periodThe initial fish weight was 500 g and the average feeding ratewas 2% of body weight. Fecal waste samples were collected anddiluted similar to the first experimental period. Total solids con-tent of the samples was determined according to APHA 2540 B(APHA, 1998). Each day of measurements, the diluted feces fromone tank were divided in three subsamples of 100 ml and soni-cated for either 0, 4 or 16 min. Between 3–10 mL of sample wereused directly in the OUR test, depending on the sample degrad-ability and the activity of the sludge in the OUR test. The sampleswere stored on ice at all times to prevent degradation. We usedthe OUR test to measure the effects of sonication on short-termCOD bioavailability. The sludge necessary for the OUR tests wasobtained from an upflow sludge blanket denitrification reactor,which has been in stable operation for a year with catfish under similar conditions as described in Martins et al. (2009). Since deni-trifying bacteria are facultative anaerobes (van Rijn et al., 2006), theamount of easily degradable COD in a sample can be determinedby the oxygen consumption resulting from the sample addition tothe sludge (Spanjers and Vanrolleghem, 1995; Xu and Hasselblad,1996). This procedure is not intended to provide information on theactual denitrification potential of the sample, but to estimate theamount of easily degradable COD present. Approximately 2.5 L ofsludge was harvested the day before each measurement, and incu-bated overnight in a water bath of 27◦C under constant aerationand stirring (250 rpm). Two hours before the test, N-allylthiourea(Sigma–Aldrich Chemie B.V., Zwijndrecht, The Netherlands) wasadded at a concentration of 20 mg/L to inhibit nitrification (Xu andHasselblad, 1996). Total suspended solids and volatile suspendedsolids in the sludge were determined according to APHA 2540 D/E(APHA, 1998). Oxygen uptake was determined in a fixed sludgevolume of 2 L (main incubation) with an adapted OUR batch testprocedure of Xu and Hasselblad (1996). Oxygen concentrationswere measured with WTW Oxi 340i handheld meters, using Cel-lOx 325 probes (WTW GmbH, Weilheim, Germany), and recordedwith a PC via serial interface at 10 s-intervals. Endogenous oxy-gen consumption of the sludge was determined before sampleaddition. After the sample addition, the incubation was left stir-ring for 2 min to ensure homogenization and oxygen consumptionwas measured until the oxygen uptake rate was back to endoge-nous conditions. Acetate was added at a sludge/substrate ratio of∼390 g COD/g COD to determine the COD biomass yield in eachnew batch of sludge. The average yield was 69.3 ± 2.4% throughoutthe experimental period, which is comparable to 67% yield usedby Kappeler and Gujer (1992). To measure the O2consumptionin the main incubation, a 250 mL glass bottle equipped with anoxygen probe and stirring magnet was filled with sludge takenfrom the main incubation. The bottle was closed air-tight, placedback into the water bath, stirred and the O2concentration was thenmeasured/recorded. O2concentrations in the measurement bottleswere always kept above 1 mg/L. When O2concentrations droppedbelow 3 mg/L, a second bottle was filled with sludge from the mainincubation and the measurement was continued in the second bot-tle after equilibration of the oxygen probe. This procedure allowedfor an almost continuous measurement of oxygen consumptionrepresentative for the main incubation. After the switch, the sludgefrom the first bottle was poured back into the main incubation.The measurement bottles were kept stirred at 250 rpm in the samewater bath as the main incubation.
