช่วงหนึ่ง ๆ ตามที่อธิบายไว้ภายใต้ส่วน 2.3 สุทธิอัตราการสังเคราะห์ด้วยแสง (A) ได้ประเมินตามดุล CO2concentration ในอากาศขาเข้า และขาออกในท่อใบนี้ ได้ทำการประเมินในแต่ละการทดลองใน 1-3 ใบต่อต้น และ ใน 6 โรงงานเหมือนกับ วัดนำมาจากสามใช้พืชสามารถรับพารามิเตอร์รูปแบบที่แสดงในตารางที่ 1 และพืชอื่น ๆ สามถึงค่าสังเกตในตัวเลขที่ตามมา2.3. ชุดทดลองในการทดลองครั้งแรก (Expt. ค่ะ การตอบสนองของการเพิ่มความดันบางส่วนของ CO2(A/Ci) กำหนด โดยหุ้นที่รักษาm−2 2000 โมลs−1และอุณหภูมิอากาศที่ 20◦C. เบญจมาศใบอยู่ที่ฝาครอบกลาง (5-7 ใบจากปลายยอดดอกตูม) ถูกใช้เพื่อกำหนด A ที่ Ci ในช่วง 100-1000 ppmในการทดลอง 2 (Expt. II) การตอบสนองของ A จะแตกต่างกันราคาพาร์ (A / Q) และอุณหภูมิใบถูกตรวจสอบ อากาศแตกต่างกัน 4อุณหภูมิ (∼12.5, 20, 28.8 และ 36.2◦C) และ CO2set สองจุดในห้องใบไม้ (380 และ 1000 ppm) ใช้ ใบสุทธิ photosynthetic อัตราได้ประมาณที่ฝาครอบกลางระดับพาร์ 5

