of salinity to stomatal conductance

of salinity to stomatal conductance.
Although reduction of photosynthesis by
salinity is partly due to a reduced stomatal
conductance, non-stomatal inhibition of
photosynthesis, caused by direct effects of
NaCl on the photosynthetic apparatus, has
been reported for some species (Seemann
and Sharkey, 1986; Delfine et al., 1998;
Sultana et al., 1999; Steduto et al., 2000).
These non-stomatal factors consist of a
reduced efficiency of RuBP carboxylase,
reduction of RuBP regeneration, the
sensitivity of photosystem II to NaCl and a
reduction in chlorophyll pigments to absorb
enough light (Ball and Farquhar 1984; Ball
and Anderson 1986; Seemann and Sharkey,
1986).
Since information on phisiological
changes occurring during salt stress is
lacking for sugar beet, which is relatively
tolerant of saline environments, the aim of
this study was to compare the response to
salinity of two cultivars of sugarbeet. The
different varieties were chosen according to
preliminary information on their growth
under saline conditions (Dadkhah and
Griffiths, 2006). In this paper, the effect of
different levels of salinity treatment on gas
exchange, stomatal conductance and
chlorophyll content of two sugar beet
cultivars are discribed.
MATERIALS AND METHODS
Plant Materials and Growth Conditions
A pot experiment was carried out based on
randomized complete block design with six
replications to investigate the effect of salt
stress on growth and gas exchange of two
sugar beet (Beta vulgaris) cultivars, one of
Iranian origin (7233-P29) and a British
(Madison) cultivar, which were chosen
according to preliminary information on
their growth under saline conditions
(Dadkhah and Grifiths, 2006).
Seeds were sown 5 mm deep in plastic
containers (40×20×10 cm) filled with
vermiculite. After emergence, seedlings
were transplanted to 15 cm diameter plastic
pots (one seedling per pot) containing
washed sand, with a saucer under them to
prevent leaching after irrigation, and
transferred to controlled conditions. The
growth conditions were 26±1°C/16±1°C
(day/night), while relative humidity was
between 45-55%. Photon flux density (PFD)
was about 350 µmol m-2 s-1 at canopy height
with 16-h photoperiod. Five levels of
salinity (0, 50, 150, 250, 350 mM
NaCl+CaCl2 in 5:1 molar ratio) were
imposed through irrigation from the time
most plants were at the 4-leaf stage and
continued for 8 weeks. Salts were added to
modified Hoagland nutrient solution (Maas
and Poss, 1989). The pots were flushed out
with saline water containing nutrients every
week to ensure homogeneity of salinity and
nutrient supply in the growth medium. To
prevent shock to plants, irrigation started
with 50 mM saline water and was increased
by 50 mM every other day until reaching
each salinity level.
Growth was measured as leaf area, number
of leaves, and dry matter accumulation.
Plants were harvested after 8 weeks of salt
treatment and were separated into leaf
lamina, petioles, stem, and roots. These
components were dried for 48h at 70ºC in a
convection oven and weighed.
Data Collection
Gas exchange patterns in sugar beet leaves
were studied in the presence of salinity
under controlled environmental condition.
Net photosynthesis (ACO2) of the attached
youngest fully expanded leaf (youngest leaf
over 50% full size) and the oldest leaf were
measured by enclosing the middle part of
leaf in the cuvette of a Combined Infra Red
Gas Analysis System (CIRAS-1 Portable
photosynthesis system) at week 8 after
commencement of salinity tretment. The
area of cuvette that caught full illumination
was 2.5 cm2
. Measurements and results were
displayed on the analyzer display panel and
also recorded on the data storage system. In
order to study photosynthetic efficiency,

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ของเค็มเพื่อต้านทาน stomatalแม้ว่าการลดการสังเคราะห์ด้วยแสงโดยเค็มเป็นบางส่วนเนื่องจากการลด stomatalต้านทาน ยับยั้งไม่ stomatalการสังเคราะห์ด้วยแสง เกิดจากผลกระทบโดยตรงมี NaCl ในเครื่อง photosyntheticการรายงาน (Seemann บางชนิดและ Sharkey, 1986 เดลไฟน์พาร์ et al., 1998หญิงร้อยเอ็ด al., 1999 Steduto และ al., 2000)ปัจจัยเหล่านี้ไม่ใช่ stomatal ประกอบด้วยการลดประสิทธิภาพของ RuBP carboxylaseลดของ RuBP ฟื้นฟู การความไวของ photosystem II กับ NaCl และลดเม็ดสีคลอโรฟิลล์จะดูดซับแสงเพียงพอ (ลูกและ Farquhar 1984 ลูกบอลแอนเดอร์สัน 1986 และ Seemann และ Sharkey1986)ตั้งแต่ข้อมูล phisiologicalมีการเปลี่ยนแปลงที่เกิดขึ้นในระหว่างความเครียดเกลือขาดสำหรับนทาน ซึ่งค่อนข้างทนกับสภาพแวดล้อม saline จุดมุ่งหมายของการศึกษานี้เป็นการ เปรียบเทียบการตอบสนองต่อเค็มของพันธุ์สองของ sugarbeet ที่มีเลือกแตกต่างกันตามข้อมูลเบื้องต้นในการเจริญเติบโตภายใต้เงื่อนไข saline (Dadkhah และGriffiths, 2006) ในเอกสารนี้ ผลของการระดับความเค็มรักษาแก๊สแตกต่างแลกเปลี่ยน ต้านทาน stomatal และคลอโรฟิลล์เนื้อหาของสองนทานพันธุ์ discribed ได้วัสดุและวิธีการวัสดุโรงงานและสภาพการเจริญเติบโตทดลองหม้อถูกดำเนินการตามออกแบบบล็อก randomized สมบูรณ์ 6ระยะการตรวจสอบผลของเกลือความเครียดเกี่ยวกับการแลกเปลี่ยนก๊าซและการเติบโตของทั้งสองนทาน (Beta vulgaris) พันธุ์ หนึ่งจุดเริ่มต้นของอิหร่าน (7233-P29) และอังกฤษเป็นCultivar (เมดิสัน) ซึ่งถูกเลือกตามข้อมูลเบื้องต้นเจริญเติบโตของพวกเขาภายใต้เงื่อนไข saline(Dadkhah และ Grifiths, 2006)เมล็ดถูกหว่าน 5 มม.ลึกในพลาสติกภาชนะบรรจุ (40 × 20 × 10 ซม.) ด้วยvermiculite หลังจากเกิด กล้าไม้มี transplanted กับพลาสติกเส้นผ่าศูนย์กลาง 15 ซม.หม้อ (แหล่งหนึ่งต่อหม้อ) ประกอบด้วยหินทราย พร้อมจานรองแก้วภายใต้การละลายหลังจากชลประทาน ป้องกัน และโอนย้ายการควบคุมเงื่อนไข ที่สภาพการเจริญเติบโตได้ 26±1 ° C/16±1 ° C(กลางวัน/กลางคืน), ในขณะที่ความชื้นสัมพัทธ์ได้ระหว่าง 45-55% ความหนาแน่นฟลักซ์โฟตอน (PFD)มี 350 µmol m 2 s-1 ความสูงของฝาครอบกับ 16 h ชั่วโมง ระดับที่ 5เค็ม (0, 50, 150, 250, 350 มม.NaCl + CaCl2 อัตราส่วนสบ 5:1) ได้กำหนดผ่านชลประทานจากเวลาพืชส่วนใหญ่อยู่ในขั้น 4 ใบ และต่อ 8 สัปดาห์ มีเพิ่มเกลือแก้ไข Hoagland ธาตุอาหารโซลูชั่น (Maasก Poss, 1989) กระถางได้ล้างออกด้วยน้ำเกลือที่ประกอบด้วยสารอาหารทุกสัปดาห์เพื่อให้แน่ใจว่า homogeneity ของเค็ม และจัดหาธาตุอาหารในการเจริญเติบโต ถึงป้องกันการช็อกพืช ชลประทานที่เริ่มต้นด้วยน้ำเกลือ 50 มม. และเพิ่มขึ้นโดยทุกวันจนถึง 50 มม.แต่ละระดับเค็มเจริญเติบโตถูกวัดเป็นใบไม้ที่ตั้ง หมายเลขใบไม้ และแห้งว่าสะสมพืชเก็บเกี่ยวผลผลิตหลังจาก 8 สัปดาห์ของเกลือtreatment and were separated into leaflamina, petioles, stem, and roots. Thesecomponents were dried for 48h at 70ºC in aconvection oven and weighed.Data CollectionGas exchange patterns in sugar beet leaveswere studied in the presence of salinityunder controlled environmental condition.Net photosynthesis (ACO2) of the attachedyoungest fully expanded leaf (youngest leafover 50% full size) and the oldest leaf weremeasured by enclosing the middle part ofleaf in the cuvette of a Combined Infra RedGas Analysis System (CIRAS-1 Portablephotosynthesis system) at week 8 aftercommencement of salinity tretment. Thearea of cuvette that caught full illuminationwas 2.5 cm2. Measurements and results weredisplayed on the analyzer display panel andalso recorded on the data storage system. Inorder to study photosynthetic efficiency,

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ความเค็มของน้ำในปากความนำ .
ถึงแม้ว่าการลดการสังเคราะห์แสงโดย
ความเค็ม ส่วนหนึ่งเนื่องจากการลดลงของ
ความนำ ไม่ใช่ของการยับยั้ง
การสังเคราะห์แสง เกิดจากผลของเกลือโดยตรงบนอุปกรณ์

