- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
As shown in Table 4, Lactococcus la
As shown in Table 4, Lactococcus lactis strains were able to grow
in MRSB and MRS þ S media in high counts. This can lead to the
statement that the MRSB and MRS þ S media were not selective for
L. acidophilus La5 in the presence of L. lactis in Prato cheese. The
addition of 1.5% bile to the culture medium was not able to inhibit
L. lactis. Although the sensitivity of lactococci strains to bile salts is
reported in literature, this characteristic is strain dependent
(Begley, Gahan, & Hill, 2005), which may explain the variability in
results using this culture medium for different microorganisms. In
contrast, the addition of bile in MRS agar was able to inhibit the
yoghurt starter culture, thus being considered selective for
enumeration of L. acidophilus from these products (Table 3). Based
on experimental results, we conclude that the high counts in the
Prato cheese (>9.0 log CFU/mL) when the culture media MRSB and
MRS þ S were used, have probably included Lactococcus lactis
strains, and may have also included other microorganisms such as
NSLAB. This conclusion was supported by colony morphology and
microscopic observations (data not shown). Oberg et al. (2011) also
observed the non-selectivity of MRS-S for enumeration of
L. acidophilus from cheese.
The replacement of glucose by sorbitol in MRS agar should
inhibit the development of the lactic acid bacteria, since these
microorganisms cannot ferment sorbitol, such as S. thermophilus
strains (Hardie & Whiley, 2006). However, this behavior was not
verified in this study, since pure cultures of Lactococcus lactis, L.
bulgaricus and S. thermophilus have developed in the culture medium
containing sorbitol at 37 C (L. lactis) or 45 C (yoghurt cultures).
Possibly the unusual growth of these strains in the presence
of sorbitol could be explained by culture rotation, which is a
technique performed by several industrial manufacturers of cultures
in order to control bacteriophages. The inhibition of Lactococcus
lactis in MRSS agar incubated at 45 C suggests that the
incubation temperature was responsible for the lack of development
in this medium as Lactococcus lactis does not grow at 45 C
(Nomura, Kobayashi, Narita, Kimoto-Nira, & Okamoto, 2006;
Teuber & Geis, 2006). The incubation temperature was also
responsible for the inhibition of L. acidophilus in M17 agar at 30 C
from cheeses (Table 4), since this microorganism has the optimum
growth temperature between 35 and 40 C (Hammes & Hertel,
2006; IDF, 1995). The selectivity of the M17 agar is also related to
the inhibitory effect of sodium glycerophosphate on different lactobacilli
strains (Shankar & Davies, 1977). This inhibitory effect was
confirmed by the lower counts of pure cultures of L. acidophilus in
M17 incubated at 37 C (Table 4) or 45 C (Table 3), and L. bulgaricus
in M17 incubated at 45 C (Table 3).
The addition of clindamycin to the MRS agar did not inhibit the
Lactococcus lactis strains in the probiotic cheese. Ammor, Florez,
and Mayo (2007) reported that despite this genus exhibits susceptibility
to different groups of antibiotics, some strains have
shown resistant to clindamycin, as well as bacteria belonging to the
genus Lactobacillus (Table 4).
Comparing the results using the culture medium RCA pH 5.3 and
MRS at pH 5.2 (Table 4), we concluded that the components of RCA
are capable of inhibiting the growth of L. acidophilus and
S. thermophilus. In contrast, the decrease in pH of MRS agar to 5.2
was not sufficient to inhibit these microorganisms. Moreover, the
temperature and the conditions of incubation were the same for
both culture media, evidencing that the MRS agar at pH 5.2 was not
selective for the enumeration of L. bulgaricus from the probiotic
yoghurt under the conditions studied, since other strains that may
be present in yoghurt are able to grow in this culture medium.
Importantly, although literature reports different selective
methodologies for evaluation of microorganisms in probiotic
products, there is a need to test the culture media, once the
selectivity is directly related to the presence of other strains.