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

หนาแน่นและธรรมชาติที่มีขนาดกะทัดรัดของทรงพุ่มดอกเบญจมาศ จำกัด การสกัดกั้นรังสีลดการสังเคราะห์แสงหลังคา (เคลมขยาย1995) ดังนั้นงานนี้พยายามที่จะ (i) การทดสอบแบบจำลองทางชีวเคมีของการสังเคราะห์แสง(ชาร์กี้ et al., 2007 และการอ้างอิงมีใน) สำหรับหลังคาสั้นและมีความหนาแน่นของหม้อดอกเบญจมาศภายใต้ระดับตัวแปรของรังสี, CO2concentrations และอุณหภูมิใบในการเปรียบเทียบกับรูปแบบใบสังเคราะห์ (ธ อร์นและ Cannell, 2004), (ii) การประเมินผลงานของใบอัตราการสังเคราะห์แสงของชั้นใบแตกต่างกันบนหลังคาอัตราการสังเคราะห์แสง, และ (iii) ประเมินการกระจายแสงและอัตราการดูดซึมสุทธิเป็นหลังคาหม้อดอกเบญจมาศสำหรับการบูรณาการการควบคุมสภาพแวดล้อมเรือนกระจกที่มีหลังคาวัฒนธรรมการจัดการ. 2 วัสดุและวิธีการ2.1 เงื่อนไขทางวัฒนธรรมและการควบคุมสภาพแวดล้อมสามขั้นตอนการทดลองบ้านแก้วได้รับการดำเนินการสำหรับพันธุ์ดอกเบญจมาศ โควิงตัน 3 สัปดาห์ก่อนที่ตาดอกเริ่มต้น(8-10 สัปดาห์หลังปลูก) ในช่วงเดือนธันวาคม 2007 รากตัดของดอกเบญจมาศที่ได้รับจากการค้าแผ่กระจาย (Yoder Toddington, ลิตสหราชอาณาจักร) ได้รับการปลูกในกระถาง 14 ซม. เส้นผ่าศูนย์กลาง 80% ที่มีมอส พีท (เอเวอร์กรีน, ไทโรนเอ็นไอร์แลนด์) และ 20% เปลือกขนาดกลางที่กำลังเติบโต (ซินแคลลิงคอล์น, อังกฤษ) หม้อถูกวางไว้บนม้านั่งยกขึ้นในอย่างเต็มที่เรือนกระจกอัตโนมัติที่ Wellesbourne, สหราชอาณาจักร (ละติจูด: 52.2 ◦ไม่มี; ลองจิจูด: -1.59 ◦ E) ความหนาแน่นเริ่มต้น 25 หม้อม. 2 และแยกเป็น 14.5 หม้อม. 2 หกสัปดาห์หลังจากย้ายปลูก วิธีการแก้ปัญหาแร่ที่ได้มาจากแวนเดอ Vooren et al, (1986) ที่มีค่า pH 5.2-5.9 และการนำ2.4 มิลลิเซนติเมตร-1 ถูกส่งไปยังพืชผ่านPriva Inte' ผู้อื่น "Nutrifix" หน่วยยา (เดอลิ, เนเธอร์แลนด์) องค์ประกอบของไนเตรต-N, P และ K ในสารละลายธาตุอาหารคือ 6, 0.5 และ 2.4 มิลลิโมล L -1 ตามลำดับในขณะที่องค์ประกอบแมโครอื่น ๆ (ในช่วง0.6-1.4 มิลลิโมลลิตร-1) และธาตุ (ในช่วง ของ 0.5-8? mol L -1) นอกจากนี้ยังได้รวม เพื่อเพิ่มการเจริญเติบโตแข็งแรงเป็นทางออกที่สูงฟีด EC ถูกนำมาใช้ในช่วงต้นพืชเจริญเติบโต(5 มิลลิซม. -1) และค่อย ๆ ลดลงถึง 2.4 มิลลิเซนติเมตร -1 ในช่วง3-6 สัปดาห์หลังปลูก จำนวนรอบ fertigation ถูกกำหนดขึ้นอยู่กับเหตุการณ์ที่เกิดขึ้นรังสีดวงอาทิตย์ วันและกลางคืนอุณหภูมิ (21 ◦ C และ 16 ◦ C ตามลำดับ) และวันสั้น (13 ชั่วโมงคืน) ได้รับการดูแลในช่วงระยะเวลาการทดลอง แสงเสริมที่ได้รับในระหว่างวันที่ 150 W แรงดันสูงโคมไฟโซเดียม(HPSL) ที่ติดตั้งอยู่ในอัตรา 9.6 เมตร 2 ต่อหลอดไฟ ควบคุมอุณหภูมิและความชื้นโดยรวมได้รับการย้ายผ่าน LCC 1200 ซูเปอร์ 4 สภาพภูมิอากาศคอมพิวเตอร์(DGT-v2.4, Volumatic, เดนมาร์ก) ตามที่อธิบายไว้โดยอดัมส์และอัล (2002). 2.2 ใบวัดการสังเคราะห์แสงอัตราการสังเคราะห์แสงใบสุทธิ (A) วัดในช่วงปลายเจริญเติบโตของพืชขั้นตอนการใช้เครื่องวิเคราะห์ก๊าซชนิดอินฟราเรดแบบพกพา(Irga) ระบบ (PP ระบบรูปแบบ CIRAS-1 Amesbury, MA, USA). วัดได้ทำต่อไปนี้โปรโตคอลที่อธิบายไว้ โดยพาร์สันส์และอัล (1997) ความชื้นสัมพัทธ์ของอากาศที่เข้ามาในห้อง Irga ถูกเก็บรักษาไว้ภายใน 40-80% สังเคราะห์รังสีที่ใช้งาน (PAR) (Q) CO2concentration (Ci) และอากาศ / ใบอุณหภูมิในห้องใบ(T1) เป็นตัวแปรอิสระที่มีความแตกต่างกันในช่วงที่เฉพาะเจาะจงตามที่อธิบายไว้ภายใต้มาตรา2.3 อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (A) เป็นที่คาดกันขึ้นอยู่กับCO2concentration การขาดดุลในอากาศเข้าและขาออกในห้องใบ ในการทดลองแต่ละวัดที่ถูกสร้างขึ้นมา1-3 ใบต่อต้นและหกซ้ำโรงงาน วัดที่นำมาจากสามพืชถูกนำมาใช้เพื่อให้ได้พารามิเตอร์แบบแสดงในตารางที่ 1 และอีกสามพืชเพื่อเป็นตัวแทนของค่าสังเกตในตัวเลขที่ตามมา. 2.3 ชุดการทดลองในการทดลองครั้งแรก (Expt. I) การตอบสนองของการเพิ่มขึ้นของความดันบางส่วนของ CO2 (A / Ci) ถูกกำหนดโดยการรักษา PAR ที่2000 ม. ​​mol-2 s -1 และอุณหภูมิของอากาศที่ 20 ◦ซี ดอกเบญจมาศใบตั้งอยู่ที่หลังคากลาง (ใบ 5-7th จากปลายตา) ถูกนำมาใช้ในการตรวจสอบในเวลา Ci ในช่วง 100-1,000 ppm. ในการทดลองที่สอง (Expt. II) การตอบสนองของ A จะแตกต่างกันPAR ( A / Q) และอุณหภูมิที่มีการตรวจสอบใบ สี่อากาศที่แตกต่างกันอุณหภูมิ (~12.5, 20, 28.8 และ 36.2 ◦ C) และสองจุด CO2set ในห้องใบ (380 และ 1,000 ppm) ถูกนำมาใช้ อัตราการสังเคราะห์แสงใบสุทธิอยู่ที่ประมาณหลังคากลางที่ห้าระดับ PAR

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ธรรมชาติกระชับหนาแน่นและ
ของเบญจมาศหลังคาจำกัดรังสีสกัดกั้นลดหลังคาการสังเคราะห์แสง ( เคลม
ส่วนขยาย , 1995 ) ดังนั้น งานนี้ได้ ( 1 ) ทดสอบทางชีวเคมีของการสังเคราะห์โมเดล
( ชาร์กี้ et al . , 2007 และ
อ้างอิงอยู่ ) สำหรับในระยะสั้นและทรงพุ่มทึบ หม้อเก๊กฮวยภายใต้ระดับของตัวแปรดังกล่าว co2concentrations
, และอุณหภูมิในการเปรียบเทียบกับใบใบรูปแบบของการสังเคราะห์แสง ( ทอร์นลีย์ และ แคนเนล , 2004 ) , ( ii ) การบริจาค
ใบสังเคราะห์แสงคะแนนของชั้นของใบแตกต่างกันบนหลังคา
1 อัตรา และ ( 3 ) ประเมินการกระจายของแสงและอัตราการดูดซึมสุทธิภายในหม้อ

รวมการควบคุมสภาพแวดล้อมเบญจมาศหลังคาสำหรับ เรือนกระจกกับ
หลังคาทางวัฒนธรรมการจัดการ .
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . เงื่อนไขทางวัฒนธรรมและการควบคุมสิ่งแวดล้อม
3 บ้านแก้วขั้นตอนการทดลองสำหรับ
ดอกเบญจมาศพันธุ์ โควิงตันใน 3 สัปดาห์ก่อนที่ดอกไม้ดอกตูม
เริ่มต้น ( 8 – 10 สัปดาห์หลังปลูก ) ในเดือนธันวาคม 2007 .
ตัดรากของดอกเบญจมาศที่ได้จากโฆษณา
แผ่กระจาย ( โยเดอร์ Toddington Littlehampton , ,สหราชอาณาจักร ) 14 ซม. นำลงปลูกในกระถางที่มี 80% พืชมอสพีท
( เอเวอร์กรีน , ไทโรน , ไอร์แลนด์เหนือ ) และ 20% เปลือกกลางเติบโต ( ซินแคลร์ ลินคอล์น อังกฤษ ) กระถางที่ถูกวางไว้บนม้านั่งในเต็มอัตโนมัติยก
เรือนกระจกที่จักร , UK ( ละติจูด : 52.2
◦
n ; ลองจิจูด : − 4 ◦
e
) ความหนาแน่นเริ่มต้น 25 หม้อ m − 2

ไปแยกกระถาง 14.5 m − 2
6 สัปดาห์ หลังย้ายกล้าเป็นแร่ที่ได้มาจาก แวนโซลูชั่น
vooren et al . ( 1986 ) ที่มี pH 5.2 – 5.9 และค่า


ขนาด 2.4 ms − 1 ถูกส่งมอบให้กับโรงงานผ่าน
priva inte ใหม่ı Gro " nutrifix " ยา ( หน่วยเดอเลียร์ , เนเธอร์แลนด์ )
nitrate-n องค์ประกอบของฟอสฟอรัสและโพแทสเซียมในสารละลายธาตุอาหารได้ 6
0.5 และ 2.4 มิลลิโมล L
− 1
ตามลำดับในขณะที่องค์ประกอบแมโครอื่น ๆ ( ที่
ช่วง 0.6 – 1.4 mmol l