periodThe น้ำหนักปลาเริ่มต้น 500 กรัมและค่าเฉลี่ยที่ ratewas ให้อาหาร 2% ของน้ำหนักตัว เสียอย่าง fecal anddiluted คล้ายกับรอบระยะเวลาการทดลองแรกรวบรวมได้ เต็นท์คอนของแข็งทั้งหมดของตัวอย่างที่ถูกกำหนดตามอาภา 2540 B (อาภา 1998) แต่ละวันของวัด ถัง fromone อุจจาระแตกออกได้แบ่งในสาม subsamples 100 ml และ soni cated สำหรับ 0, 4 หรือ 16 นาทีระหว่าง 3-10 mL ของ wereused ตัวอย่างโดยตรงในการทดสอบบริสุทธิ์ ตัวอย่าง degrad-ความสามารถและกิจกรรมของตะกอนในการทดสอบบริสุทธิ์ Sampleswere ที่เก็บไว้ในน้ำแข็งตลอดเวลาเพื่อป้องกันการสลายตัว เรา usedthe อาวทดสอบเพื่อวัดผลของ sonication บนชีวปริมาณออกฤทธิ์สั้น-termCOD ตะกอนที่จำเป็นในบริสุทธิ์ทดสอบ wasobtained จากการบำบัดตะกอนครอบ denitrification เครื่องปฏิกรณ์ ซึ่งได้รับในการดำเนินงานที่มั่นคงปีกับปลาดุกภายใต้เงื่อนไขที่คล้ายกันตามที่อธิบายไว้ใน Martins et al. (2009) เนื่องจากเชื้อแบคทีเรีย deni trifying เป็น facultative anaerobes (van Rijn et al., 2006), theamount ของ COD ในตัวอย่างง่าย ๆ ช่วยกันสามารถมีปริมาณการใช้ออกซิเจนที่เป็นผลมาจากการเพิ่มตัวอย่างตะกอน (Spanjers และ Vanrolleghem, 1995; determinedby เขาฮิวและ Hasselblad, 1996) กระบวนการนี้มีวัตถุประสงค์ เพื่อให้ข้อมูลเกี่ยวกับศักยภาพการ denitrification theactual ของตัวอย่าง แต่ จะประเมิน theamount COD อยู่ช่วยกันได้ ประมาณ 2.5 L ofsludge ถูกเก็บเกี่ยวในวันก่อนและแต่ละวัด แอร์พอร์ตโอเวอร์ไนท์ incu bated ในห้องน้ำของ 27◦C ภายใต้ aerationand คงกวน (250 รอบต่อนาที) สองชั่วโมงก่อนการทดสอบ wasadded N-allylthiourea(Sigma–Aldrich Chemie B.V., Zwijndrecht, The Netherlands) ที่ความเข้มข้น 20 mg/L เพื่อยับยั้งการอนาม็อกซ์ (Xu andHasselblad, 1996) ของแข็งทั้งหมดหยุดการทำงาน และ suspendedsolids ระเหยในตะกอนถูกกำหนดตาม 2540 อาภา D/E(APHA, 1998) ดูดซับออกซิเจนได้กำหนดใน sludgevolume ถาวรของ 2 L (คณะทันตแพทยศาสตร์หลัก) กับ testprocedure ชุดอาวการดัดแปลงของเขาและ Hasselblad (1996) วัดออกซิเจน concentrationswere WTW Oxi 340i เมตรมือถือ คลิปปากตะเข้ Cel-lOx 325 (WTW GmbH, Weilheim เยอรมนี), และ recordedwith พีซีผ่านอินเทอร์เฟซประจำช่วง s 10 ปริมาณการใช้เชื้อ gen endogenous ของตะกอนถูกกำหนดก่อน sampleaddition หลังจากนี้ตัวอย่าง การบ่มที่เหลือผัดแหวนสำหรับ 2 นาที homogenization และวัดจนกระทั่งอัตราการดูดซับออกซิเจนได้กลับไปยังเงื่อนไข endoge nous consumptionwas ออกซิเจน Acetate ถูกเพิ่มที่เป็นตะกอน/พื้นผิวอัตราส่วน of∼390 g COD/g COD เพื่อกำหนดผลผลิตชีวมวล COD ในชุด eachnew ของตะกอน ผลตอบแทนเฉลี่ย 69.3 ± 2.4 throughoutthe ทดลองระยะเวลา ซึ่งเทียบได้กับ 67% อัตราผลตอบแทน usedby Kappeler และ Gujer (1992) วัด O2consumptionin ฟักตัวหลัก ขวดแก้ว 250 mL พร้อมแม่เหล็กโพรบและกวน anoxygen ก็เต็มไป ด้วยตะกอน takenfrom คณะทันตแพทยศาสตร์หลักการ ขวดปิดอากาศแน่น placedback ในห้องน้ำ กวน และ O2concentration จะมี thenmeasured/บันทึก O2concentrations ใน bottleswere วัดเสมอเก็บด้านบน 1 มิลลิกรัม/L. เมื่อ O2concentrations droppedbelow 3 mg/L ขวดที่สองก็เต็มไป ด้วยตะกอนจากการ mainincubation และการวัดได้อย่างต่อเนื่องใน tle โบสถ์ที่สองหลัง equilibration ของโพรบออกซิเจน ตอนนี้ allowedfor การวัดออกซิเจน consumptionrepresentative สำหรับคณะทันตแพทยศาสตร์หลักอย่างต่อเนื่องเกือบ หลังจากสลับ sludgefrom ขวดแรกถูก poured กลับเข้าไปในคณะทันตแพทยศาสตร์หลัก ขวดวัดถูกเก็บคนที่ 250 rpm ในน้ำ samewater เป็นคณะทันตแพทยศาสตร์หลัก
การแปล กรุณารอสักครู่..