in MRSB and MRS þ S media in high counts. This can lead to the
statement that the MRSB and MRS þ S media were not selective for
L. acidophilus La5 in the presence of L. lactis in Prato cheese. The
addition of 1.5% bile to the culture medium was not able to inhibit
L. lactis. Although the sensitivity of lactococci strains to bile salts is
reported in literature, this characteristic is strain dependent
(Begley, Gahan, & Hill, 2005), which may explain the variability in
results using this culture medium for different microorganisms. In
contrast, the addition of bile in MRS agar was able to inhibit the
yoghurt starter culture, thus being considered selective for
enumeration of L. acidophilus from these products (Table 3). Based
on experimental results, we conclude that the high counts in the
Prato cheese (>9.0 log CFU/mL) when the culture media MRSB and
MRS þ S were used, have probably included Lactococcus lactis
strains, and may have also included other microorganisms such as
NSLAB. This conclusion was supported by colony morphology and
microscopic observations (data not shown). Oberg et al. (2011) also
observed the non-selectivity of MRS-S for enumeration of
L. acidophilus from cheese.
The replacement of glucose by sorbitol in MRS agar should
inhibit the development of the lactic acid bacteria, since these
microorganisms cannot ferment sorbitol, such as S. thermophilus
strains (Hardie & Whiley, 2006). However, this behavior was not
verified in this study, since pure cultures of Lactococcus lactis, L.
bulgaricus and S. thermophilus have developed in the culture medium
containing sorbitol at 37 C (L. lactis) or 45 C (yoghurt cultures).
Possibly the unusual growth of these strains in the presence
of sorbitol could be explained by culture rotation, which is a
technique performed by several industrial manufacturers of cultures
in order to control bacteriophages. The inhibition of Lactococcus
lactis in MRSS agar incubated at 45 C suggests that the
incubation temperature was responsible for the lack of development
in this medium as Lactococcus lactis does not grow at 45 C
(Nomura, Kobayashi, Narita, Kimoto-Nira, & Okamoto, 2006;
Teuber & Geis, 2006). The incubation temperature was also
responsible for the inhibition of L. acidophilus in M17 agar at 30 C
from cheeses (Table 4), since this microorganism has the optimum
growth temperature between 35 and 40 C (Hammes & Hertel,
2006; IDF, 1995). The selectivity of the M17 agar is also related to
the inhibitory effect of sodium glycerophosphate on different lactobacilli
strains (Shankar & Davies, 1977). This inhibitory effect was
confirmed by the lower counts of pure cultures of L. acidophilus in
M17 incubated at 37 C (Table 4) or 45 C (Table 3), and L. bulgaricus
in M17 incubated at 45 C (Table 3).
The addition of clindamycin to the MRS agar did not inhibit the
Lactococcus lactis strains in the probiotic cheese. Ammor, Florez,
and Mayo (2007) reported that despite this genus exhibits susceptibility
to different groups of antibiotics, some strains have
shown resistant to clindamycin, as well as bacteria belonging to the
genus Lactobacillus (Table 4).
Comparing the results using the culture medium RCA pH 5.3 and
MRS at pH 5.2 (Table 4), we concluded that the components of RCA
are capable of inhibiting the growth of L. acidophilus and
S. thermophilus. In contrast, the decrease in pH of MRS agar to 5.2
was not sufficient to inhibit these microorganisms. Moreover, the
temperature and the conditions of incubation were the same for
both culture media, evidencing that the MRS agar at pH 5.2 was not
selective for the enumeration of L. bulgaricus from the probiotic
yoghurt under the conditions studied, since other strains that may
be present in yoghurt are able to grow in this culture medium.
Importantly, although literature reports different selective
methodologies for evaluation of microorganisms in probiotic
products, there is a need to test the culture media, once the
selectivity is directly related to the presence of other strains.
0/5000
As shown in Table 4, Lactococcus lactis strains were able to growin MRSB and MRS þ S media in high counts. This can lead to thestatement that the MRSB and MRS þ S media were not selective forL. acidophilus La5 in the presence of L. lactis in Prato cheese. Theaddition of 1.5% bile to the culture medium was not able to inhibitL. lactis. Although the sensitivity of lactococci strains to bile salts isreported in literature, this characteristic is strain dependent(Begley, Gahan, & Hill, 2005), which may explain the variability inresults using this culture medium for different microorganisms. Incontrast, the addition of bile in MRS agar was able to inhibit theyoghurt starter culture, thus being considered selective forenumeration of L. acidophilus from these products (Table 3). Basedon experimental results, we conclude that the high counts in thePrato cheese (>9.0 log CFU/mL) when the culture media MRSB andMRS þ S were used, have probably included Lactococcus lactisstrains, and may have also included other microorganisms such asNSLAB. This conclusion was supported by colony morphology andmicroscopic observations (data not shown). Oberg et al. (2011) alsoobserved the non-selectivity of MRS-S for enumeration ofL. acidophilus from cheese.The replacement of glucose by sorbitol in MRS agar shouldinhibit the development of the lactic acid bacteria, since thesemicroorganisms cannot ferment sorbitol, such as S. thermophilusstrains (Hardie & Whiley, 2006). However, this behavior was notverified in this study, since pure cultures of Lactococcus lactis, L.bulgaricus and S. thermophilus have developed in the culture mediumcontaining sorbitol at 37 C (L. lactis) or 45 C (yoghurt cultures).Possibly the unusual growth of these strains in the presenceof sorbitol could be explained by culture rotation, which is atechnique performed by several industrial manufacturers of culturesin order to control bacteriophages. The inhibition of Lactococcuslactis in MRSS agar incubated at 45 C suggests that theincubation temperature was responsible for the lack of developmentin this medium as Lactococcus lactis does not grow at 45 C(Nomura, Kobayashi, Narita, Kimoto-Nira, & Okamoto, 2006;Teuber & Geis, 2006). The incubation temperature was alsoresponsible for the inhibition of L. acidophilus in M17 agar at 30 Cfrom cheeses (Table 4), since this microorganism has the optimumgrowth temperature between 35 and 40 C (Hammes & Hertel,2006; IDF, 1995). The selectivity of the M17 agar is also related tothe inhibitory effect of sodium glycerophosphate on different lactobacillistrains (Shankar & Davies, 1977). This inhibitory effect wasconfirmed by the lower counts of pure cultures of L. acidophilus inM17 incubated at 37 C (Table 4) or 45 C (Table 3), and L. bulgaricusin M17 incubated at 45 C (Table 3).The addition of clindamycin to the MRS agar did not inhibit theLactococcus lactis strains in the probiotic cheese. Ammor, Florez,and Mayo (2007) reported that despite this genus exhibits susceptibilityto different groups of antibiotics, some strains haveshown resistant to clindamycin, as well as bacteria belonging to thegenus Lactobacillus (Table 4).Comparing the results using the culture medium RCA pH 5.3 andMRS at pH 5.2 (Table 4), we concluded that the components of RCAare capable of inhibiting the growth of L. acidophilus andS. thermophilus. In contrast, the decrease in pH of MRS agar to 5.2was not sufficient to inhibit these microorganisms. Moreover, thetemperature and the conditions of incubation were the same forboth culture media, evidencing that the MRS agar at pH 5.2 was notselective for the enumeration of L. bulgaricus from the probioticyoghurt under the conditions studied, since other strains that maybe present in yoghurt are able to grow in this culture medium.Importantly, although literature reports different selectivemethodologies for evaluation of microorganisms in probioticproducts, there is a need to test the culture media, once theselectivity is directly related to the presence of other strains.
การแปล กรุณารอสักครู่..
ดังแสดงในตารางที่ 4, Lactococcus lactis
สายพันธุ์ที่มีความสามารถที่จะเติบโตในMRSB และ MRS þสื่อ S ในข้อหาสูง นี้สามารถนำไปสู่คำว่าสื่อ MRSB และ MRS þ S ไม่ได้เลือกสำหรับลิตร acidophilus La5 ในการปรากฏตัวของ lactis ลิตรในชีสปรา การเพิ่มของน้ำดีที่ 1.5% ถึงกลางวัฒนธรรมไม่สามารถที่จะยับยั้งลิตร lactis แม้ว่าความไวของสายพันธุ์ lactococci เกลือน้ำดีที่จะมีการรายงานในวรรณคดีลักษณะนี้ขึ้นอยู่กับสายพันธุ์(Begley, Gahan และฮิลล์ 2005) ซึ่งอาจอธิบายความแปรปรวนในผลการใช้สื่อวัฒนธรรมนี้สำหรับจุลินทรีย์ที่แตกต่างกัน ในทางตรงกันข้ามการเพิ่มของน้ำดีในอาหารเลี้ยงเชื้อ MRS ก็สามารถที่จะยับยั้งเชื้อโยเกิร์ตจึงได้รับการพิจารณาคัดเลือกในการแจงนับของ L. acidophilus จากผลิตภัณฑ์เหล่านี้ (ตารางที่ 3) จากผลการทดลองที่เราสรุปได้ว่านับสูงในชีสPrato (> 9.0 log CFU / มิลลิลิตร) เมื่อสื่อวัฒนธรรม MRSB และMRS þ S ถูกนำมาใช้ได้รวมอาจ Lactococcus lactis สายพันธุ์และอาจมียังรวมถึงเชื้อจุลินทรีย์อื่น ๆ เช่น เป็นNSLAB ข้อสรุปนี้ได้รับการสนับสนุนโดยสัณฐานอาณานิคมและการสังเกตด้วยกล้องจุลทรรศน์ (ไม่ได้แสดงข้อมูล) Oberg et al, (2011) นอกจากนี้ยังตั้งข้อสังเกตที่ไม่ได้เลือกของMRS-S สำหรับการนับของแอล acidophilus จากชีส. เปลี่ยนกลูโคสจากซอร์บิทอในอาหารเลี้ยงเชื้อ MRS ควรยับยั้งการพัฒนาของเชื้อแบคทีเรียกรดแลคติกตั้งแต่เหล่านี้จุลินทรีย์ไม่สามารถหมักซอร์บิทอเช่นS. thermophilus สายพันธุ์ (ฮาร์ดีและ Whiley, 2006) อย่างไรก็ตามลักษณะการทำงานนี้ไม่ได้รับการยืนยันในการศึกษาครั้งนี้เนื่องจากเชื้อบริสุทธิ์ของ Lactococcus lactis ลิตร bulgaricus และ S. thermophilus ได้มีการพัฒนาในสื่อวัฒนธรรมที่มีซอร์บิทอที่37 องศาเซลเซียส (L. lactis) หรือ 45? C (วัฒนธรรมโยเกิร์ต) . อาจจะมีการเจริญเติบโตที่ผิดปกติของสายพันธุ์เหล่านี้ในการปรากฏตัวของซอร์บิทอสามารถอธิบายได้ตามวาระวัฒนธรรมซึ่งเป็นเทคนิคที่ดำเนินการโดยผู้ผลิตหลายอุตสาหกรรมของวัฒนธรรมเพื่อควบคุมแบคทีเรีย ยับยั้งการ Lactococcus lactis ใน MRSS วุ้นบ่มที่ 45 องศาเซลเซียสแสดงให้เห็นว่าอุณหภูมิบ่มเป็นผู้รับผิดชอบสำหรับการขาดการพัฒนาในสื่อนี้เป็นLactococcus lactis ไม่เติบโตที่ 45 องศาเซลเซียส(โนมูระโคบายาชินาริตะ Kimoto-Nira และ Okamoto 2006; Teuber และ Geis 2006) อุณหภูมิบ่มยังเป็นผู้รับผิดชอบในการยับยั้งการ acidophilus ลิตรในอาหารเลี้ยงเชื้อ M17 ที่ 30 องศาเซลเซียสจากชีส(ตารางที่ 4) เนื่องจากจุลินทรีย์นี้มีที่เหมาะสมอุณหภูมิการเจริญเติบโตระหว่าง35 และ 40 C (Hammes และ Hertel? 2006 IDF, 1995) การเลือกของวุ้น M17 จะยังเกี่ยวข้องกับผลกระทบของการยับยั้งglycerophosphate โซเดียมแลคโตที่แตกต่างสายพันธุ์(การ์และเดวีส์, 1977) ผลยับยั้งนี้ได้รับการยืนยันจากการนับจำนวนที่ลดลงของเชื้อบริสุทธิ์ของ L. acidophilus ใน M17 บ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 4) หรือ 45 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 3) และ L. bulgaricus ใน M17 บ่มที่ 45 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 3 ). นอกเหนือจากการ clindamycin อาหารเลี้ยงเชื้อ MRS ที่ไม่ได้ยับยั้งการสายพันธุ์Lactococcus lactis ในชีสโปรไบโอติก Ammor ชั้น? orez, และมายองเนส (2007) รายงานว่าแม้จะมีประเภทนี้จัดแสดงความอ่อนแอให้กับกลุ่มที่แตกต่างกันของยาปฏิชีวนะสายพันธุ์บางคนได้แสดงให้เห็นถึงความทนทานต่อclindamycin เช่นเดียวกับแบคทีเรียที่เป็นของแลคโตบาซิลลัสสกุล(ตารางที่ 4). การเปรียบเทียบผลการใช้ อาหารเลี้ยง pH 5.3 อาร์ซีเอและMRS ที่พีเอช 5.2 (ตารางที่ 4) เราสรุปได้ว่าส่วนประกอบของอาร์ซีเอมีความสามารถในการยับยั้งการเจริญเติบโตของL. acidophilus และเอส thermophilus ในทางตรงกันข้ามการลดลงของค่า pH ของอาหารเลี้ยงเชื้อ MRS 5.2 ไม่เพียงพอที่จะยับยั้งจุลินทรีย์เหล่านี้ นอกจากนี้อุณหภูมิและสภาพของการบ่มเป็นเหมือนกันสำหรับสื่อวัฒนธรรมทั้งหลักฐานแสดงว่าอาหารเลี้ยงเชื้อMRS ที่ pH 5.2 ไม่ได้เลือกสำหรับการนับของL. bulgaricus จากโปรไบโอติกโยเกิร์ตภายใต้เงื่อนไขที่ศึกษาตั้งแต่สายพันธุ์อื่นๆ ที่อาจจะอยู่ในโยเกิร์ตมีความสามารถที่จะเติบโตในระดับปานกลางวัฒนธรรมนี้. ที่สำคัญแม้ว่าวรรณกรรมรายงานเลือกที่แตกต่างกันวิธีการสำหรับการประเมินผลของจุลินทรีย์ในโปรไบโอติกผลิตภัณฑ์มีความจำเป็นในการทดสอบสื่อวัฒนธรรมเมื่อเลือกจะเกี่ยวข้องโดยตรงกับการปรากฏตัวของสายพันธุ์อื่นๆ .
สายพันธุ์ที่มีความสามารถที่จะเติบโตในMRSB และ MRS þสื่อ S ในข้อหาสูง นี้สามารถนำไปสู่คำว่าสื่อ MRSB และ MRS þ S ไม่ได้เลือกสำหรับลิตร acidophilus La5 ในการปรากฏตัวของ lactis ลิตรในชีสปรา การเพิ่มของน้ำดีที่ 1.5% ถึงกลางวัฒนธรรมไม่สามารถที่จะยับยั้งลิตร lactis แม้ว่าความไวของสายพันธุ์ lactococci เกลือน้ำดีที่จะมีการรายงานในวรรณคดีลักษณะนี้ขึ้นอยู่กับสายพันธุ์(Begley, Gahan และฮิลล์ 2005) ซึ่งอาจอธิบายความแปรปรวนในผลการใช้สื่อวัฒนธรรมนี้สำหรับจุลินทรีย์ที่แตกต่างกัน ในทางตรงกันข้ามการเพิ่มของน้ำดีในอาหารเลี้ยงเชื้อ MRS ก็สามารถที่จะยับยั้งเชื้อโยเกิร์ตจึงได้รับการพิจารณาคัดเลือกในการแจงนับของ L. acidophilus จากผลิตภัณฑ์เหล่านี้ (ตารางที่ 3) จากผลการทดลองที่เราสรุปได้ว่านับสูงในชีสPrato (> 9.0 log CFU / มิลลิลิตร) เมื่อสื่อวัฒนธรรม MRSB และMRS þ S ถูกนำมาใช้ได้รวมอาจ Lactococcus lactis สายพันธุ์และอาจมียังรวมถึงเชื้อจุลินทรีย์อื่น ๆ เช่น เป็นNSLAB ข้อสรุปนี้ได้รับการสนับสนุนโดยสัณฐานอาณานิคมและการสังเกตด้วยกล้องจุลทรรศน์ (ไม่ได้แสดงข้อมูล) Oberg et al, (2011) นอกจากนี้ยังตั้งข้อสังเกตที่ไม่ได้เลือกของMRS-S สำหรับการนับของแอล acidophilus จากชีส. เปลี่ยนกลูโคสจากซอร์บิทอในอาหารเลี้ยงเชื้อ MRS ควรยับยั้งการพัฒนาของเชื้อแบคทีเรียกรดแลคติกตั้งแต่เหล่านี้จุลินทรีย์ไม่สามารถหมักซอร์บิทอเช่นS. thermophilus สายพันธุ์ (ฮาร์ดีและ Whiley, 2006) อย่างไรก็ตามลักษณะการทำงานนี้ไม่ได้รับการยืนยันในการศึกษาครั้งนี้เนื่องจากเชื้อบริสุทธิ์ของ Lactococcus lactis ลิตร bulgaricus และ S. thermophilus ได้มีการพัฒนาในสื่อวัฒนธรรมที่มีซอร์บิทอที่37 องศาเซลเซียส (L. lactis) หรือ 45? C (วัฒนธรรมโยเกิร์ต) . อาจจะมีการเจริญเติบโตที่ผิดปกติของสายพันธุ์เหล่านี้ในการปรากฏตัวของซอร์บิทอสามารถอธิบายได้ตามวาระวัฒนธรรมซึ่งเป็นเทคนิคที่ดำเนินการโดยผู้ผลิตหลายอุตสาหกรรมของวัฒนธรรมเพื่อควบคุมแบคทีเรีย ยับยั้งการ Lactococcus lactis ใน MRSS วุ้นบ่มที่ 45 องศาเซลเซียสแสดงให้เห็นว่าอุณหภูมิบ่มเป็นผู้รับผิดชอบสำหรับการขาดการพัฒนาในสื่อนี้เป็นLactococcus lactis ไม่เติบโตที่ 45 องศาเซลเซียส(โนมูระโคบายาชินาริตะ Kimoto-Nira และ Okamoto 2006; Teuber และ Geis 2006) อุณหภูมิบ่มยังเป็นผู้รับผิดชอบในการยับยั้งการ acidophilus ลิตรในอาหารเลี้ยงเชื้อ M17 ที่ 30 องศาเซลเซียสจากชีส(ตารางที่ 4) เนื่องจากจุลินทรีย์นี้มีที่เหมาะสมอุณหภูมิการเจริญเติบโตระหว่าง35 และ 40 C (Hammes และ Hertel? 