− 1) และธาตุ ( ในช่วง 0.5 – 8  โมล
L
− 1
) รวมอยู่ด้วย เพื่อเพิ่มแรงดึงและ
สารละลาย EC สูงใช้ในช่วงต้นและการเจริญเติบโต (
5 ms cm − 1

) และค่อยๆลดลง 2.4 ms cm − 1


3 – 6 ในระหว่างสัปดาห์ หลังย้ายกล้า จำนวนรอบของน้ำคือ
ตัดสินใจบนพื้นฐานเรื่องแสงรังสี วันและคืน

อุณหภูมิ ( 21◦
C

C ◦และ 16 ตามลำดับ ) และวันสั้นๆ ( 13 ชม.
คืน ) ถูกเก็บรักษาไว้ในช่วงระยะเวลาทดลอง เสริมแสงสว่างได้รับในระหว่างวัน 150 w
โคมไฟโซเดียมแรงดันสูง ( hpsl ) ติดตั้งในอัตรา 9.6 m − 2
/ โคมไฟ การควบคุมบรรยากาศโดยรวม manoeuvred ผ่าน LCC 1200 ซูเปอร์คอมพิวเตอร์ 4 บรรยากาศ
( dgt-v2.4 volumatic , เดนมาร์ก ) ตามที่อธิบายไว้โดย Adams
et al . ( 2545 ) .
2.2 .ใบหญ้าใบอัตราสังเคราะห์แสงสุทธิการวัด
( ) เป็นวัดในช่วงดึก
การเจริญเติบโตพืชเวทีโดยใช้อินฟราเรดแบบพกพาก๊าซวิเคราะห์
( irga ) ระบบ ( แบบระบบ PP ciras-1 Amesbury , MA , USA ) .
วัดได้ตามขั้นตอนที่อธิบายโดย
พาร์สัน et al . ( 1997 ) ความชื้นสัมพัทธ์ของอากาศที่เข้ามาใน irga
ห้องไว้ภายใน 40 – 80 %photosynthetically ปราดเปรียวรังสี ( PAR ) ( q ) co2concentration ( CI
) และอุณหภูมิในอากาศ / ใบ
ใบแชมเบอร์ ( T1 ) มีตัวแปรอิสระที่หลากหลายภายในบางช่วงตามที่อธิบายไว้ภายใต้
ส่วน 2.3 อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ ( ) คือประมาณการตาม
ขาดดุล co2concentration ในขาเข้าและขาออกในอากาศ
ใบในห้อง ในแต่ละการทดลองวัดได้
1 – 3 ใบต่อต้น และใน 6 โรงงาน ได้แก่ การวัด
ถ่ายจากสามพืชถูกใช้เพื่อให้ได้พารามิเตอร์ที่แสดงในตารางที่ 1 และ 3 พืชแทน
สังเกตค่าในตัวเลขที่ตามมา
2.3 ชุดของการทดลองในการทดลองที่ 1 ( EXPT .
) , การตอบสนองของการเพิ่มความดันในบางส่วนของ CO2 ( / CI
) ถูกกำหนดโดยการรักษาเทียบเท่าใน
2000  mol m −− 1
2
s
และอากาศที่อุณหภูมิ 20

c เบญจมาศ◦ใบอยู่ที่หลังคากลาง ( จากใบบัดปลาย
5 – 7 ) ถูกใช้เพื่อตรวจสอบที่ CI ในช่วง 100 - 1 , 000 ส่วนในล้านส่วน .
ในการทดลองที่สอง ( EXPT . 2 ) การตอบสนองของการเปลี่ยนพาร์ (
/ Q ) และอุณหภูมิใบตรวจร่างกาย อุณหภูมิอากาศที่แตกต่างกัน 4
( ∼ 12.5 , 20 , 288 และ 36.2
◦
c ) และสองจุด co2set
ในใบ ( ห้อง 380 และ 1000 ppm ) สถิติที่ใช้ อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิของใบประมาณ 5 ระดับ โดยทรงพุ่มกลาง