periodThe น้ำหนักปลาเริ่มต้น 500 กรัมและให้อาหาร ratewas เฉลี่ย 2% ของน้ำหนักตัว ตัวอย่างอุจจาระของเสียที่ถูกเก็บรวบรวม anddiluted คล้ายกับระยะเวลาการทดลองครั้งแรก ของแข็งรวมนักโทษเต็นท์ของกลุ่มตัวอย่างที่ถูกกำหนดตาม APHA 2540 B (APHA, 1998) ในแต่ละวันของการวัดถังอุจจาระเจือจาง fromone ถูกแบ่งออกเป็นสาม subsamples 100 มล. และ soni-cated ทั้ง 0, 4 หรือ 16 นาที ระหว่าง 3-10 มิลลิลิตรตัวอย่าง wereused โดยตรงในการทดสอบของเราขึ้นอยู่กับตัวอย่าง Degrad ความสามารถและการทำงานของตะกอนในการทดสอบของเราที่ sampleswere เก็บไว้บนน้ำแข็งที่ทุกครั้งเพื่อป้องกันการย่อยสลาย เรา usedthe การทดสอบของเราในการวัดผลกระทบของ sonication ในการดูดซึมสั้น termCOD กากตะกอนที่จำเป็นสำหรับการทดสอบของเรา wasobtained จากผ้าห่มตะกอนไหล denitrification เครื่องปฏิกรณ์ที่ได้รับในการดำเนินงานที่มั่นคงสำหรับปีกับปลาดุกภายใต้เงื่อนไขที่คล้ายกันตามที่อธิบายในมาร์ตินและอัล (2009) (. รถตู้ Rijn et al, 2006) เนื่องจากแบคทีเรีย Deni-trifying มี anaerobes ตามอำเภอใจ, theamount ของที่ย่อยสลายได้อย่างง่ายดายซีโอดีในกลุ่มตัวอย่างสามารถ determinedby การใช้ออกซิเจนที่เกิดจากการเพิ่มตัวอย่าง tothe ตะกอน (Spanjers และ Vanrolleghem, 1995; Xu และ Hasselblad, 1996) ขั้นตอนนี้จะไม่ได้มีวัตถุประสงค์ที่จะให้ข้อมูลเกี่ยวกับศักยภาพ theactual denitrification ของกลุ่มตัวอย่าง แต่ในการประมาณการของ theamount สามารถย่อยสลายได้ง่ายซีโอดีในปัจจุบัน ประมาณ 2.5 ลิตร ofsludge เก็บเกี่ยววันก่อนการวัดแต่ละและ incu-ซึ้งน้อยลงในชั่วข้ามคืนในอ่างน้ำของ27◦Cภายใต้ aerationand คงกวน (250 รอบต่อนาที) สองชั่วโมงก่อนการทดสอบ N-allylthiourea (Sigma-Aldrich Chemie BV, Zwijndrecht, เนเธอร์แลนด์) wasadded ที่ความเข้มข้น 20 มิลลิกรัม / ลิตรเพื่อยับยั้งไนตริฟิเค (Xu andHasselblad, 1996) สารแขวนลอยทั้งหมดและ suspendedsolids ระเหยในตะกอนที่ถูกกำหนดตาม APHA 2540 D / E (APHA, 1998) การดูดซึมออกซิเจนถูกกำหนดใน sludgevolume คงที่ 2 L (บ่มหลัก) ที่มีการดัดแปลงชุดของเรา testprocedure ของเสี่ยวและ Hasselblad (1996) concentrationswere ออกซิเจนวัดที่มี WTW Oxi 340i เมตรมือถือโดยใช้ Cel-LOX 325 โพรบ (WTW GmbH, Weilheim เยอรมนี) และ recordedwith เครื่องคอมพิวเตอร์ผ่านทางอินเตอร์เฟซอนุกรมที่ 10 s-ช่วงเวลา ภายนอกบริโภคออกซิเจนเก็ตะกอนถูกกำหนดก่อน sampleaddition นอกจากนี้หลังจากที่ตัวอย่างที่บ่มถูกทิ้งผัดแหวนเป็นเวลา 2 นาทีเพื่อให้แน่ใจว่าเป็นเนื้อเดียวกันและ consumptionwas วัดออกซิเจนจนอัตราการดูดซึมออกซิเจนกลับมาอยู่กับเงื่อนไข endoge-เซ้นส์ Acetate ถูกเพิ่มเข้ามาในอัตราส่วนตะกอน / สารตั้งต้น of~390 กรัมซีโอดี / กรัมซีโอดีในการกำหนดอัตราผลตอบแทนจากชีวมวลซีโอดีในชุด eachnew ตะกอน อัตราผลตอบแทนเฉลี่ย 69.3 ± 2.4% throughoutthe ระยะเวลาการทดลองซึ่งก็เปรียบได้กับอัตราผลตอบแทน 67% usedby Kappeler และ Gujer (1992) การวัด O2consumptionin บ่มหลักขวดแก้ว 250 มลพร้อมกับสอบสวน anoxygen และแม่เหล็กตื่นเต้นที่เต็มไปด้วยตะกอน takenfrom บ่มหลัก ขวดเป็นปิดเครื่องแน่น placedback ลงในน้ำน้ำกวนและ O2concentration ถูก thenmeasured / บันทึก O2concentrations ในการวัด bottleswere เก็บไว้เสมอมากกว่า 1 มิลลิกรัม / ลิตร เมื่อ O2concentrations droppedbelow 3 มิลลิกรัม / ลิตร, ขวดที่สองก็เต็มไปด้วยตะกอนจาก mainincubation และวัดได้รับการอย่างต่อเนื่องในบอ-TLE ที่สองหลังจากที่สมดุลของหัวออกซิเจน ขั้นตอนนี้ allowedfor วัดอย่างต่อเนื่องเกือบ consumptionrepresentative ออกซิเจนสำหรับการบ่มหลัก หลังจากที่สวิทช์ที่ sludgefrom ขวดแรกถูกเทกลับเข้ามาในขวดวัด incubation.The หลักถูกเก็บไว้กวนที่ 250 รอบต่อนาทีในขณะที่อาบน้ำ samewater บ่มหลัก
การแปล กรุณารอสักครู่..

periodthe เริ่มต้นปลามีน้ำหนัก 500 กรัม และเลี้ยงอาหารเฉลี่ย 2% ของน้ำหนักตัว ตัวอย่างของเสียอุจจาระจำนวน anddiluted คล้ายกับช่วงทดลองก่อน ของแข็งทั้งหมด con เต็นท์ของตัวอย่างได้พิจารณาตาม apha 2540 B ( apha , 1998 ) แต่ละวันของการวัดที่เจือจาง fromone ถังอุจจาระถูกแบ่งออกเป็นสาม subsamples 100 ml และโซนี่ตั้งอยู่เพื่อให้ 04 หรือ 16 นาที ระหว่าง 3 – 10 ml ของตัวอย่างและโดยตรงในการทดสอบของเราขึ้นอยู่กับตัวอย่าง degrad ความสามารถและกิจกรรมของตะกอนในการทดสอบของเรา คนเก็บไว้ในน้ำแข็งตลอดเวลาเพื่อป้องกันการย่อยสลาย เราใช้ทดสอบของเราในการวัดผลของการ sonication บน termcod สั้นตะกอนที่จำเป็นสำหรับการทดสอบของเราจากกากตะกอนน้ำไหลลงมาคลุมเตาปฏิกรณ์ที่ได้รับในการดำเนินงานที่มั่นคงสำหรับปีด้วยปลาดุก ภายใต้เงื่อนไขที่คล้ายกันตามที่อธิบายไว้ใน มาร์ตินส์ et al . ( 2009 ) ตั้งแต่ดีนี่ trifying แบคทีเรียอยหลักวิชา ( ฟาน แรยน์ et al . , 2006 )และย่อยสลายได้ง่าย ปลา ในตัวอย่างเป็นทางการใช้ออกซิเจนที่เกิดจากตัวอย่างนอกจากนี้กับกากตะกอน ( และ spanjers vanrolleghem , 1995 ; Xu และ Hasselblad , 1996 ) ขั้นตอนนี้ไม่ได้มีวัตถุประสงค์เพื่อให้ข้อมูลเกี่ยวกับศักยภาพของน้ำตัวอย่างจริง แต่การประมาณการปริมาณ COD ย่อยสลายได้ง่าย ปัจจุบัน ประมาณ 2ผมแห้ง 5 วัน ก่อนเก็บเกี่ยวผลผลิตในแต่ละวัด และ incu ลดค้างคืนในนํ้า 27 ◦ภายใต้อุณหภูมิคงที่ ( aerationand การกวน 250 รอบต่อนาที ) สองชั่วโมงก่อนการทดสอบ n-allylthiourea ( ซิกม่า Aldrich และเคมีลดลง Zwijndrecht , เนเธอร์แลนด์ ) wasadded ที่ระดับความเข้มข้น 20 มก. / ล. ยับยั้งไนตริฟิเคชั่น ( Xu andhasselblad , 1996 )ของแข็งแขวนลอยทั้งหมด และเปลี่ยนแปลงได้ suspendedsolids ในกากตะกอนมีกำหนดตาม apha 2540 D / E ( apha , 1998 ) ออกซิเจนถูกกำหนดในการแก้ไข sludgevolume 2 L ( 4 หลัก ) ที่มีการปรับรุ่นของเรา testprocedure ของซูและ Hasselblad ( 1996 ) concentrationswere ออกซิเจนวัด wtw oxi 340i มือถือเมตรใช้ cel LOX 325 ) ( wtw GmbH , Weilheim , เยอรมัน ) ,และ recordedwith พีซีผ่านทางอินเตอร์เฟซอนุกรมที่ 10 s-intervals . การใช้โครงสร้างของตะกอนเป็น oxy gen ตัดสินใจก่อน sampleaddition . หลังจากตัวอย่างและบ่มเพาะ เหลือตั้ง 2 นาทีเพื่อให้แน่ใจว่าแหวนและการ consumptionwas วัดอัตราการใช้ออกซิเจน ออกซิเจนจะถูกกลับ endoge เงื่อนไขนู .อะซิเตทเป็นเพิ่มในอัตราส่วนของกากตะกอน / แผ่น∼ 390 กรัมซีโอดี / ก. ซีโอดีเพื่อตรวจสอบ COD ในชุด eachnew ผลผลิตมวลชีวภาพของตะกอน ผลผลิตเฉลี่ยรอง± 2.4% จากสัปดาห์ ซึ่งก็เปรียบได้กับ 67 เปอร์เซ็นต์และ usedby แคปเปเลอร์ gujer ( 1992 ) วัด o2consumptionin 4 หลัก250 ml ขวดแก้วพร้อมโพรบ anoxygen กวนแม่เหล็กและเต็มไปด้วยตะกอนระหว่าง 4 หลัก ขวดที่ปิดอากาศแน่น placedback ลงไปในน้ำอาบน้ำ , กวนและ o2concentration คือ thenmeasured / บันทึก o2concentrations ในการวัด bottleswere มักจะเก็บไว้ข้างบน 1 มิลลิกรัมต่อลิตร เมื่อ o2concentrations droppedbelow 3 มิลลิกรัม / ลิตรขวดที่สองก็เต็มไปด้วยตะกอนจาก mainincubation และการวัดผลอย่างต่อเนื่องใน TLE บอทที่สองหลังจาก equilibration ของออกซิเจนด้วย ขั้นตอนนี้ allowedfor เกือบต่อเนื่องการวัด consumptionrepresentative ออกซิเจน 4 หลัก หลังจากสลับ sludgefrom ขวดแรกถูกเทกลับไปใน 4 หลักวัดขวดไว้กวน 250 รอบต่อนาทีใน samewater บาทเป็น 4 หลัก
การแปล กรุณารอสักครู่..
