- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
of California inshell walnuts, E. c
of California inshell walnuts, E. coli O157:H7 was not detected;
Salmonella was detected in none of the samples in 2010 (100 g, n =
935), in 0.2% of samples in 2011 (375 g, n = 905), and in 0.1% of samples
in 2012 (375 g, n = 999) (Eidsath, 2012).
The United States is the leading exporter of the Persian or English
walnut (Juglans regia L.); 99% of the U.S. production (470,000 metric
tons projected in 2012) is grown in California (California Walnut
Commission, 2012; USDA FAS, 2012; USDA NASS, 2012). Shortly after
harvest, walnuts are hulled to remove the fleshy husk and then dried
with forced air; dried inshell walnuts may be stored prior to packaging
or shelling. In 2011, approximately 40% of edible California walnut kernels
were sold in-the-shell (estimated average 44% kernel weight) and
the majority of these inshell walnuts (94%) were exported (California
Walnut Board, 2012); the remaining 60% were removed from storage
as needed, then cracked and sold as kernels.
Traditionally, most of the inshell walnuts sold in North America
undergo a shell-lightening (or “brightening”) treatment by direct
surface application of sodium hypochlorite at a concentration of 3 to
4% (30,000–40,000 μg/ml or ppm in solution). The solution is sprayed
onto the nuts, which are then mechanically mixed for approximately
2 min in a barrel trommel, and dried with or without forced air
(Lindsay, 2010). Although the purpose of this treatment is to lighten
shells, sodium hypochlorite is also a common disinfectant; it is unknown
to what extent brightening impacts the microbial load on walnut
shells.
The routes of contamination of tree nuts have not been definitively
determined, but there are a number of potential opportunities for introduction
of foodborne pathogens to walnuts through direct contact with
contaminated soil during harvest, during postharvest hulling and drying,
during cracking and shelling, or during further processing (Blessington,
2011; Meyer and Vaughn, 1969; Weinzirl, 1929). Foodborne pathogens
can survive for extended periods on walnut kernels (Blessington et al.,
2012) and Salmonella has been shown to survive on the shells of pecans
and hazelnuts (Beuchat and Heaton, 1975; Beuchat and Mann, 2010a,
2010b; Komitopoulou and Peñaloza, 2009). Survival of foodborne pathogens
on inshell walnuts has not been documented. The objectives of this
study were to evaluate the survival of Salmonella, E. coli O157:H7, and
L. monocytogenes during storage of inshell walnuts, and to determine
the impact of a brightening treatment on reducing Salmonella levels on
inoculated inshell walnuts.
2. Materials andmethods
2.1. Walnut samples
Inshellwalnuts, J. regia L. cv.Hartley and cv. Chandler,were obtained
froma San Joaquin county processor in California. Thewalnuts had been
hulled and dried (to b8% moisture) at a commercial huller-dehydrator
and had been stored at the processor for 1 to 6 months after harvest.
For the inoculation studies, the inshell walnuts were used within
1 month of receipt; for the brightening study, the walnuts were stored
for up to 11 months at ambient conditions in the laboratory (23–25 °C,
25–35% relative humidity) in a closed container.Walnuts with missing
shell or those with major visible cracks were discarded.
2.2. Bacterial cultures
The pathogens used in this study were as follows: S. enterica
Enteritidis PT 30 (ATCC BAA-1045), isolated from rawalmonds associated
with an outbreak (Isaacs et al., 2005); S. enterica Enteritidis PT 9c, a clinical
isolate from an outbreak associated with raw almonds (CDC, 2004);
S. enterica Anatum (CAHFS D0307231), isolated from an almond survey
(Danyluk et al., 2007); S. enterica Oranienburg, isolated from pecans,
(provided by Dr. Larry R. Beuchat, University of Georgia); S. enterica
Tennessee (K4643), a clinical isolate from a peanut butter-associated outbreak
(CDC, 2007); E. coli O157:H7 (H1730), a clinical isolate from a
Salmonella was detected in none of the samples in 2010 (100 g, n =
935), in 0.2% of samples in 2011 (375 g, n = 905), and in 0.1% of samples
in 2012 (375 g, n = 999) (Eidsath, 2012).
The United States is the leading exporter of the Persian or English
walnut (Juglans regia L.); 99% of the U.S. production (470,000 metric
tons projected in 2012) is grown in California (California Walnut
Commission, 2012; USDA FAS, 2012; USDA NASS, 2012). Shortly after
harvest, walnuts are hulled to remove the fleshy husk and then dried
with forced air; dried inshell walnuts may be stored prior to packaging
or shelling. In 2011, approximately 40% of edible California walnut kernels
were sold in-the-shell (estimated average 44% kernel weight) and
the majority of these inshell walnuts (94%) were exported (California
Walnut Board, 2012); the remaining 60% were removed from storage
as needed, then cracked and sold as kernels.
Traditionally, most of the inshell walnuts sold in North America
undergo a shell-lightening (or “brightening”) treatment by direct
surface application of sodium hypochlorite at a concentration of 3 to
4% (30,000–40,000 μg/ml or ppm in solution). The solution is sprayed
onto the nuts, which are then mechanically mixed for approximately
2 min in a barrel trommel, and dried with or without forced air
(Lindsay, 2010). Although the purpose of this treatment is to lighten
shells, sodium hypochlorite is also a common disinfectant; it is unknown
to what extent brightening impacts the microbial load on walnut
shells.
