2. Materials and methods2.1. Biological samplesFairy shrimp, Streptoce การแปล - 2. Materials and methods2.1. Biological samplesFairy shrimp, Streptoce ไทย วิธีการพูด

2. Materials and methods2.1. Biolog

2. Materials and methods
2.1. Biological samples
Fairy shrimp, Streptocephlaus dichotomus
(Poondi, Chennai) and water fleas, Moina micrura
(near Tambaram, Chennai) were collected from
temporary ponds and brought to the laboratory.
The animals were separated, cleaned with distilled
water, freeze-dried and stored until chromatographic
analyses.
2.2. Sample preparation
The animals (1 g dry mass) were homogenised
separately in 1 ml of acetone, centrifuged at
4500=g for 5 min at 4 8C and suspended in
EDTV solution (40 mM EDTA, 10% NaCl, pH
7.0) . The carotenoprotein complexes were precipitated
with ammonium sulfate as outlined by
Zagalsky et al. (1970). The precipitate was again
centrifuged and dissolved in 0.05 M phosphate
buffer (pH 7.0). In the presence of phosphate
buffer, dialysis was performed overnight in a
refrigerator. Absorption maxima, prosthetic group
and amino acid compositions of the protein complex
were also analysed.
2.3. Column and thin layer chromatography
The dialysed material was once again centrifuged
and then purified by ion-exchange chromatography
on DEAE-cellulose. Elution was carried
out with phosphate buffer (pH 7.0) using a linear
concentration gradient of 0.02–0.35 M. The measurements of extinction in the eluent were taken in
the range of 300–800 nm using a Model 203
‘Spectrimom’ spectrophotometer.
Carotenoids were liberated from carotenoproteins
with acetone according to the procedure of
Shone et al. (1979). Using thin-layer chromatography,
the prosthetic group of carotenoproteins, the
ketocarotenoids were identified. The extracted
carotenoid alone was analysed or admixed with a
ketocarotenoid (canthaxanthin and asthaxanthin)
standard (Hoffman La Roche, Basle, Switzerland
and Sigma, USA). Individual pigments were identified
based on their separation on (a) thin-layer
chromatography, which was carried out on silica
gel-G supported on 20=20 cm glass plate in a
pre-saturated chamber; the solvent system consisted
of 15% acetone in petroleum ether as outlined
by Zagalsky et al. (1967); (b) based on their
partition between hexane and 95% methanol; and
(c) the mass spectrum of end groups (Wetter et
al., 1971
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
2. Materials and methods2.1. Biological samplesFairy shrimp, Streptocephlaus dichotomus(Poondi, Chennai) and water fleas, Moina micrura(near Tambaram, Chennai) were collected fromtemporary ponds and brought to the laboratory.The animals were separated, cleaned with distilledwater, freeze-dried and stored until chromatographicanalyses.2.2. Sample preparationThe animals (1 g dry mass) were homogenisedseparately in 1 ml of acetone, centrifuged at4500=g for 5 min at 4 8C and suspended inEDTV solution (40 mM EDTA, 10% NaCl, pH7.0) . The carotenoprotein complexes were precipitatedwith ammonium sulfate as outlined byZagalsky et al. (1970). The precipitate was againcentrifuged and dissolved in 0.05 M phosphatebuffer (pH 7.0). In the presence of phosphatebuffer, dialysis was performed overnight in arefrigerator. Absorption maxima, prosthetic groupand amino acid compositions of the protein complexwere also analysed.2.3. Column and thin layer chromatographyThe dialysed material was once again centrifugedand then purified by ion-exchange chromatographyon DEAE-cellulose. Elution was carriedout with phosphate buffer (pH 7.0) using a linearconcentration gradient of 0.02–0.35 M. The measurements of extinction in the eluent were taken inthe range of 300–800 nm using a Model 203‘Spectrimom’ spectrophotometer.Carotenoids were liberated from carotenoproteinswith acetone according to the procedure ofShone et al. (1979). Using thin-layer chromatography,the prosthetic group of carotenoproteins, theketocarotenoids were identified. The extractedcarotenoid alone was analysed or admixed with aketocarotenoid (canthaxanthin and asthaxanthin)standard (Hoffman La Roche, Basle, Switzerlandand Sigma, USA). Individual pigments were identifiedbased on their separation on (a) thin-layerchromatography, which was carried out on silicagel-G supported on 20=20 cm glass plate in apre-saturated chamber; the solvent system consistedof 15% acetone in petroleum ether as outlinedby Zagalsky et al. (1967); (b) based on theirpartition between hexane and 95% methanol; and(c) the mass spectrum of end groups (Wetter etal., 1971
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]
คัดลอก!
2. วัสดุและวิธีการ
2.1 ตัวอย่างทางชีวภาพ
กุ้งนางฟ้า Streptocephlaus dichotomus
(Poondi เชนไน) และหมัดน้ำ micrura ไรแดง
(ใกล้ Tambaram เชนไน) ที่ถูกเก็บรวบรวมจาก
บ่อชั่วคราวและนำไปยังห้องปฏิบัติการ.
สัตว์ที่ถูกแยกออกจากกันทำความสะอาดด้วยกลั่น
น้ำแห้งและเก็บไว้ จนกว่าโครมา
วิเคราะห์.
2.2 การเตรียมสารตัวอย่าง
สัตว์ (1 กรัมมวลแห้ง) ถูก homogenised
แยกต่างหากใน 1 มิลลิลิตรของอะซีโตนหมุนเหวี่ยงที่
4500 = กรัมเป็นเวลา 5 นาทีที่ 4 8C และระงับใน
การแก้ปัญหา EDTV (40 มิลลิ EDTA, โซเดียมคลอไรด์ 10%, ค่า pH
7.0) คอมเพล็กซ์ carotenoprotein ถูกตกตะกอน
ด้วยแอมโมเนียมซัลเฟตที่ระบุไว้โดย
Zagalsky et al, (1970) ตะกอนอีกครั้ง
หมุนเหวี่ยงและละลายใน 0.05 M ฟอสเฟต
บัฟเฟอร์ (pH 7.0) ในการปรากฏตัวของฟอสเฟต
บัฟเฟอร์ฟอกไตได้ดำเนินการค้างคืนใน
ตู้เย็น การดูดซึมสูงสุดกลุ่มเทียม
และองค์ประกอบของกรดอะมิโนโปรตีนที่ซับซ้อน
วิเคราะห์ยัง.
2.3 คอลัมน์โครมาและชั้นบาง
วัสดุไตได้รับการหมุนเหวี่ยงอีกครั้ง
และทำให้บริสุทธิ์แล้วโดยโคแลกเปลี่ยนไอออน
บน DEAE-เซลลูโลส elution ได้ดำเนินการ
ออกมาพร้อมกับฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) โดยใช้เส้นตรง
ความเข้มข้นของการไล่ระดับ 0.02-0.35 เมตรวัดของการสูญเสียในตัวชะถูกถ่ายใน
ช่วง 300-800 นาโนเมตรโดยใช้รุ่น 203
spectrophotometer 'Spectrimom.
Carotenoids เป็น การปลดปล่อยจาก carotenoproteins
ด้วยอะซิโตนเป็นไปตามขั้นตอนของการ
Shone et al, (1979) การใช้สารบางชั้น
ของกลุ่มเทียม carotenoproteins,
ketocarotenoids ถูกระบุ สกัด
carotenoid คนเดียวได้รับการวิเคราะห์หรือ admixed กับ
ketocarotenoid (canthaxanthin และ asthaxanthin)
มาตรฐาน (La Roche ฮอฟแมน, บาเซิลวิตเซอร์แลนด์
และซิกสหรัฐอเมริกา) เม็ดสีส่วนบุคคลที่ถูกระบุ
อยู่บนพื้นฐานของการแยกของพวกเขาใน (ก) ชั้นบาง
โคซึ่งได้รับการดำเนินการเกี่ยวกับซิลิก้า
เจลจีได้รับการสนับสนุนในวันที่ 20 = 20 ซมแผ่นกระจกใน
ห้องก่อนอิ่มตัว; ประกอบด้วยระบบตัวทำละลาย
ของอะซีโตน 15% ในปิโตรเลียมอีเทอร์ที่ระบุไว้
โดย Zagalsky et al, (1967); (ข) ตามของพวกเขา
ที่กั้นระหว่างเฮกเซนและเมทานอล 95%; และ
(ค) สเปกตรัมมวลของกลุ่มท้าย (Wetter et
al., 1971
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . ตัวอย่างทางชีวภาพ
นางฟ้ากุ้ง streptocephlaus ไดโคโตมัส
( poondi เจนไน ) และน้ำหมัด , ไรแดง micrura
( ใกล้ tambaram เจนไน ) จากการสัมภาษณ์
บ่อชั่วคราว และนำตัวไปห้องทดลอง .
สัตว์แยกจากกันแล้ว ล้างด้วยน้ำกลั่น
น้ำแห้งและเก็บไว้จนกว่าการวิเคราะห์ทางโครมาโตกราฟี
.
2.2 .
ตัวอย่างการเตรียมสัตว์ ( 1 กรัมน้ำหนักแห้งเป็น homogenised
แยก 1 มิลลิลิตร สำหรับระดับที่ 4 , 500 = g ,
5 นาทีที่ 4 8C และระงับใน
edtv โซลูชั่น ( 40 mM EDTA 10 โซเดียมคลอไรด์พีเอช
7.0 ) การ carotenoprotein เชิงซ้อนตกตะกอนด้วยแอมโมเนียมซัลเฟต (

