Riboflavin was successfully encapsulated using both the internal
and external methods. The equilibrium concentration of riboflavin
in the microbeads from both methods, relative to the ratio of riboflavin
to protein in solution is shown in Fig. 1. The concentration of
riboflavin in the microbeads from both methods increased with
increasing ratio of riboflavin to protein. Higher ratios of riboflavin
to protein were achievable using the external method which resulted
in higher concentrations of riboflavin in the microbead. In
experiments using the internal method the ratio can only be increased
up to the point of maximum riboflavin solubility. As a result,
the maximum attainable concentration of riboflavin in the
microbeads is equal to the maximum solubility of riboflavin in
the microbead forming solution. Given the porous nature of the
microbeads and the smaller hydrodynamic radius of the riboflavin
molecule relative to the gel pore size, diffusion out of the microbead
can occur, as has been reported in the literature (Chen & Subirade,
2006). Similarly, diffusional losses were observed in this study with
losses increasing as the mass ratio of riboflavin to protein increased.
At a ratio of 1.05 the concentration of riboflavin in the microbead
forming solution was 120 mg/L however after crosslinking, the concentration
in the microbeads was 43.8 mg/L. At a lower ratio, 0.08
the riboflavin concentration decreased from 20 mg/L in the microbead
forming solution to 5.1 mg/L in the microbead. This shows
considerable losses of riboflavin occur during crosslinking and
washing. During crosslinking, gel formation occurs initially by
hydrophobic interactions however it is likely that subsequent disulphide
bond formation plays an important role in maintaining gel
structure (Bryant & McClements, 1998; Monahan, Mc Clements, &
German, 1996). If the bioactive can diffuse through the microbead
pores, diffusional losses are likely, since the microbeads need to
be allowed sufficient time in the CaCl2 solution to allow crosslinking
and disulphide bond formation.
Riboflavin ได้บรรจุการใช้ทั้งภายในและภายนอก
วิธี . สมดุลความเข้มข้นของ Riboflavin
ในไมโครบีดส์ จากทั้งสองวิธีเมื่อเทียบกับอัตราส่วนของ Riboflavin
กับโปรตีนในสารละลายจะแสดงในรูปที่ 1 ความเข้มข้นของ
Riboflavin ในไมโครบีดส์ จากทั้งสองวิธีเพิ่มอัตราส่วนของ Riboflavin ใน
เพิ่มโปรตีนสูงกว่าอัตราส่วนของ Riboflavin
ให้โปรตีนได้โดยใช้วิธีภายนอกซึ่งเป็นผล
สูงกว่าความเข้มข้นของ Riboflavin ใน microbead . ในการทดลองใช้วิธี
ภายในอัตราส่วนสามารถเพิ่มขึ้น
ถึงจุดของการละลาย Riboflavin สูงสุด เป็นผลให้ความเข้มข้นสูงสุดได้
Riboflavin ในไมโครบีดเท่ากับสูงสุดความสามารถในการละลายของ Riboflavin ใน
microbead สร้างโซลูชัน กําหนดลักษณะรูพรุนของ
ไมโครบีดส์ขนาดเล็กรัศมีและดัชนีของ Riboflavin
โมเลกุลที่สัมพันธ์กับเจลกระชับรูขุมขนขนาด กระจายออกมาจาก microbead
สามารถเกิดขึ้นได้เมื่อได้รับการรายงานในวรรณคดี ( เฉิน& subirade
, 2006 ) ในทํานองเดียวกันการสูญเสีย diffusional ที่พบในการศึกษานี้กับ
ขาดทุนเพิ่มขึ้นเป็น อัตราส่วนมวลของ Riboflavin ในโปรตีนเพิ่มขึ้น
อัตรา 1.05 ความเข้มข้นของ Riboflavin ใน microbead
สร้างโซลูชั่นคือ 120 มิลลิกรัมต่อลิตรอย่างไรก็ตามหลังจากทำปฏิกิริยา ความเข้มข้น
ในไมโครบีดส์อยู่ที่ 43.8 มิลลิกรัมต่อลิตรในสัดส่วนลดลง 0.08
การพร่ำพูดความเข้มข้นลดลงจาก 20 มิลลิกรัมต่อลิตร ใน microbead
เป็นโซลูชั่น 5.1 มิลลิกรัมต่อลิตรใน microbead . นี้แสดงให้เห็นถึงการสูญเสียมากของ Riboflavin
เกิดขึ้นระหว่างโมเลกุลและ
ซัก ในระหว่างการเชื่อม การเกิดเจลเกิดขึ้นเริ่มโดย
) ปฏิสัมพันธ์อย่างไรก็ตามมีแนวโน้มว่าตามมา =
พันธบัตรการมีบทบาทสำคัญในการรักษาโครงสร้างของเจล
( ไบรอัน& mcclements , 1998 ; โมนาแฮน , MC คลี&
, เยอรมัน , 1996 )ถ้าทางชีวภาพสามารถกระจายผ่าน microbead
รูขุมขน , การสูญเสีย diffusional มีโอกาส เนื่องจากไมโครบีดส์ต้อง
ได้รับอนุญาตเวลาเพียงพอในสารละลาย CaCl2 เพื่อให้ทำปฏิกิริยา
และการพัฒนา = . .
การแปล กรุณารอสักครู่..