The routes of contamination of tree nuts have not been definitively
determined, but there are a number of potential opportunities for introduction
of foodborne pathogens to walnuts through direct contact with
contaminated soil during harvest, during postharvest hulling and drying,
during cracking and shelling, or during further processing (Blessington,
2011; Meyer and Vaughn, 1969; Weinzirl, 1929). Foodborne pathogens
can survive for extended periods on walnut kernels (Blessington et al.,
2012) and Salmonella has been shown to survive on the shells of pecans
and hazelnuts (Beuchat and Heaton, 1975; Beuchat and Mann, 2010a,
2010b; Komitopoulou and Peñaloza, 2009). Survival of foodborne pathogens
on inshell walnuts has not been documented. The objectives of this
study were to evaluate the survival of Salmonella, E. coli O157:H7, and
L. monocytogenes during storage of inshell walnuts, and to determine
the impact of a brightening treatment on reducing Salmonella levels on
inoculated inshell walnuts.
2. Materials andmethods
2.1. Walnut samples
Inshellwalnuts, J. regia L. cv.Hartley and cv. Chandler,were obtained
froma San Joaquin county processor in California. Thewalnuts had been
hulled and dried (to b8% moisture) at a commercial huller-dehydrator
and had been stored at the processor for 1 to 6 months after harvest.
For the inoculation studies, the inshell walnuts were used within
1 month of receipt; for the brightening study, the walnuts were stored
for up to 11 months at ambient conditions in the laboratory (23–25 °C,
25–35% relative humidity) in a closed container.Walnuts with missing
shell or those with major visible cracks were discarded.
2.2. Bacterial cultures
The pathogens used in this study were as follows: S. enterica
Enteritidis PT 30 (ATCC BAA-1045), isolated from rawalmonds associated
with an outbreak (Isaacs et al., 2005); S. enterica Enteritidis PT 9c, a clinical
isolate from an outbreak associated with raw almonds (CDC, 2004);
S. enterica Anatum (CAHFS D0307231), isolated from an almond survey
(Danyluk et al., 2007); S. enterica Oranienburg, isolated from pecans,
(provided by Dr. Larry R. Beuchat, University of Georgia); S. enterica
Tennessee (K4643), a clinical isolate from a peanut butter-associated outbreak
(CDC, 2007); E. coli O157:H7 (H1730), a clinical isolate from a
0/5000
ของแคลิฟอร์เนีย inshell วอลนัท O157:H7 E. coli ไม่พบสายพบในตัวอย่างไม่มีในปี 2010 (100 g, n =935), 0.2% ของตัวอย่างในปี 2554 (375 g, n = 905), และ 0.1% ของตัวอย่างในปี 2012 (375 g, n = 999) (Eidsath, 2012)สหรัฐอเมริกาเป็นผู้ส่งออกชั้นนำของเปอร์เซียหรือภาษาอังกฤษวอลนัต (Juglans regia L.); 99% ของการผลิตที่สหรัฐอเมริกา (470,000 วัดตันคาดว่าในปี 2012) เติบโตในแคลิฟอร์เนีย (แคลิฟอร์เนียวอลนัตค่าคอมมิชชัน 2012 จาก FA ที่ 2012 จาก NASS, 2012) หลังจากเก็บเกี่ยว วอลนัท hulled เอาแกลบ fleshy และอบแห้งมีเครื่องบังคับ สามารถจัดเก็บได้ inshell วอลนัทแห้งก่อนบรรจุหรือเก็บเปลือกหอย ใน 2011 ประมาณ 40% ของเมล็ดวอลนัทแคลิฟอร์เนียกินมีขายในเดอะเชลล์ (ประเมินเฉลี่ย 44% เมล็ดน้ำหนัก) และมีการส่งออกส่วนใหญ่เหล่านี้ inshell วอลนัท (94%) (แคลิฟอร์เนียวอลนัตคณะ 2012); 60% ที่เหลือถูกเอาออกจากเก็บเป็นเมล็ดจำ เป็น แล้วรอยร้าว และขายเป็นประเพณี ส่วนใหญ่ของวอลนัท inshell ที่ขายในอเมริกาเหนือรับรักษาเปลือกเด้ง (หรือ "สดใส") โดยตรงฟอกที่เข้มข้น 