zagalsky ตามที่ระบุโดย et al . ( 1970 ) เป็นอีกครั้งที่ระดับ 0.05 M

และละลายฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 )ในการแสดงตนของฟอสเฟตบัฟเฟอร์

และมีการค้างคืนในตู้เย็น Maxima การดูดซึม
กลุ่มเทียมและกรดอะมิโนองค์ประกอบโปรตีนที่ซับซ้อนยังวิเคราะห์
.
2.3 คอลัมน์โครมาโตกราฟีผิวบาง
วัสดุ dialysed อีกครั้งที่ระดับแล้ว บริสุทธิ์ โดยการแลกเปลี่ยนไอออน chromatography

บน DEAE เซลลูโลส ได้มาอุ้ม
ด้วยฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 ) โดยใช้การไล่ระดับความเข้มข้น 0.02 0.35 เมตร เส้น
–วัดสูญพันธุ์ในตัวถ่าย
ช่วง 300 - 800 nm ใช้รุ่น 203

'spectrimom ' วัสดุ คาโรทีนอยด์ถูกปลดปล่อยจาก carotenoproteins
ด้วยอะซิโตน ตามขั้นตอนของ
ส่อง et al , . ( 1979 ) การใช้เทคนิค TLC พบ
,กลุ่มเทียมของ carotenoproteins ,
ketocarotenoids ระบุ . สกัดแคโรทีนอยด์คนเดียว
วิเคราะห์หรือผสมกับ ketocarotenoid ( แคนทาแซนทิน และ asthaxanthin )

มาตรฐาน ( ฮอฟแมน ลา โรช และ basle สวิตเซอร์แลนด์
, Sigma , USA ) สีแต่ละตัวระบุ
ตามแยกของพวกเขา ( A )
1 เครื่อง ซึ่งพบว่าซิลิกา
gel-g รองรับใน 20 = 20 ซม. จานแก้วใน
ก่อนห้องอิ่มตัว ; ระบบตัวทำละลาย )
15 % ) ในปิโตรเลียมอีเทอร์ตามที่ระบุ
โดย zagalsky et al . ( 1967 ) ; ( b ) ตาม
กั้นระหว่างเฮกเซนและ 95 % เมทานอล ;
( C ) แมสสเปกตรัมของกลุ่ม ( Wetter et
al . , 1971
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2024 I Love Translation. All reserved.

E-mail: