- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2.5. Energetic balanceIngested food
2.5. Energetic balance
Ingested food (I) was calculated as:
I=Ir×Gef
where Ir is the ingested food rate (g dry weight day− 1 g ww− 1) and Gef is the diet's gross energy content (kJ g− 1).
2.6. Oxygen consumption and nitrogen excretion
The effect of the type of diet on oxygen consumption was measured in individuals from each experimental diet. Oxygen consumption (VO2) was measured using a continuous flow respirometer where respirometric chambers were connected to a well-aerated re-circulating seawater system (Rosas et al., 2008). Juveniles were placed in 90-mL chambers with an approximate flow rate of 0.1 L min− 1. All animals were allowed to acclimatize to the chambers for 1–1.5 h before measurements were made. Animals were offered a Melongena corona bispinosa shell as a shelter. A chamber without an octopus (with a shelter) was used as a control both during routine metabolism and feeding metabolism measurements. To do that, the control chamber was fed with a similar ration used to feed each octopus. Measurements of dissolved oxygen (DO) were recorded for each chamber (entrance and exit) every minute using oxygen sensors attached to flow-cells that were connected by optical fibre to an Oxy 10 mini-amplifier (PreSens©, Germany). The sensors were calibrated for each experimental temperature using saturated seawater (100% DO) and a 5% sodium sulphate solution (0% DO). Fasting metabolism was obtained from measurements taken every minute for 60 min after the conditioning period. Afterwards, octopuses were fed, taking into consideration that half of the ration (15% ww day− 1) was given two times a day to complete a total ration of 30% ww day− 1. Oxygen consumption measurements during the feeding phase were taken every minute until the oxygen consumption returned to pre-feeding values. At the end of the experiment, octopuses were weighed. Oxygen consumption was calculated as the difference in dissolved oxygen concentrations between the input and output of each chamber, with the water flow being timed. Routine metabolism (Rrout) was estimated from the VO2 (mg g− 1 ww h− 1) of fasting octopuses. The apparent heat increase (RAHI; J g− 1 h− 1) was estimated from the difference between the VO2 of fasting octopuses and the maximum value attained after feeding, taking into account the time needed to reach the oxygen consumption peak after feeding.
Partial energy budget was estimated using the following equation (Lucas, 1993):
As=Rtot+Pg
where As is assimilated energy, Rtot indicates respiration (Rtot = Rrout + RAHI), and Pg is the energy invested in growth, all of them expressed as kJ g− 1 ww day− 1. Energy produced (Pg) was obtained using the actual growth rate of all octopuses during the experimental time (55 days). The value of 10.1 kJ g− 1 was used to transform the growth data into production units (Pg; J g− 1 day− 1 live weight; Rosas et al., 2007 and Rosas et al., 2008). Assimilated, respiratory and production gross efficiencies were calculated as As/I × 100, R/I × 100 and Pg/I × 100, respectively.
Respiratory (R) and production net efficiencies (Pg E) were calculated as R/As × 100 and Pg/As × 100, respectively.
Ingested food (I) was calculated as:
I=Ir×Gef
where Ir is the ingested food rate (g dry weight day− 1 g ww− 1) and Gef is the diet's gross energy content (kJ g− 1).
2.6. Oxygen consumption and nitrogen excretion
The effect of the type of diet on oxygen consumption was measured in individuals from each experimental diet. Oxygen consumption (VO2) was measured using a continuous flow respirometer where respirometric chambers were connected to a well-aerated re-circulating seawater system (Rosas et al., 2008). Juveniles were placed in 90-mL chambers with an approximate flow rate of 0.1 L min− 1. All animals were allowed to acclimatize to the chambers for 1–1.5 h before measurements were made. Animals were offered a Melongena corona bispinosa shell as a shelter. A chamber without an octopus (with a shelter) was used as a control both during routine metabolism and feeding metabolism measurements. To do that, the control chamber was fed with a similar ration used to feed each octopus. Measurements of dissolved oxygen (DO) were recorded for each chamber (entrance and exit) every minute using oxygen sensors attached to flow-cells that were connected by optical fibre to an Oxy 10 mini-amplifier (PreSens©, Germany). The sensors were calibrated for each experimental temperature using saturated seawater (100% DO) and a 5% sodium sulphate solution (0% DO). Fasting metabolism was obtained from measurements taken every minute for 60 min after the conditioning period. Afterwards, octopuses were fed, taking into consideration that half of the ration (15% ww day− 1) was given two times a day to complete a total ration of 30% ww day− 1. Oxygen consumption measurements during the feeding phase were taken every minute until the oxygen consumption returned to pre-feeding values. At the end of the experiment, octopuses were weighed. Oxygen consumption was calculated as the difference in dissolved oxygen concentrations between the input and output of each chamber, with the water flow being timed. Routine metabolism (Rrout) was estimated from the VO2 (mg g− 1 ww h− 1) of fasting octopuses. The apparent heat increase (RAHI; J g− 1 h− 1) was estimated from the difference between the VO2 of fasting octopuses and the maximum value attained after feeding, taking into account the time needed to reach the oxygen consumption peak after feeding.
Partial energy budget was estimated using the following equation (Lucas, 1993):
As=Rtot+Pg
where As is assimilated energy, Rtot indicates respiration (Rtot = Rrout + RAHI), and Pg is the energy invested in growth, all of them expressed as kJ g− 1 ww day− 1. Energy produced (Pg) was obtained using the actual growth rate of all octopuses during the experimental time (55 days). The value of 10.1 kJ g− 1 was used to transform the growth data into production units (Pg; J g− 1 day− 1 live weight; Rosas et al., 2007 and Rosas et al., 2008). Assimilated, respiratory and production gross efficiencies were calculated as As/I × 100, R/I × 100 and Pg/I × 100, respectively.
Respiratory (R) and production net efficiencies (Pg E) were calculated as R/As × 100 and Pg/As × 100, respectively.
0/5000
2.5 การปรับดุลอาหารติดเครื่องแล้ว (I) ถูกคำนวณเป็น:ฉัน = Ir × Gefที่ Ir คือ ติดเครื่องแล้วอาหารอัตรา (กรัมน้ำหนักแห้ง day− 1 g ww− 1) และ Gef เป็นเนื้อหาพลังงานรวมของอาหาร (kJ g− 1)2.6 การออกซิเจนไนโตรเจนและปริมาณการขับถ่ายมีวัดผลของชนิดของอาหารปริมาณออกซิเจนในบุคคลจากอาหารทดลองแต่ละ ปริมาณการใช้ออกซิเจน (VO2) ถูกวัดโดยใช้ respirometer ขั้นตอนต่อเนื่องที่หอ respirometric มีการเชื่อมต่อห้อง aerated ใหม่หมุนเวียนทะเล (โรงแรมโรแซสการ์ et al., 2008) Juveniles ถูกวางในห้อง 90 mL ด้วยอัตราการไหลประมาณ 0.1 L min− 1 สัตว์ทุกตัวได้รับอนุญาตให้ acclimatize หอสำหรับ h 1 – 1.5 ก่อนทำการวัด สัตว์ถูกเสนอ Melongena โค bispinosa เปลือกเป็นพักอาศัย หอการค้าโดยไม่มีหมึก (มีพักอาศัย) ถูกใช้เป็นตัวควบคุมทั้งใน ระหว่างการเผาผลาญประจำและวัดการเผาผลาญอาหาร การทำ ห้องควบคุมถูกเลี้ยง ด้วยอาหารคล้ายกันที่ใช้ในการเลี้ยงปลาหมึกแต่ละ วัดปริมาณออกซิเจนละลาย (DO) ถูกบันทึกในแต่ละห้อง (เข้าและออก) ทุกนาทีที่ใช้เซนเซอร์ออกซิเจนกับเซลล์ไหลเชื่อมต่อ โดยเส้นใยแสงให้เพาเวอร์แอมป์มินิ 10 เชื้อ (PreSens ©, เยอรมนี) เซนเซอร์ได้รับการปรับเทียบสำหรับแต่ละอุณหภูมิทดลองใช้ทะเลอิ่มตัว (ไม่ 100%) และการแก้ไขปัญหา 5% โซเดียมซัลเฟต (ทำ 0%) เผาผลาญถือศีลอดได้รับจากวัดมาทุกนาทีในนาที 60 หลังจากรอบระยะเวลาปรับ ภายหลัง octopuses ถูกเลี้ยง คำนึงถึงว่า ครึ่งหนึ่งของอาหาร (day− 15% ww 1) ให้วันละสองครั้งต้องทำอาหารทั้งหมดของ 30% ww day− 1 วัดปริมาณการใช้ออกซิเจนระหว่างขั้นตอนการให้อาหารที่ถ่ายทุกนาทีจนกว่าปริมาณการใช้ออกซิเจนกลับไปก่อนให้อาหารค่า Octopuses ถูกชั่งน้ำหนักเมื่อสิ้นสุดการทดลอง มีคำนวณปริมาณการใช้ออกซิเจนเป็นความแตกต่างในความเข้มข้นของออกซิเจนละลายระหว่างการป้อนข้อมูลและแสดงผลของแต่ละหอการค้า กับกระแสน้ำเป็นเวลา เผาผลาญประจำ (Rrout) ถูกประเมินจาก VO2 (mg g− 1 ww h− 1) ของ octopuses ถือศีลอด การเพิ่มขึ้นของความร้อนที่ชัดเจน (RAHI J g− 1 h− 1) ได้ประมาณจากความแตกต่างระหว่าง VO2 ของการถือศีลอด octopuses และค่าสูงสุดบรรลุหลังจากให้อาหาร คำนึงถึงเวลาที่ต้องการเข้าถึงจุดสูงสุดของปริมาณการใช้ออกซิเจนหลังจากให้อาหารงบประมาณพลังงานบางส่วนถูกประเมินโดยใช้สมการต่อไปนี้ (Lucas, 1993):เป็น = Rtot + Pgที่เป็นขนบธรรมเนียมประเพณีพลังงาน Rtot ระบุหายใจ (Rtot = Rrout + RAHI), และ Pg เป็นพลังงานในการเจริญเติบโตการลงทุน พวกเขาทั้งหมดแสดงเป็น kJ g− 1 ww day− 1 ผลิตพลังงาน (Pg) ได้รับอัตราการเติบโตที่แท้จริงของ octopuses ทั้งหมดโดยใช้เวลาทดลอง (55 วัน) 10.1 kJ g− 1 ค่าที่ใช้ในการแปลงข้อมูลการเจริญเติบโตเป็นหน่วยผลิต (Pg J g− 1 day− 1 สดน้ำหนัก โรงแรมโรแซสการ์ et al., 2007 กโรงแรมโรแซสการ์ et al., 2008) การขนบธรรมเนียม ประเพณี ทางเดินหายใจ และมีคำนวณประสิทธิภาพการผลิตรวมเป็นเป็น/ฉัน× 100, R / ฉันซื้อ 100 และ Pg / ฉัน× 100 ตามลำดับทางเดินหายใจ (R) และการผลิตสุทธิประสิทธิภาพ (Pg E) มีคำนวณ เป็น R × 100 และ Pg/เป็น × 100 ตามลำดับ
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.5. Energetic balance
Ingested food (I) was calculated as:
I=Ir×Gef
where Ir is the ingested food rate (g dry weight day− 1 g ww− 1) and Gef is the diet's gross energy content (kJ g− 1).
2.6. Oxygen consumption and nitrogen excretion
The effect of the type of diet on oxygen consumption was measured in individuals from each experimental diet. Oxygen consumption (VO2) was measured using a continuous flow respirometer where respirometric chambers were connected to a well-aerated re-circulating seawater system (Rosas et al., 2008). Juveniles were placed in 90-mL chambers with an approximate flow rate of 0.1 L min− 1. All animals were allowed to acclimatize to the chambers for 1–1.5 h before measurements were made. Animals were offered a Melongena corona bispinosa shell as a shelter. A chamber without an octopus (with a shelter) was used as a control both during routine metabolism and feeding metabolism measurements. To do that, the control chamber was fed with a similar ration used to feed each octopus. Measurements of dissolved oxygen (DO) were recorded for each chamber (entrance and exit) every minute using oxygen sensors attached to flow-cells that were connected by optical fibre to an Oxy 10 mini-amplifier (PreSens©, Germany). The sensors were calibrated for each experimental temperature using saturated seawater (100% DO) and a 5% sodium sulphate solution (0% DO). Fasting metabolism was obtained from measurements taken every minute for 60 min after the conditioning period. Afterwards, octopuses were fed, taking into consideration that half of the ration (15% ww day− 1) was given two times a day to complete a total ration of 30% ww day− 1. Oxygen consumption measurements during the feeding phase were taken every minute until the oxygen consumption returned to pre-feeding values. At the end of the experiment, octopuses were weighed. Oxygen consumption was calculated as the difference in dissolved oxygen concentrations between the input and output of each chamber, with the water flow being timed. Routine metabolism (Rrout) was estimated from the VO2 (mg g− 1 ww h− 1) of fasting octopuses. The apparent heat increase (RAHI; J g− 1 h− 1) was estimated from the difference between the VO2 of fasting octopuses and the maximum value attained after feeding, taking into account the time needed to reach the oxygen consumption peak after feeding.
Partial energy budget was estimated using the following equation (Lucas, 1993):
As=Rtot+Pg
where As is assimilated energy, Rtot indicates respiration (Rtot = Rrout + RAHI), and Pg is the energy invested in growth, all of them expressed as kJ g− 1 ww day− 1. Energy produced (Pg) was obtained using the actual growth rate of all octopuses during the experimental time (55 days). The value of 10.1 kJ g− 1 was used to transform the growth data into production units (Pg; J g− 1 day− 1 live weight; Rosas et al., 2007 and Rosas et al., 2008). Assimilated, respiratory and production gross efficiencies were calculated as As/I × 100, R/I × 100 and Pg/I × 100, respectively.
Respiratory (R) and production net efficiencies (Pg E) were calculated as R/As × 100 and Pg/As × 100, respectively.
Ingested food (I) was calculated as:
I=Ir×Gef
where Ir is the ingested food rate (g dry weight day− 1 g ww− 1) and Gef is the diet's gross energy content (kJ g− 1).
2.6. Oxygen consumption and nitrogen excretion
The effect of the type of diet on oxygen consumption was measured in individuals from each experimental diet. Oxygen consumption (VO2) was measured using a continuous flow respirometer where respirometric chambers were connected to a well-aerated re-circulating seawater system (Rosas et al., 2008). Juveniles were placed in 90-mL chambers with an approximate flow rate of 0.1 L min− 1. All animals were allowed to acclimatize to the chambers for 1–1.5 h before measurements were made. Animals were offered a Melongena corona bispinosa shell as a shelter. A chamber without an octopus (with a shelter) was used as a control both during routine metabolism and feeding metabolism measurements. To do that, the control chamber was fed with a similar ration used to feed each octopus. Measurements of dissolved oxygen (DO) were recorded for each chamber (entrance and exit) every minute using oxygen sensors attached to flow-cells that were connected by optical fibre to an Oxy 10 mini-amplifier (PreSens©, Germany). The sensors were calibrated for each experimental temperature using saturated seawater (100% DO) and a 5% sodium sulphate solution (0% DO). Fasting metabolism was obtained from measurements taken every minute for 60 min after the conditioning period. Afterwards, octopuses were fed, taking into consideration that half of the ration (15% ww day− 1) was given two times a day to complete a total ration of 30% ww day− 1. Oxygen consumption measurements during the feeding phase were taken every minute until the oxygen consumption returned to pre-feeding values. At the end of the experiment, octopuses were weighed. Oxygen consumption was calculated as the difference in dissolved oxygen concentrations between the input and output of each chamber, with the water flow being timed. Routine metabolism (Rrout) was estimated from the VO2 (mg g− 1 ww h− 1) of fasting octopuses. The apparent heat increase (RAHI; J g− 1 h− 1) was estimated from the difference between the VO2 of fasting octopuses and the maximum value attained after feeding, taking into account the time needed to reach the oxygen consumption peak after feeding.
Partial energy budget was estimated using the following equation (Lucas, 1993):
As=Rtot+Pg
where As is assimilated energy, Rtot indicates respiration (Rtot = Rrout + RAHI), and Pg is the energy invested in growth, all of them expressed as kJ g− 1 ww day− 1. Energy produced (Pg) was obtained using the actual growth rate of all octopuses during the experimental time (55 days). The value of 10.1 kJ g− 1 was used to transform the growth data into production units (Pg; J g− 1 day− 1 live weight; Rosas et al., 2007 and Rosas et al., 2008). Assimilated, respiratory and production gross efficiencies were calculated as As/I × 100, R/I × 100 and Pg/I × 100, respectively.
Respiratory (R) and production net efficiencies (Pg E) were calculated as R/As × 100 and Pg/As × 100, respectively.
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.5
สมดุลพลัง กำลังกิน ( ฉัน ) คำนวณได้ดังนี้
ผม = IR × GEF
ที่ IR คือกินอาหารเท่ากัน ( − 1 กรัมต่อกรัมน้ำหนักแห้งวัน WW − 1 ) และเจฟ เป็นอาหารปริมาณพลังงานขั้นต้น ( KJ G − 1 ) .
2.6 การบริโภคออกซิเจนและไนโตรเจนการขับถ่าย
ผลของชนิดของอาหารที่ใช้ออกซิเจนเป็นวัดในบุคคลจากแต่ละทดลองอาหารการใช้ออกซิเจน ( การใช้ออกซิเจน ) คือการวัดโดยใช้ respirometer ไหลต่อเนื่องที่ respirometric ห้องเชื่อมต่อกับดี ( ระบบหมุนเวียนน้ำทะเลอีกครั้ง ( ซ๊าส et al . , 2008 ) เยาวชนอยู่ใน 90 ml ห้องที่มีอัตราการไหลประมาณ 0.1 ลิตร มิน − 1 สัตว์ทั้งหมดได้รับอนุญาตให้ใหม่ห้อง 1 – 1.5 ชั่วโมงก่อนวัดที่ถูกสร้างขึ้นสัตว์ถูกเสนอ melongena โคโรน่า bispinosa เปลือกเป็นที่กำบัง ห้องไม่มีปลาหมึก ( ที่พักอาศัย ) ถูกใช้เป็นตัวควบคุม ทั้งในระหว่างการเผาผลาญตามปกติและการให้วัดการเผาผลาญ ทำที่ห้องควบคุม ถูกเลี้ยงด้วยอาหารที่คล้ายกันใช้ป้อนแต่ละปลาหมึกยักษ์การวัดค่าออกซิเจนละลายน้ำ ( DO ) ได้ถูกบันทึกไว้สำหรับแต่ละห้อง ( เข้าและออก ) ทุก ๆนาที โดยใช้ออกซิเจนเซ็นเซอร์ที่แนบมากับไหลเซลล์ที่เชื่อมต่อกันด้วยไฟเบอร์ออปติคอลเป็น Oxy 10 มินิแอมป์ ( พเรเซนสสงวนลิขสิทธิ์ เยอรมนี ) เซ็นเซอร์ทำการสอบเทียบสำหรับแต่ละการทดลองใช้น้ำทะเลอุณหภูมิอิ่มตัว ( 100% ) และ 5% โซเดียมซัลเฟต โซลูชั่น ( 0% )อดอาหารการเผาผลาญได้จากที่วัดได้ทุกๆ นาที 60 นาทีหลังจากระยะเวลาของเครื่องปรับอากาศ หลังจากนั้น ปลาหมึกเป็นอาหาร พิจารณาว่า ครึ่งหนึ่งของอาหาร ( 15 % WW วัน− 1 ) คือให้ วันละ 2 ครั้ง เพื่อให้ส่วนรวม 30% WW วัน− 1การบริโภคออกซิเจนวัดในระหว่างอาหารระยะถ่ายทุกๆ นาที จนกว่าการใช้ออกซิเจนกลับไปก่อนป้อนค่า เมื่อสิ้นสุดการทดลอง หมึกถูกชั่งน้ำหนัก การบริโภคออกซิเจนมีค่าเป็น ความแตกต่างของปริมาณออกซิเจนที่ละลายในน้ำความเข้มข้นระหว่างอินพุตและเอาต์พุตของแต่ละห้อง มีการไหลของน้ำการหมดเวลาการเผาผลาญตามปกติ ( rrout ) ถูกคำนวณจากการใช้ออกซิเจน ( mg G − 1 WW H − 1 ) ปลาหมึกด้วยการอดอาหาร เพิ่มความร้อนที่ชัดเจน ( ราฮี J G − 1 H − 1 ) คำนวณได้จากความแตกต่างระหว่างการใช้ออกซิเจนของการอดอาหารปลาหมึกยักษ์และมูลค่าสูงสุดบรรลุหลังจากให้อาหาร โดยคำนึงถึงเวลาที่จำเป็นในการเข้าถึงการใช้ออกซิเจนสูงสุดหลังจากเลี้ยง
ประหยัดพลังงานบางส่วนประมาณโดยใช้สมการต่อไปนี้ ( ลูคัส , 1993 ) :
= rtot เป็น PG ที่เป็นเหมือนพลังงาน rtot บ่งชี้การหายใจ ( rtot = rrout ราฮี ) , PG และเป็นพลังงานการลงทุนในการเจริญเติบโต , ทั้งหมดของพวกเขาแสดงเป็น kJ G − 1 WW วัน− 1 ผลิตพลังงาน ( PG ) ได้รับการใช้ จริง อัตราการเติบโตของปลาหมึกยักษ์ในช่วงเวลาทดลอง ( 5 วัน ) ค่าของ 101 จูล G − 1 ถูกใช้เพื่อแปลงข้อมูลการเจริญเติบโตเป็นหน่วยการผลิต ( PG J G −− 1 อยู่ 1 วัน น้ำหนัก ; ซ๊าส et al . , 2007 และซ๊าส et al . , 2008 ) ขนบธรรมเนียมประเพณี , การหายใจและการผลิตขั้นต้น นำมาคำนวณเป็น / ฉัน× 100 R / ฉัน× 100 และ PG / ฉัน× 100 ตามลำดับ
ระบบทางเดินหายใจ ( R ) และการผลิตสุทธิประสิทธิภาพ ( PG ) คำนวณเป็น R / E ) เป็น× 100 และ PG / เป็น× 100 ตามลำดับ
สมดุลพลัง กำลังกิน ( ฉัน ) คำนวณได้ดังนี้
ผม = IR × GEF
ที่ IR คือกินอาหารเท่ากัน ( − 1 กรัมต่อกรัมน้ำหนักแห้งวัน WW − 1 ) และเจฟ เป็นอาหารปริมาณพลังงานขั้นต้น ( KJ G − 1 ) .
2.6 การบริโภคออกซิเจนและไนโตรเจนการขับถ่าย
ผลของชนิดของอาหารที่ใช้ออกซิเจนเป็นวัดในบุคคลจากแต่ละทดลองอาหารการใช้ออกซิเจน ( การใช้ออกซิเจน ) คือการวัดโดยใช้ respirometer ไหลต่อเนื่องที่ respirometric ห้องเชื่อมต่อกับดี ( ระบบหมุนเวียนน้ำทะเลอีกครั้ง ( ซ๊าส et al . , 2008 ) เยาวชนอยู่ใน 90 ml ห้องที่มีอัตราการไหลประมาณ 0.1 ลิตร มิน − 1 สัตว์ทั้งหมดได้รับอนุญาตให้ใหม่ห้อง 1 – 1.5 ชั่วโมงก่อนวัดที่ถูกสร้างขึ้นสัตว์ถูกเสนอ melongena โคโรน่า bispinosa เปลือกเป็นที่กำบัง ห้องไม่มีปลาหมึก ( ที่พักอาศัย ) ถูกใช้เป็นตัวควบคุม ทั้งในระหว่างการเผาผลาญตามปกติและการให้วัดการเผาผลาญ ทำที่ห้องควบคุม ถูกเลี้ยงด้วยอาหารที่คล้ายกันใช้ป้อนแต่ละปลาหมึกยักษ์การวัดค่าออกซิเจนละลายน้ำ ( DO ) ได้ถูกบันทึกไว้สำหรับแต่ละห้อง ( เข้าและออก ) ทุก ๆนาที โดยใช้ออกซิเจนเซ็นเซอร์ที่แนบมากับไหลเซลล์ที่เชื่อมต่อกันด้วยไฟเบอร์ออปติคอลเป็น Oxy 10 มินิแอมป์ ( พเรเซนสสงวนลิขสิทธิ์ เยอรมนี ) เซ็นเซอร์ทำการสอบเทียบสำหรับแต่ละการทดลองใช้น้ำทะเลอุณหภูมิอิ่มตัว ( 100% ) และ 5% โซเดียมซัลเฟต โซลูชั่น ( 0% )อดอาหารการเผาผลาญได้จากที่วัดได้ทุกๆ นาที 60 นาทีหลังจากระยะเวลาของเครื่องปรับอากาศ หลังจากนั้น ปลาหมึกเป็นอาหาร พิจารณาว่า ครึ่งหนึ่งของอาหาร ( 15 % WW วัน− 1 ) คือให้ วันละ 2 ครั้ง เพื่อให้ส่วนรวม 30% WW วัน− 1การบริโภคออกซิเจนวัดในระหว่างอาหารระยะถ่ายทุกๆ นาที จนกว่าการใช้ออกซิเจนกลับไปก่อนป้อนค่า เมื่อสิ้นสุดการทดลอง หมึกถูกชั่งน้ำหนัก การบริโภคออกซิเจนมีค่าเป็น ความแตกต่างของปริมาณออกซิเจนที่ละลายในน้ำความเข้มข้นระหว่างอินพุตและเอาต์พุตของแต่ละห้อง มีการไหลของน้ำการหมดเวลาการเผาผลาญตามปกติ ( rrout ) ถูกคำนวณจากการใช้ออกซิเจน ( mg G − 1 WW H − 1 ) ปลาหมึกด้วยการอดอาหาร เพิ่มความร้อนที่ชัดเจน ( ราฮี J G − 1 H − 1 ) คำนวณได้จากความแตกต่างระหว่างการใช้ออกซิเจนของการอดอาหารปลาหมึกยักษ์และมูลค่าสูงสุดบรรลุหลังจากให้อาหาร โดยคำนึงถึงเวลาที่จำเป็นในการเข้าถึงการใช้ออกซิเจนสูงสุดหลังจากเลี้ยง
ประหยัดพลังงานบางส่วนประมาณโดยใช้สมการต่อไปนี้ ( ลูคัส , 1993 ) :
= rtot เป็น PG ที่เป็นเหมือนพลังงาน rtot บ่งชี้การหายใจ ( rtot = rrout ราฮี ) , PG และเป็นพลังงานการลงทุนในการเจริญเติบโต , ทั้งหมดของพวกเขาแสดงเป็น kJ G − 1 WW วัน− 1 ผลิตพลังงาน ( PG ) ได้รับการใช้ จริง อัตราการเติบโตของปลาหมึกยักษ์ในช่วงเวลาทดลอง ( 5 วัน ) ค่าของ 101 จูล G − 1 ถูกใช้เพื่อแปลงข้อมูลการเจริญเติบโตเป็นหน่วยการผลิต ( PG J G −− 1 อยู่ 1 วัน น้ำหนัก ; ซ๊าส et al . , 2007 และซ๊าส et al . , 2008 ) ขนบธรรมเนียมประเพณี , การหายใจและการผลิตขั้นต้น นำมาคำนวณเป็น / ฉัน× 100 R / ฉัน× 100 และ PG / ฉัน× 100 ตามลำดับ
ระบบทางเดินหายใจ ( R ) และการผลิตสุทธิประสิทธิภาพ ( PG ) คำนวณเป็น R / E ) เป็น× 100 และ PG / เป็น× 100 ตามลำดับ
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- Whole
- ตัวการ์ตูนที่ฉันชอบคือjerryเพรามันมีนิสั
- ไม่ค่อยได้เล่น
- เราฟังข้อมูลความรู้ก่อนกลับ
- แน่นอน
- small
- Genetic Diversity Analysis of Jatropha c
- how many teeth do you have?
- Growth of Global Operations
- มลพิษอากาศ
- ความสัมพันธ์ระหว่างการนำเข้าที่เพิ่มขึ้น
- 是一种生长在沙漠的树木
- หมากเก็บ เป็นการละเล่นอย่างหนึ่งของเด็กไ
- Air content
- แล้วใครมาส่งคุณ
- This katar, known for being effective ag
- paid
- ฉันจะไปเที่ยวรอบโลกก่อนที่ฉันจะมีอายุมาก
- สามารถสังสรรค์ได้
- สร้างภาวะผู้นำ
- เมื่อไรปัญหา จะหมดซะที
- Studying at public university and privat
- 自治区
- หลังคาโฟม