3 การใช้พื้นผิว4% (30000 – 40000 μg/ml หรือ ppm ในโซลูชัน) พ่นโซลูชั่นลงบนถั่ว ที่แล้วกลไกผสมสำหรับประมาณ2 นาทีในการบาร์เรล trommel และแห้ง หรือ ไม่บังคับอากาศ(ลินด์เซย์ 2010) แม้ว่าวัตถุประสงค์ของการรักษานี้จะเบาบางลงเปลือกหอย ผงฟอกขาวเป็นยาฆ่าเชื้อทั่วไป มันเป็นที่รู้จักไหนดูสดใสส่งผลกระทบต่อปริมาณจุลินทรีย์บนวอลนัตเปลือกหอยเส้นทางการปนเปื้อนของต้นถั่วได้รับแน่นอนไม่กำหนด แต่มีจำนวนของโอกาสที่มีศักยภาพสำหรับแนะนำของโรค foodborne กับวอลนัทผ่านดินปนเปื้อนระหว่างการเก็บเกี่ยว hulling หลังการเก็บเกี่ยวและแห้งแตก และเก็บเปลือกหอย หรือใน ระหว่างการประมวลผล (Blessington2011 Meyer และ Vaughn, 1969 Weinzirl, 1929) โรค Foodborneสามารถเอาตัวรอดสำหรับรอบระยะเวลาขยายบนเมล็ดวอลนัท (Blessington et al.,2012) และสายที่ได้รับการแสดงเพื่อความอยู่รอดบนเปลือกหอยของ pecansและ hazelnuts (Beuchat และ Heaton, 1975 Beuchat และมานน์ 2010a2010b Komitopoulou ก Peñaloza, 2009) อยู่รอดของ foodborne โรคใน inshell วอลนัทมีไม่รับเอกสาร วัตถุประสงค์นี้ได้ศึกษาการ ประเมินความอยู่รอดของซัล E. coli O157:H7 และL. monocytogenes ระหว่างการเก็บรักษา inshell วอลนัท และกำหนดผลของการรักษาแบบสดใสกับการลดระดับระดับบนวอลนัท inshell inoculated2. วัสดุ andmethods2.1. ตัวอย่างวอลนัตInshellwalnuts, J. regia L. cv Hartley และพันธุ์ Chandler ได้รับประมวลเขตของชุมชนมาเดโรซาน froma ในแคลิฟอร์เนีย Thewalnuts ได้hulled และแห้ง (เพื่อ b8% ความชื้น) ในการกะเทาะขจัดน้ำเชิงพาณิชย์และได้เก็บไว้ที่ตัวประมวลผล 1-6 เดือนหลังการเก็บเกี่ยวศึกษา inoculation วอลนัท inshell ถูกใช้ภายใน1 เดือนรับ สำหรับการศึกษาสดใส วอลนัทถูกเก็บไว้11 เดือนที่สภาพแวดล้อมในห้องปฏิบัติการ (23-25 ° Cความชื้นสัมพัทธ์ 25 – 35%) ในภาชนะปิด วอลนัทกับหายไปเปลือกหรือผู้ที่ มีรอยแตกมองเห็นหลักถูกละทิ้ง2.2. แบคทีเรียวัฒนธรรมโรคที่ใช้ในการศึกษานี้มีดังนี้: S. entericaEnteritidis PT 30 (ATCC บา-1045), แยกต่างหากจาก rawalmonds ที่เกี่ยวข้องมีการระบาดของโรค (ไอแซ็กส์ et al., 2005); Enterica S. Enteritidis PT 9c การวิจัยทางคลินิกแยกจากการระบาดของโรคที่เกี่ยวข้องกับอัลมอนด์ดิบ (CDC, 2004);Enterica S. Anatum (CAHFS D0307231), แยกต่างหากจากการสำรวจอัลมอนด์(Danyluk et al., 2007); Enterica S. Oranienburg, pecans โดดเดี่ยว(โดยดร. Larry R. Beuchat มหาวิทยาลัยจอร์เจีย); S. entericaเทนเนสซี (K4643), การวิจัยทางคลินิกแยกจากการระบาดของโรคที่เกี่ยวข้องกับเนยถั่วลิสง(CDC, 2007); O157:H7 e. coli (H1730), การวิจัยทางคลินิกแยกจากตัว
การแปล กรุณารอสักครู่..
แคลิฟอร์เนียวอลนัท inshell, เชื้อ E. coli O157: H7 ไม่ได้ถูกตรวจพบ
เชื้อ Salmonella ถูกตรวจพบในไม่มีของกลุ่มตัวอย่างในปี 2010 (100 กรัม, n =
935) ใน 0.2% ของกลุ่มตัวอย่างในปี 2011 (375 กรัม, n = 905) และ 0.1% ของกลุ่มตัวอย่าง
. ในปี 2012 (375 กรัม, n = 999) (Eidsath, 2012)
ประเทศสหรัฐอเมริกาเป็นผู้ส่งออกชั้นนำของเปอร์เซียหรือภาษาอังกฤษ
วอลนัท (Juglans Regia L. ); 99% ของการผลิตสหรัฐ (470,000 เมตริก
ตันที่คาดการณ์ไว้ในปี 2012) จะเติบโตขึ้นในรัฐแคลิฟอร์เนีย (California วอลนัท
คณะกรรมการ, 2012; USDA FAS, 2012; USDA NASS, 2012) ไม่นานหลังจากที่
การเก็บเกี่ยว, วอลนัทจะ hulled เพื่อเอาเปลือกเนื้อและแห้งแล้ว
กับอากาศบังคับ; แห้งวอลนัท inshell อาจถูกเก็บไว้ก่อนที่จะบรรจุภัณฑ์
หรือปอกเปลือก ในปี 2011 ประมาณ 40% ของเมล็ดวอลนัทกินแคลิฟอร์เนีย
ถูกนำไปขายในเปลือก (ประมาณเฉลี่ยน้ำหนักเมล็ด 44%) และ
ส่วนใหญ่เหล่านี้วอลนัท inshell (94%) ถูกส่งออก (แคลิฟอร์เนีย
คณะกรรมการวอลนัท, 2012); ส่วนที่เหลืออีก 60% ที่ถูกถอดออกจากการจัดเก็บ
ตามที่ต้องการแล้วแตกและขายเป็นเมล็ด.
