the volumetric productivity of the

the volumetric productivity of the two strains in batch mode-operated bioreactors was similar (∼90 mg/L). These results couldbe associated with acetate consumption during batch fermen-tation by MG1655endArecA. Although acetate accumulationwas observed when using MG1655endArecA in shake flasks(∼3.1 mg/L at harvest), the same strain eventually consumed allthe acetate produced during batch fermentation (Table 1). Inter-estingly, GALG20 produced similar amounts of pDNA in both shakeflask and batch-mode bioreactor; however, DH5 produced morepDNA in the bioreactor than in a shake flask (Table 1).Acetate consumption usually occurs when the carbon sourceis depleted and cells start to assimilate acetate. The synthesis ofacetate by E. coli generally occurs as a result of the need of cells toregenerate cofactors used in glycolysis and to recycle coenzyme A.To initiate the tricarboxylic acid (TCA) cycle, pyruvate is convertedinto acetyl-CoA. Excess pyruvate or acetyl-CoA are directly con-verted to acetate. In aerobic conditions, acetate production occurswhen high concentrations of glucose inhibit respiration (Crabtreeeffect). Under these conditions, around 15% of the glucose is con-verted to acetate (Wolfe, 2005). In theory, if PPP is the majorpathway for glucose catabolism, both glycolysis and TCA cycle aredown-regulated, and thus acetate production is minimized (Usuiet al., 2012). Indeed, GALG20 produced very low amounts of acetateand did not accumulate any acetate at the end of the batch fermen-tation in the bioreactor or shake flask (Table 1).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

volumetric ประสิทธิผลของสายพันธุ์ที่สองในชุดดำเนินโหมด bioreactors คล้ายกัน (∼90 mg/L) Couldbe ผลลัพธ์เหล่านี้สัมพันธ์กับปริมาณการใช้วัสดุ acetate ระหว่างชุด fermen-tation โดย MG1655 endA recA แต่สังเกตเมื่อใช้ recA endA MG1655 ใน accumulationwas acetate เขย่าน้ำ (∼3.1 mg/L ในการเก็บเกี่ยว), สายพันธุ์เดียวกันใช้ allthe acetate ผลิตชุดหมัก (ตาราง 1) ในที่สุด อินเตอร์-estingly, GALG20 ผลิตจำนวนคล้าย pDNA ใน shakeflask และโหมดชุด bioreactor อย่างไรก็ตาม DH5 ผลิต morepDNA ใน bioreactor กว่าในหนาวสั่น (ตาราง 1)ปริมาณการใช้วัสดุ acetate มักเกิดขึ้นเมื่อคาร์บอน sourceis พร่องและเซลล์เริ่มสะท้อน acetate Ofacetate สังเคราะห์ โดย E. coli โดยทั่วไปเกิดจากเซลล์จำเป็นต้องใช้โคแฟกเตอร์ toregenerate ใช้ใน glycolysis และรีไซเคิล A.To เริ่มต้นวงจร tricarboxylic กรด (TCA) coenzyme, pyruvate จะ convertedinto acetyl-CoA Pyruvate เกินหรือ acetyl-CoA จะตรงคอน-verted การ acetate ในสภาพแอโรบิก acetate ผลิต occurswhen สูงความเข้มข้นของกลูโคสยับยั้งหายใจ (Crabtreeeffect) ภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ ประมาณ 15% ของน้ำตาลกลูโคสได้คอน verted กับ acetate (Wolfe, 2005) ในทางทฤษฎี PPP เป็น majorpathway สำหรับแคแทบอลิซึมกลูโคส glycolysis และ TCA วงจรควบคุม aredown แล้วจึง ผลิต acetate ถูกย่อเล็กสุด (Usuiet al., 2012) จริง ๆ GALG20 ผลิตจำนวนน้อยมาก acetateand ไม่ได้สะสมใด ๆ acetate จบ fermen-tation ชุดในแบบ bioreactor หรือสั่นหนาว (ตารางที่ 1)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ผลผลิตปริมาตรของทั้งสองสายพันธุ์ในชุดโหมดการใช้งานถังหมักมีความคล้ายคลึง (~90 มิลลิกรัม / ลิตร) เหล่านี้ couldbe ผลเกี่ยวข้องกับการบริโภคในช่วง acetate ชุด fermen-tation โดย MG1655? Enda? recA แม้ว่า accumulationwas acetate สังเกตเมื่อใช้ MG1655? Enda? recA ในขวดสั่น (~3.1 มิลลิกรัม / ลิตรที่เก็บเกี่ยว), สายพันธุ์เดียวกันบริโภคในที่สุด acetate ทั้งหมด The ผลิตในระหว่างการหมัก (ตารางที่ 1) อินเตอร์ estingly, GALG20 ผลิตในปริมาณที่ใกล้เคียงกันทั้งใน pDNA shakeflask และชุดโหมดเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพ; แต่ DH5? ผลิต morepDNA ในเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพกว่าในขวดเขย่า (ตารางที่ 1) การใช้ .Acetate มักจะเกิดขึ้นเมื่อ sourceis คาร์บอนหมดและเซลล์เริ่มต้นที่จะดูดซึมอะซิเตท ofacetate สังเคราะห์จากเชื้อ E. coli มักเกิดขึ้นเป็นผลมาจากความต้องการของเซลล์ toregenerate ปัจจัยที่ใช้ในการ glycolysis และการรีไซเคิล A.To โคเอนไซม์เริ่มต้นกรด tricarboxylic (TCA) รอบไพรูเป็น convertedinto acetyl-CoA ไพรูส่วนเกินหรือ acetyl-CoA โดยตรง-Con ที่แปลงเป็นอะซิแต แอโรบิกในสภาพการผลิตอะซิเตทความเข้มข้นสูง occurswhen การหายใจยับยั้งกลูโคส (Crabtreeeffect) ภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ประมาณ 15% ของน้ำตาลกลูโคสเป็น Con-ที่แปลงเพื่อ acetate (วูล์ฟ 2005) ในทางทฤษฎีถ้า PPP เป็น majorpathway สำหรับ catabolism กลูโคสทั้ง glycolysis และวงจร TCA aredown ควบคุมและการผลิตอะซิเตทจึงจะลดลง (Usuiet al., 2012) อันที่จริง GALG20 ผลิตในปริมาณที่ต่ำมากของ acetateand ไม่ได้สะสม acetate ใด ๆ ในตอนท้ายของชุด fermen-tation ในเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพหรือเขย่าขวด (ตารางที่ 1)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

อัตราผลผลิตของทั้งสองสายพันธุ์ในโหมดแบทช์ที่ดำเนินการเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพคล้ายกัน ( ∼ 90 mg / l ) ผลลัพธ์เหล่านี้สามารถที่เกี่ยวข้องกับปริมาณการใช้อะซิเตทระหว่างชุด fermen tation โดย mg1655  enda  รีก้า . แม้ว่าอะซิเตท accumulationwas สังเกตเมื่อใช้ mg1655  enda  รีก้าในขวดเขย่า ( ∼ 3.1 มิลลิกรัม / ลิตร ในช่วงเก็บเกี่ยว )สายพันธุ์เดียวกันในที่สุดบริโภค Acetate พวกเราผลิตในระหว่างการหมักแบบ ( ตารางที่ 1 ) อินเตอร์ estingly galg20 , ผลิตปริมาณที่คล้ายกันของ pdna ทั้งในและ shakeflask ( โหมดแบทช์ อย่างไรก็ตาม พบว่ามี  ผลิต morepdna ในเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพกว่าในขวดเขย่า ( ตารางที่ 1 ) การใช้อะซิเตต มักจะเกิดขึ้นเมื่อ sourceis คาร์บอนหมดและเซลล์เริ่มซึมซับอะซิเทตการ ofacetate การสังเคราะห์โดย E . coli มักเกิดขึ้นเป็นผลให้เซลล์ toregenerate ปัจจัยใช้ในไกลโคไลซิส และโคเอนไซม์ เอรีไซเคิล เพื่อเริ่มต้น tricarboxylic acid ( TCA ) รอบ ไพรูเวตเป็น convertedinto อะ COA . ไพรูเวทเกิน หรืออาเซ COA โดยตรงคอน verted ไปอะซิเทต ในเงื่อนไขแอโรบิก ,อะซิ occurswhen การผลิตสูงความเข้มข้นของกลูโคสยับยั้งการหายใจ ( crabtreeeffect ) ภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ ประมาณ 15 % ของกลูโคสเป็นคอน verted เพื่อ Acetate ( วูลฟ์ , 2005 ) ในทางทฤษฎี หากพรรคพลังประชาชนเป็น majorpathway สำหรับกระบวนการสลายกลูโคส และวงจรควบคุม aredown TCA ทั้งไกลโคไลซิส และดังนั้นจึง อะซิเตท การผลิตจะลดลง ( usuiet al . , 2012 ) แน่นอนgalg20 ผลิตน้อยมากปริมาณของ acetateand ไม่ได้สะสมใด ๆ อะซิเตท ในตอนท้ายของ fermen ชุด tation ในเครื่องหรือเขย่าขวด ( ตารางที่ 1 )