PBMCs are re-suspended in RPMI -10% (or RPMI -0 if RPMI -20% was used to prepare the antigen plates) and should not sit for more than one hour at room temperature. Do not place the cells on ice.
5.22.6. Count ≥300 cells for white blood count and ≥100 cells for viability. Adjust PBMC concentration to 1x106 viable cells/mL for dispensing into culture wells. For Pediatric protocols, some wells may be omitted if not enough PBMCs are obtained; follow guidelines in the protocol or the PIIS.
6. ASSAY SETUP
6.1.1. Thaw antigen/mitogen culture plates at 37°C in an incubator. Label the tissue culture plate with patient identification (PID), date plated, date to be pulsed with isotope and harvested.
6.1.2. Dispense 100μL of the PBMC suspension (106 cells/mL or 100,000 cells per well) into culture wells. Be certain to keep cells suspended, by gentle mixing, while the cells are being dispensed. Cells should be dispensed as soon as possible in order to avoid the medium becoming alkaline. This is day 0. It may be necessary to store LPA plates in bags inside the incubator if lack of humidity is a problem.
7. HARVESTING AND COUNTING
7.1. On the morning of day 6, pulse plates with 25μL/well (1μCi/well) of [H3]TdR.
7.2. After six hours, harvest on glass fiber filters using a cell harvester. If the cell harvester is not in a biohazard hood or splashing during harvesting is a concern, then add 25μL/well of a 5% Triton X-100 detergent solution to inactivate HIV. If harvesting can not be done immediately after the six-hour pulse, plates may be stored at –20°C until harvesting. Do not store plates at –20°C for more than a few days. Do not add Triton X-100 to plates prior to freezing because it causes bubbles during thawing.
7.3. After harvesting, filters are allowed to dry at room temperature on the bench top, punched-out into scintillation vials, or the filter sheets are processed for counting in a betaplate counter. Add scintillation fluid to vials/filters and leave filters in scintillation fluid according to the manufacturer’s directions prior to counting. Count vials/filters on a beta scintillation counter at laboratory-determined settings to measure counts per minute (cpm).
8. CALCULATIONS AND REPORTING OF RESULTS
8.1. LPA data can be expressed and calculated in two different ways following determination of mean values (e.g. from triplicates, quadruplicates); both methods make biological sense. Because the stimulation index (SI) is a ratio, it is greatly influenced by biologically insignificant variations in the low cpm levels of background, unstimulated wells.
8.2. SI = (cpm experimental/ cpm background unstimulated)
8.3. Net counts or cpm = (cpm experimental - cpm background unstimulated)
8.4. For multicenter trials, agreement is slightly better if the SI calculation is used, since the efficiency of counting of different scintillation counters varies. Raw data (cpm) from each culture well shall be entered electronically onto Excel®-based
PBMCs จะมาแขวนลอยใน RPMI -10% (หรือ RPMI -0 ถ้า RPMI% -20 ถูกนำมาใช้เพื่อเตรียมความพร้อมแผ่นแอนติเจน) และไม่ควรนั่งเป็นเวลานานกว่าหนึ่งชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง อย่าวางเซลล์บนน้ำแข็ง.
5.22.6 นับ≥ 300 เซลล์เม็ดเลือดขาวและ≥ 100 เซลล์มีชีวิต ปรับความเข้มข้น PBMC เพื่อ 1x106 เซลล์ที่มีชีวิต / ml สำหรับจ่ายเข้ากับวัฒนธรรมหลุม สำหรับโปรโตคอลเด็ก,หลุมบางคนอาจจะมองข้ามถ้าไม่ PBMCs พอที่จะได้รับ; ปฏิบัติตามแนวทางในโปรโตคอลหรือ piis
6. การติดตั้งทดสอบ
6.1.1 แอนติเจนที่ละลาย / แผ่นวัฒนธรรม mitogen ที่ 37 ° C ในศูนย์บ่มเพาะ ป้ายจานเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อที่มีการระบุผู้ป่วย (PID), วันที่, วันที่ชุบจะชีพจรกับไอโซโทปและเก็บเกี่ยว.