ตามเนื้อผ้าที่สุดของวอลนัท inshell ขายในอเมริกาเหนือ
ได้รับเปลือกลดน้ำหนัก (หรือ "สดใส") โดยการรักษาโดยตรง
ประยุกต์ใช้พื้นผิวของโซเดียมไฮโปคลอไรต์ที่ ความเข้มข้นของ 3 ถึง
4% (30,000-40,000 ไมโครกรัม / มิลลิลิตรหรือพีพีเอ็มในการแก้ปัญหา) การแก้ปัญหาคือการฉีดพ่น
ลงบนถั่วซึ่งจะแล้วผสมเครื่องเทศประมาณ
2 นาทีใน Trommel บาร์เรลและแห้งมีหรือไม่มีอากาศบังคับ
(Lindsay, 2010) แม้ว่าจุดประสงค์ของการรักษานี้คือการแบ่งเบา
หอยโซเดียมไฮโปคลอไรต์ยังเป็นยาฆ่าเชื้อที่พบบ่อย มันเป็นที่รู้จัก
กับสิ่งที่ส่งผลกระทบต่อความกระจ่างใสขอบเขตปริมาณจุลินทรีย์ในวอลนัท
เปลือกหอย.
เส้นทางของการปนเปื้อนของถั่วต้นไม้ไม่ได้รับการแตกหัก
กำหนด แต่มีจำนวนของโอกาสที่มีศักยภาพสำหรับการเปิดตัว
ของเชื้อโรคที่เกิดจากอาหารที่จะวอลนัทผ่านการสัมผัสโดยตรงกับ
ดินที่ปนเปื้อนในระหว่าง การเก็บเกี่ยวในช่วง hulling หลังการเก็บเกี่ยวและการอบแห้ง
ในช่วงแตกและเปลือกหรือในระหว่างการประมวลผลเพิ่มเติม (ตั้,
2011; จอห์นเมเยอร์และ 1969; Weinzirl 1929) เชื้อโรคที่เกิดจากอาหาร
สามารถอยู่รอดได้เป็นระยะเวลานานในเมล็ดวอลนัท (ตั้, et al.
และ Salmonella ได้รับการแสดงเพื่อความอยู่รอดในเปลือกของพีแคน 2012)
และเฮเซลนัท (Beuchat และ Heaton 1975; Beuchat และแมนน์, 2010a,
2010b; Komitopoulou และPeñaloza 2009) การอยู่รอดของเชื้อโรคที่เกิดจากอาหาร
ในวอลนัท inshell ยังไม่ได้รับการรับรอง วัตถุประสงค์ของการนี้
การศึกษาวิจัยเพื่อประเมินความอยู่รอดของเชื้อ Salmonella, เชื้อ E. coli O157: H7 และ
L. monocytogenes ระหว่างการเก็บรักษาของวอลนัท inshell และเพื่อตรวจสอบ
ผลกระทบของการรักษาความกระจ่างใสในการลดระดับเชื้อ Salmonella ใน
เชื้อวอลนัท inshell.
2 วัสดุ andmethods
2.1 ตัวอย่างวอลนัท
Inshellwalnuts เจ Regia ลิตร cv.Hartley และพันธุ์ เทียนที่ได้รับ
FROMA San Joaquin ประมวลผลเขตในรัฐแคลิฟอร์เนีย Thewalnuts ได้รับ
ปลาและแห้ง (ความชื้น B8%) ในเชิงพาณิชย์ huller-ขจัดน้ำออก
และได้รับการเก็บรักษาไว้ที่หน่วยประมวลผลสำหรับ 1-6 เดือนหลังการเก็บเกี่ยว.
สำหรับการศึกษาการฉีดวัคซีน, วอลนัท inshell ถูกนำมาใช้ภายใน
1 เดือนที่ได้รับ; สำหรับการศึกษาความกระจ่างใส, วอลนัทถูกเก็บไว้
ได้นานถึง 11 เดือนที่สภาวะแวดล้อมในห้องปฏิบัติการ (23-25 องศาเซลเซียส
25-35% ความชื้นสัมพัทธ์) ใน container.Walnuts ปิดที่มีหายไป
เปลือกหรือผู้ที่มีรอยแตกมองเห็นที่สำคัญสรุปได้ ทิ้ง.
2.2 วัฒนธรรมแบคทีเรีย
เชื้อโรคที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้มีดังนี้: S. enterica
Enteritidis PT 30 (ATCC BAA-1045) ที่แยกได้จาก rawalmonds เกี่ยวข้อง
(. ไอแซ็ก, et al, 2005) ที่มีการระบาดของโรค; S. enterica Enteritidis PT 9c, คลินิก
แยกจากการระบาดของโรคที่เกี่ยวข้องกับอัลมอนด์ดิบ (CDC, 2004);
S. enterica anatum (CAHFS D0307231) ที่แยกได้จากการสำรวจอัลมอนด์
(Danyluk et al, 2007.); S. enterica Oranienburg ที่แยกได้จากพีแคน
(โดยดร. ลาร์รีอาร์ Beuchat, มหาวิทยาลัยจอร์เจีย); S. enterica
เทนเนสซี (K4643), แยกทางคลินิกจากการระบาดของเนยถั่วลิสงที่เกี่ยวข้อง
(CDC 2007); เชื้อ E. coli O157: H7 (H1730) แยกจากคลินิก
เชื้อ Salmonella ถูกตรวจพบในไม่มีของกลุ่มตัวอย่างในปี 2010 (100 กรัม, n =
935) ใน 0.2% ของกลุ่มตัวอย่างในปี 2011 (375 กรัม, n = 905) และ 0.1% ของกลุ่มตัวอย่าง
. ในปี 2012 (375 กรัม, n = 999) (Eidsath, 2012)
ประเทศสหรัฐอเมริกาเป็นผู้ส่งออกชั้นนำของเปอร์เซียหรือภาษาอังกฤษ
วอลนัท (Juglans Regia L. ); 99% ของการผลิตสหรัฐ (470,000 เมตริก
ตันที่คาดการณ์ไว้ในปี 2012) จะเติบโตขึ้นในรัฐแคลิฟอร์เนีย (California วอลนัท
คณะกรรมการ, 2012; USDA FAS, 2012; USDA NASS, 2012) ไม่นานหลังจากที่
การเก็บเกี่ยว, วอลนัทจะ hulled เพื่อเอาเปลือกเนื้อและแห้งแล้ว
กับอากาศบังคับ; แห้งวอลนัท inshell อาจถูกเก็บไว้ก่อนที่จะบรรจุภัณฑ์
หรือปอกเปลือก ในปี 2011 ประมาณ 40% ของเมล็ดวอลนัทกินแคลิฟอร์เนีย
ถูกนำไปขายในเปลือก (ประมาณเฉลี่ยน้ำหนักเมล็ด 44%) และ
ส่วนใหญ่เหล่านี้วอลนัท inshell (94%) ถูกส่งออก (แคลิฟอร์เนีย
คณะกรรมการวอลนัท, 2012); ส่วนที่เหลืออีก 60% ที่ถูกถอดออกจากการจัดเก็บ
ตามที่ต้องการแล้วแตกและขายเป็นเมล็ด.
ตามเนื้อผ้าที่สุดของวอลนัท inshell ขายในอเมริกาเหนือ
ได้รับเปลือกลดน้ำหนัก (หรือ "สดใส") โดยการรักษาโดยตรง
ประยุกต์ใช้พื้นผิวของโซเดียมไฮโปคลอไรต์ที่ ความเข้มข้นของ 3 ถึง
4% (30,000-40,000 ไมโครกรัม / มิลลิลิตรหรือพีพีเอ็มในการแก้ปัญหา) การแก้ปัญหาคือการฉีดพ่น
ลงบนถั่วซึ่งจะแล้วผสมเครื่องเทศประมาณ
2 นาทีใน Trommel บาร์เรลและแห้งมีหรือไม่มีอากาศบังคับ
(Lindsay, 2010) แม้ว่าจุดประสงค์ของการรักษานี้คือการแบ่งเบา
หอยโซเดียมไฮโปคลอไรต์ยังเป็นยาฆ่าเชื้อที่พบบ่อย มันเป็นที่รู้จัก
กับสิ่งที่ส่งผลกระทบต่อความกระจ่างใสขอบเขตปริมาณจุลินทรีย์ในวอลนัท
เปลือกหอย.
เส้นทางของการปนเปื้อนของถั่วต้นไม้ไม่ได้รับการแตกหัก
กำหนด แต่มีจำนวนของโอกาสที่มีศักยภาพสำหรับการเปิดตัว
ของเชื้อโรคที่เกิดจากอาหารที่จะวอลนัทผ่านการสัมผัสโดยตรงกับ
ดินที่ปนเปื้อนในระหว่าง การเก็บเกี่ยวในช่วง hulling หลังการเก็บเกี่ยวและการอบแห้ง
ในช่วงแตกและเปลือกหรือในระหว่างการประมวลผลเพิ่มเติม (ตั้,
2011; จอห์นเมเยอร์และ 1969; Weinzirl 1929) เชื้อโรคที่เกิดจากอาหาร
สามารถอยู่รอดได้เป็นระยะเวลานานในเมล็ดวอลนัท (ตั้, et al.
และ Salmonella ได้รับการแสดงเพื่อความอยู่รอดในเปลือกของพีแคน 2012)
และเฮเซลนัท (Beuchat และ Heaton 1975; Beuchat และแมนน์, 2010a,
2010b; Komitopoulou และPeñaloza 2009) การอยู่รอดของเชื้อโรคที่เกิดจากอาหาร
ในวอลนัท inshell ยังไม่ได้รับการรับรอง วัตถุประสงค์ของการนี้
การศึกษาวิจัยเพื่อประเมินความอยู่รอดของเชื้อ Salmonella, เชื้อ E. coli O157: H7 และ
L. monocytogenes ระหว่างการเก็บรักษาของวอลนัท inshell และเพื่อตรวจสอบ
ผลกระทบของการรักษาความกระจ่างใสในการลดระดับเชื้อ Salmonella ใน
เชื้อวอลนัท inshell.
2 วัสดุ andmethods
2.1 ตัวอย่างวอลนัท
Inshellwalnuts เจ Regia ลิตร cv.Hartley และพันธุ์ เทียนที่ได้รับ
FROMA San Joaquin ประมวลผลเขตในรัฐแคลิฟอร์เนีย Thewalnuts ได้รับ
ปลาและแห้ง (ความชื้น B8%) ในเชิงพาณิชย์ huller-ขจัดน้ำออก
และได้รับการเก็บรักษาไว้ที่หน่วยประมวลผลสำหรับ 1-6 เดือนหลังการเก็บเกี่ยว.
สำหรับการศึกษาการฉีดวัคซีน, วอลนัท inshell ถูกนำมาใช้ภายใน
1 เดือนที่ได้รับ; สำหรับการศึกษาความกระจ่างใส, วอลนัทถูกเก็บไว้
ได้นานถึง 11 เดือนที่สภาวะแวดล้อมในห้องปฏิบัติการ (23-25 องศาเซลเซียส
25-35% ความชื้นสัมพัทธ์) ใน container.Walnuts ปิดที่มีหายไป
เปลือกหรือผู้ที่มีรอยแตกมองเห็นที่สำคัญสรุปได้ ทิ้ง.
2.2 วัฒนธรรมแบคทีเรีย
เชื้อโรคที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้มีดังนี้: S. enterica
Enteritidis PT 30 (ATCC BAA-1045) ที่แยกได้จาก rawalmonds เกี่ยวข้อง
(. ไอแซ็ก, et al, 2005) ที่มีการระบาดของโรค; S. enterica Enteritidis PT 9c, คลินิก
แยกจากการระบาดของโรคที่เกี่ยวข้องกับอัลมอนด์ดิบ (CDC, 2004);
S. enterica anatum (CAHFS D0307231) ที่แยกได้จากการสำรวจอัลมอนด์
(Danyluk et al, 2007.); S. enterica Oranienburg ที่แยกได้จากพีแคน
(โดยดร. ลาร์รีอาร์ Beuchat, มหาวิทยาลัยจอร์เจีย); S. enterica
เทนเนสซี (K4643), แยกทางคลินิกจากการระบาดของเนยถั่วลิสงที่เกี่ยวข้อง
(CDC 2007); เชื้อ E. coli O157: H7 (H1730) แยกจากคลินิก
การแปล กรุณารอสักครู่..
ของถั่ว inshell แคลิฟอร์เนีย , E . coli เป็นสมาชิก ) ไม่พบเชื้อที่ตรวจพบใน ;
ไม่มีตัวอย่างใน 2010 ( 100 g , N =
935 ) , 0.2% ของตัวอย่างใน 2011 ( 375 g , N = 905 ) และ 0.1 % ของตัวอย่าง
2012 ( 375 กรัม N = 999 ) ( eidsath 2012 ) .
สหรัฐอเมริกาเป็นผู้ส่งออกชั้นนำของเปอร์เซียหรืออังกฤษ
วอลนัท ( วอลนัต L . ) ; 99 % ของการผลิตของสหรัฐฯ (
โลเมตริกตัน คาดว่าในปี 2012 ) ที่ปลูกในแคลิฟอร์เนีย ( California วอลนัท
คณะกรรมการ , 2012 ; USDA ) , 2012 ; USDA นซ , 2012 ) ไม่นานหลังจากที่
เก็บเกี่ยว , วอลนัท hulled เอาแกลบสดและแห้ง
กับบังคับอากาศแห้งวอลนัท inshell อาจถูกเก็บไว้ก่อนที่จะบรรจุภัณฑ์
หรือปลอกกระสุน . ใน 2011 , ประมาณ 40% ของกินวอลนัทเมล็ด
แคลิฟอร์เนียที่ขายอยู่ในกะลา ( น้ำหนักประมาณ 44 % เมล็ดเฉลี่ย ) และ
ส่วนใหญ่ของวอลนัท inshell เหล่านี้ ( 94 ) ส่งออก ( แคลิฟอร์เนีย
วอลนัทบอร์ด , 2012 ) ; ส่วนที่เหลืออีก 60% ถูกเอาออกจากกระเป๋า
ตามที่ต้องการ แล้วแตก และขายเป็นเมล็ด .
ผ้า ที่สุดของวอลนัท inshell ขาย ในทวีปอเมริกาเหนือ
ผ่านเปลือก lightening ( หรือ " สว่าง " ) การรักษาโดยตรง
การประยุกต์ใช้งานของโซเดียมไฮโปคลอไรด์ที่ความเข้มข้น 3
4 % ( 30 , 000 – 40 , 000 μ g / ml หรือ ppm ในสารละลาย ) วิธีพ่น
บนถั่ว ซึ่งเป็นเครื่องเทศผสมประมาณ
2 นาทีในถัง trommel และแห้ง หรือไม่บังคับอากาศ
( Lindsay , 2010 ) แม้ว่าจุดประสงค์ของการรักษานี้จะแบ่งเบา
หอยโซเดียมไฮโปคลอไรต์เป็นยาฆ่าเชื้อทั่วไป มันไม่รู้จัก
สิ่งที่ขอบเขตผลกระทบต่อ brightening โหลดเปลือกวอลนัท
.
เส้นทางการปนเปื้อนถั่วต้นไม้ไม่ได้แตกหัก
กำหนด แต่ มีหมายเลขของโอกาสที่มีศักยภาพสำหรับบทนำ
ของเชื้อโรคอาหารเป็นพิษในวอลนัทผ่านการติดต่อโดยตรงกับ
ดินปนเปื้อนในระหว่าง เก็บเกี่ยวในช่วงหลังการเก็บเกี่ยวและปอกเปลือกแห้ง
ในระหว่างแตก และปลอกกระสุนหรือในระหว่างการประมวลผลเพิ่มเติม ( blessington
, 2011 ; เมเยอร์และวานซ์ 1969 ; weinzirl 2472 ) เชื้อโรคอาหารเป็นพิษ
สามารถอยู่รอดได้เป็นระยะเวลานานในเมล็ดวอลนัท ( blessington et al . ,
2012 ) และ Salmonella ได้ถูกแสดงเพื่อความอยู่รอดบนเปลือกหอยและพีแคน
( beuchat Heaton hazelnuts และ 2518 ; beuchat และ Mann 2010a
, , 2010b ;komitopoulou และ PE 15 aloza , 2009 ) การอยู่รอดของเชื้อโรคอาหารเป็นพิษ
ในวอลนัท inshell ไม่ได้ถูกบันทึกไว้ วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้
ประเมินการอยู่รอดของ Salmonella , E . coli เป็นสมาชิก ) และ
monocytogenes . ในระหว่างการเก็บ inshell วอลนัท และเพื่อศึกษาผลกระทบของการรักษา
% ในการลด Salmonella ระดับบน
ใส่วอลนัท inshell .