มีการสังเคราะห์แสง มีบางชนิด ( seemann
และ ชาร์คกี้ , 1986 ; delfine et al . , 1998 ;
Sultana et al . , 1999 ; steduto et al . , 2000 ) .
ปัจจัยเหล่านี้ไม่ใช่ปากประกอบด้วย
ลดประสิทธิภาพของอวัยวะสืบพันธุ์ rubp , ลดการ rubp
,
photosystem II เพื่อความไวของเกลือและลดเม็ดสีคลอโรฟิลล์ดูด

แสงพอ ( ลูกและ farquhar 1984 ; บอล
แอนเดอร์สัน 1986 ; และ seemann Sharkey

เนื่องจากข้อมูลใน 1986 ) phisiological
เปลี่ยนแปลงที่เกิดขึ้นในระหว่างความเครียดเกลือ
ขาดน้ำตาล beet ,ซึ่งค่อนข้าง
ใจกว้างของสภาพแวดล้อมด้วย วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้เพื่อเปรียบเทียบ

การตอบสนองต่อความเค็มของ 2 พันธุ์ของซูการ์บีท .
พันธุ์ต่างกัน เลือกตาม

ข้อมูลเบื้องต้นในการเจริญเติบโตของพวกเขาภายใต้เงื่อนไขน้ำเกลือ ( dadkhah และ
Griffiths , 2006 ) ในกระดาษนี้ , ผลของระดับความเค็มต่อ

การแลกเปลี่ยนก๊าซ ,ไม่มีอิทธิพลต่อปริมาณคลอโรฟิลล์ของน้ำตาลและ

2 พันธุ์ คือ discribed .

วัสดุพืชวัสดุและวิธีการและเงื่อนไขการเจริญเติบโต
หม้อทดลองตามแผนการทดลองแบบ Randomized Complete Block Design 6

ซ้ำเพื่อศึกษาผลของเกลือ
ความเครียดต่อการเจริญเติบโตและการแลกเปลี่ยนก๊าซของ 2
น้ำตาล ( Beta vulgaris ) พันธุ์หนึ่งของ
ชาวเปอร์เซียที่มา ( 7233-p29 ) และอังกฤษ
( เมดิสัน ) พันธุ์ ซึ่งได้รับเลือกตามข้อมูลเบื้องต้น


( ภายใต้เงื่อนไขการเจริญเติบโตของเกลือและ dadkhah grifiths , 2006 ) .
เมล็ดหว่านลึกลงไปในภาชนะพลาสติก
5 มม. ( 40 × 2 × 10 ซม. ) เต็มไปด้วย
vermiculite . หลังงอก ต้นกล้า ,
ถูกย้ายไป 15 ซม. กระถางพลาสติก
( กล้าต่อหม้อ ) ประกอบด้วย
ล้างทรายกับจานรองภายใต้พวกเขาเพื่อป้องกันการชะล้างจากน้ำ

โอนและเงื่อนไขควบคุม
เงื่อนไขการเจริญเติบโต 26 ± 1 ° C / 16 ± 1 ° C
( กลางวัน / กลางคืน ) ในขณะที่ความชื้น
ระหว่าง 45-55 % ความหนาแน่นของโฟตอน ( PFD )
ประมาณ 350 µโมล ด้วยทรงพุ่มสูงที่สุดใน 16-h
ด้วยแสง . ห้าระดับของ
ความเค็ม ( 0 , 50 , 150 , 250 , 350 มม. ผลิตเกลือในอัตราส่วน 5 : 1

) คือบังคับผ่านชลประทานจากเวลา
พืชส่วนใหญ่อยู่ใน 4-leaf เวที
อย่างต่อเนื่องเป็นเวลา 8 สัปดาห์ เกลือเพิ่ม

แก้ไขโฮกเลินสารละลายธาตุอาหาร ( มาส
และ พอส , 1989 ) หม้อถูกขับออกมา

กับน้ำเกลือที่มีสารอาหารทุกสัปดาห์เพื่อให้แน่ใจว่าค่าความเค็ม และจัดหาสารอาหารในอาหารเลี้ยงเชื้อ
.

ป้องกันการช็อกกับพืช น้ำ เริ่ม
กับ 50 มม. น้ำและเกลือเพิ่มขึ้น
50 มม. ทุก ๆวัน จนกว่าจะเข้าถึงแต่ละระดับความเค็ม
.
ศึกษาการเจริญเติบโตตามพื้นที่ใบ หมายเลข
ของใบ และการสะสมน้ำหนักแห้งของพืชที่ถูกเก็บเกี่ยวหลังจาก .
8 สัปดาห์ของการรักษาและแยกเกลือ

ใบก้านใบ ลำต้น และใบ ราก ส่วนประกอบเหล่านี้
แห้ง สำหรับเลี้ยงที่ 70 º C ในเตาอบ
แบบเก็บข้อมูล

และชั่งน้ำหนัก