6.1.2 แจกจ่าย100μlระงับ PBMC (106 เซลล์ / มล. หรือ 100,000 เซลล์ต่อกัน) เข้ากับวัฒนธรรมหลุม จะมีบางอย่างที่จะทำให้เซลล์ที่ถูกระงับโดยอ่อนโยนผสมในขณะที่เซลล์มีการจ่าย เซลล์ที่ควรจะจ่ายเร็วที่สุดเท่าที่เป็นไปได้เพื่อหลีกเลี่ยงการขนาดกลางกลายเป็นอัลคาไลน์ นี้เป็นวันที่ 0 มันอาจจะเป็นสิ่งที่จำเป็นในการจัดเก็บแผ่น LPA ในถุงภายในศูนย์บ่มเพาะถ้าขาดความชื้นเป็นปัญหา.
7 การเก็บเกี่ยวและการนับ
7.1 ในตอนเช้าของวันที่ 6,แผ่นชีพจรกับ25μl/well (1μci/well) ของ [h3] TDR.
7.2 หกชั่วโมงหลังจากการเก็บเกี่ยวบนตัวกรองใยแก้วโดยใช้เซลล์เก็บเกี่ยว ถ้าเซลล์เก็บเกี่ยวไม่ได้อยู่ในเครื่องดูดควันปลอดเชื้อหรือกระเด็นระหว่างการเก็บเกี่ยวเป็นกังวลแล้วเพิ่ม25μl/wellจาก 5% Triton X-100 สารละลายผงซักฟอกเพื่อยับยั้งเอชไอวี ถ้าเก็บเกี่ยวไม่สามารถทำได้ทันทีหลังจากที่ชีพจรหกชั่วโมง,แผ่นอาจถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ -20 ° C จนถึงการเก็บเกี่ยว จะไม่เก็บจานที่อุณหภูมิ -20 ° C นานกว่าไม่กี่วัน ไม่ได้เพิ่ม Triton X-100 แผ่นก่อนที่จะแช่แข็งเพราะมันทำให้เกิดฟองอากาศในระหว่างการละลาย.
7.3 หลังจากการเก็บเกี่ยวตัวกรองจะได้รับอนุญาตให้แห้งที่อุณหภูมิห้องบนม้านั่งเจาะออกไปในขวดประกายหรือแผ่นกรองมีการประมวลผลสำหรับการนับในเคาน์เตอร์ betaplateเพิ่มประกายให้กับของเหลวขวด / ตัวกรองและตัวกรองออกจากของเหลวในประกายไปตามทิศทางของผู้ผลิตก่อนที่จะมีการนับ นับขวด / ตัวกรองบนเคาน์เตอร์ประกายเบต้าที่การตั้งค่าห้องปฏิบัติการมุ่งมั่นที่จะวัดการนับต่อนาที (CPM).
8 การคำนวณและการรายงานผลการ
8.1ข้อมูล LPA สามารถแสดงและคำนวณในสองวิธีที่แตกต่างกันไปตามความมุ่งมั่นของค่าเฉลี่ย (เช่นจาก triplicates, quadruplicates); ทั้งสองวิธีให้ความรู้สึกทางชีวภาพ เนื่องจากดัชนีการกระตุ้น (Si) คืออัตราส่วนมันได้รับอิทธิพลอย่างมากโดยการเปลี่ยนแปลงที่ไม่มีนัยสำคัญทางชีวภาพในระดับ CPM ต่ำของพื้นหลังหลุม unstimulated.
8.2si = (CPM พื้นหลังการทดลอง / CPM unstimulated)
8.3 นับสุทธิหรือ CPM = (CPM ทดลอง - พื้นหลังแผ่น unstimulated)
8.4 สำหรับการทดลองแบบ multicenter ข้อตกลงเล็กน้อยดีกว่าถ้าคำนวณ si ถูกนำมาใช้เนื่องจากประสิทธิภาพของการนับเคาน์เตอร์ประกายที่แตกต่างกันแตกต่างกันไป ข้อมูลดิบ (CPM) จากการเพาะเลี้ยงกันเป็นอย่างดีจะถูกป้อนเข้าสู่ระบบอิเล็กทรอนิกส์ Excel ®ตาม
การแปล กรุณารอสักครู่..