2
วิธีการวัสดุ2.1 . ตัวอย่าง
วอลนัท inshellwalnuts เจ. เจีย L . cv . ฮาร์ทลี่ย์ และ พันธุ์ แชนด์เลอร์ ที่ได้รับจากมณฑลซาน Joaquin
โปรเซสเซอร์ในแคลิฟอร์เนีย thewalnuts ได้
hulled และแห้ง ( B8 % ความชื้น ) ในเชิงพาณิชย์และ Huller dehydrator
ถูกเก็บไว้ที่ตัวประมวลผลสำหรับ 1 ถึง 6 เดือนหลังการเก็บเกี่ยว เพื่อใช้ศึกษา
, วอลนัท inshell ถูกใช้ภายใน 1 เดือนรับของ
;สำหรับเพื่อการศึกษา , วอลนัทเก็บไว้
ถึง 11 เดือนที่สภาวะแวดล้อมในห้องปฏิบัติการ ( 23 – 25 ° C ,
25 – 35 % ความชื้นสัมพัทธ์ในภาชนะปิด วอลนัทหายไป
เชลล์หรือมีรอยแตกที่มองเห็นได้หลักถูกละทิ้ง .
2.2 . วัฒนธรรมแบคทีเรีย
เชื้อโรคที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ ได้แก่ เอส enterica
enteritidis PT 30 ( ATCC baa-1045 )ที่แยกได้จาก rawalmonds เกี่ยวข้อง
กับการระบาดของโรค ( ไอแซคส์ et al . , 2005 ) ; s enterica enteritidis PT เอนไซม์ , คลินิก
แยกจากโรคที่เกี่ยวข้องกับอัลมอนด์ดิบ ( CDC , 2004 ) ;
. enterica anatum ( cahfs d0307231 ) , แยกจาก อัลมอนด์ การสำรวจ
( danyluk et al . , 2007 ) เอส enterica Oranienburg , แยกจากพีแคน ,
( โดย ดร. Larry R . beuchat , มหาวิทยาลัยจอร์เจีย ) enterica
; sรัฐเทนเนสซี ( k4643 ) คลินิกที่แยกจากเนยถั่วลิสงที่ระบาด
( CDC , 2007 ) ; E . coli เป็นสมาชิก : H7 ( h1730 ) คลินิกที่แยกจาก
ไม่มีตัวอย่างใน 2010 ( 100 g , N =
935 ) , 0.2% ของตัวอย่างใน 2011 ( 375 g , N = 905 ) และ 0.1 % ของตัวอย่าง
2012 ( 375 กรัม N = 999 ) ( eidsath 2012 ) .
สหรัฐอเมริกาเป็นผู้ส่งออกชั้นนำของเปอร์เซียหรืออังกฤษ
วอลนัท ( วอลนัต L . ) ; 99 % ของการผลิตของสหรัฐฯ (
โลเมตริกตัน คาดว่าในปี 2012 ) ที่ปลูกในแคลิฟอร์เนีย ( California วอลนัท
คณะกรรมการ , 2012 ; USDA ) , 2012 ; USDA นซ , 2012 ) ไม่นานหลังจากที่
เก็บเกี่ยว , วอลนัท hulled เอาแกลบสดและแห้ง
กับบังคับอากาศแห้งวอลนัท inshell อาจถูกเก็บไว้ก่อนที่จะบรรจุภัณฑ์
หรือปลอกกระสุน . ใน 2011 , ประมาณ 40% ของกินวอลนัทเมล็ด
แคลิฟอร์เนียที่ขายอยู่ในกะลา ( น้ำหนักประมาณ 44 % เมล็ดเฉลี่ย ) และ
ส่วนใหญ่ของวอลนัท inshell เหล่านี้ ( 94 ) ส่งออก ( แคลิฟอร์เนีย
วอลนัทบอร์ด , 2012 ) ; ส่วนที่เหลืออีก 60% ถูกเอาออกจากกระเป๋า
ตามที่ต้องการ แล้วแตก และขายเป็นเมล็ด .
ผ้า ที่สุดของวอลนัท inshell ขาย ในทวีปอเมริกาเหนือ
ผ่านเปลือก lightening ( หรือ " สว่าง " ) การรักษาโดยตรง
การประยุกต์ใช้งานของโซเดียมไฮโปคลอไรด์ที่ความเข้มข้น 3
4 % ( 30 , 000 – 40 , 000 μ g / ml หรือ ppm ในสารละลาย ) วิธีพ่น
บนถั่ว ซึ่งเป็นเครื่องเทศผสมประมาณ
2 นาทีในถัง trommel และแห้ง หรือไม่บังคับอากาศ
( Lindsay , 2010 ) แม้ว่าจุดประสงค์ของการรักษานี้จะแบ่งเบา
หอยโซเดียมไฮโปคลอไรต์เป็นยาฆ่าเชื้อทั่วไป มันไม่รู้จัก
สิ่งที่ขอบเขตผลกระทบต่อ brightening โหลดเปลือกวอลนัท
.
เส้นทางการปนเปื้อนถั่วต้นไม้ไม่ได้แตกหัก
กำหนด แต่ มีหมายเลขของโอกาสที่มีศักยภาพสำหรับบทนำ
ของเชื้อโรคอาหารเป็นพิษในวอลนัทผ่านการติดต่อโดยตรงกับ
ดินปนเปื้อนในระหว่าง เก็บเกี่ยวในช่วงหลังการเก็บเกี่ยวและปอกเปลือกแห้ง
ในระหว่างแตก และปลอกกระสุนหรือในระหว่างการประมวลผลเพิ่มเติม ( blessington
, 2011 ; เมเยอร์และวานซ์ 1969 ; weinzirl 2472 ) เชื้อโรคอาหารเป็นพิษ
สามารถอยู่รอดได้เป็นระยะเวลานานในเมล็ดวอลนัท ( blessington et al . ,
2012 ) และ Salmonella ได้ถูกแสดงเพื่อความอยู่รอดบนเปลือกหอยและพีแคน
( beuchat Heaton hazelnuts และ 2518 ; beuchat และ Mann 2010a
, , 2010b ;komitopoulou และ PE 15 aloza , 2009 ) การอยู่รอดของเชื้อโรคอาหารเป็นพิษ
ในวอลนัท inshell ไม่ได้ถูกบันทึกไว้ วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้
ประเมินการอยู่รอดของ Salmonella , E . coli เป็นสมาชิก ) และ
monocytogenes . ในระหว่างการเก็บ inshell วอลนัท และเพื่อศึกษาผลกระทบของการรักษา
% ในการลด Salmonella ระดับบน
ใส่วอลนัท inshell .
2
วิธีการวัสดุ2.1 . ตัวอย่าง
วอลนัท inshellwalnuts เจ. เจีย L . cv . ฮาร์ทลี่ย์ และ พันธุ์ แชนด์เลอร์ ที่ได้รับจากมณฑลซาน Joaquin
โปรเซสเซอร์ในแคลิฟอร์เนีย thewalnuts ได้
hulled และแห้ง ( B8 % ความชื้น ) ในเชิงพาณิชย์และ Huller dehydrator
ถูกเก็บไว้ที่ตัวประมวลผลสำหรับ 1 ถึง 6 เดือนหลังการเก็บเกี่ยว เพื่อใช้ศึกษา
, วอลนัท inshell ถูกใช้ภายใน 1 เดือนรับของ
;สำหรับเพื่อการศึกษา , วอลนัทเก็บไว้
ถึง 11 เดือนที่สภาวะแวดล้อมในห้องปฏิบัติการ ( 23 – 25 ° C ,
25 – 35 % ความชื้นสัมพัทธ์ในภาชนะปิด วอลนัทหายไป
เชลล์หรือมีรอยแตกที่มองเห็นได้หลักถูกละทิ้ง .
2.2 . วัฒนธรรมแบคทีเรีย
เชื้อโรคที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ ได้แก่ เอส enterica
enteritidis PT 30 ( ATCC baa-1045 )ที่แยกได้จาก rawalmonds เกี่ยวข้อง
กับการระบาดของโรค ( ไอแซคส์ et al . , 2005 ) ; s enterica enteritidis PT เอนไซม์ , คลินิก
แยกจากโรคที่เกี่ยวข้องกับอัลมอนด์ดิบ ( CDC , 2004 ) ;
. enterica anatum ( cahfs d0307231 ) , แยกจาก อัลมอนด์ การสำรวจ
( danyluk et al . , 2007 ) เอส enterica Oranienburg , แยกจากพีแคน ,
( โดย ดร. Larry R . beuchat , มหาวิทยาลัยจอร์เจีย ) enterica
; sรัฐเทนเนสซี ( k4643 ) คลินิกที่แยกจากเนยถั่วลิสงที่ระบาด
( CDC , 2007 ) ; E . coli เป็นสมาชิก : H7 ( h1730 ) คลินิกที่แยกจาก
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- สวัสดีพี่สาว
- อยากได้ยินว่ารักกัน
- interpersonal skills, especially the abi
- i dont like female rappers but that asia
- I am quiet, a little dreamy. I like to s
- น้ำผึ้ง (Honey) คือผลผลิตของน้ำหวานจากดอ
- I miss you also
- both of us like to meet new people and t
- ตลาดน้ำยามเย็น
- คุณน่ารัก
- จะเสียคะแนนมากหรือไม่
- วันนี้ฉันสนุกมาก
- I was encouraged,fighting
- บทประพันธ์
- ฉันยังตกใจกับคำว่างี่เง่า
- เอมีล เฮสกีย์ มีชื่อเต็มว่า เอมีล วิลเลี
- Counsel
- ผู้ติดต่อประสานงานในหน่วยงาน
- ฉันคิดว่าฉันจะไปภูเก็ต เมื่อฉันพูดภาษาอั
- problem
- I delivered an address . But I was told
- ในอนาคตฉันอยากจะเป็นไกด์ ฉันอยากจะพูดภาษ
- สวัสดีพี่สาว
- 驼