2006 IDF, 1995) การเลือกของวุ้น M17 จะยังเกี่ยวข้องกับผลกระทบของการยับยั้งglycerophosphate โซเดียมแลคโตที่แตกต่างสายพันธุ์(การ์และเดวีส์, 1977) ผลยับยั้งนี้ได้รับการยืนยันจากการนับจำนวนที่ลดลงของเชื้อบริสุทธิ์ของ L. acidophilus ใน M17 บ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 4) หรือ 45 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 3) และ L. bulgaricus ใน M17 บ่มที่ 45 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 3 ). นอกเหนือจากการ clindamycin อาหารเลี้ยงเชื้อ MRS ที่ไม่ได้ยับยั้งการสายพันธุ์Lactococcus lactis ในชีสโปรไบโอติก Ammor ชั้น? orez, และมายองเนส (2007) รายงานว่าแม้จะมีประเภทนี้จัดแสดงความอ่อนแอให้กับกลุ่มที่แตกต่างกันของยาปฏิชีวนะสายพันธุ์บางคนได้แสดงให้เห็นถึงความทนทานต่อclindamycin เช่นเดียวกับแบคทีเรียที่เป็นของแลคโตบาซิลลัสสกุล(ตารางที่ 4). การเปรียบเทียบผลการใช้ อาหารเลี้ยง pH 5.3 อาร์ซีเอและMRS ที่พีเอช 5.2 (ตารางที่ 4) เราสรุปได้ว่าส่วนประกอบของอาร์ซีเอมีความสามารถในการยับยั้งการเจริญเติบโตของL. acidophilus และเอส thermophilus ในทางตรงกันข้ามการลดลงของค่า pH ของอาหารเลี้ยงเชื้อ MRS 5.2 ไม่เพียงพอที่จะยับยั้งจุลินทรีย์เหล่านี้ นอกจากนี้อุณหภูมิและสภาพของการบ่มเป็นเหมือนกันสำหรับสื่อวัฒนธรรมทั้งหลักฐานแสดงว่าอาหารเลี้ยงเชื้อMRS ที่ pH 5.2 ไม่ได้เลือกสำหรับการนับของL. bulgaricus จากโปรไบโอติกโยเกิร์ตภายใต้เงื่อนไขที่ศึกษาตั้งแต่สายพันธุ์อื่นๆ ที่อาจจะอยู่ในโยเกิร์ตมีความสามารถที่จะเติบโตในระดับปานกลางวัฒนธรรมนี้. ที่สำคัญแม้ว่าวรรณกรรมรายงานเลือกที่แตกต่างกันวิธีการสำหรับการประเมินผลของจุลินทรีย์ในโปรไบโอติกผลิตภัณฑ์มีความจำเป็นในการทดสอบสื่อวัฒนธรรมเมื่อเลือกจะเกี่ยวข้องโดยตรงกับการปรากฏตัวของสายพันธุ์อื่นๆ .
การแปล กรุณารอสักครู่..
Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.Now I don't feel very well.
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- - Food Center, beverage, candy stores we
- Abstract: An experiment on culture of cl
- Could be
- nutritionist in group food service
- ตำบลเขาล้าน
- Ich sagte, ich werde nach der verlobung
- วันนี้ต้องกลับไปทำงานแล้ว
- Everything okay, and believe you and wai
- Huh
- I wish everywhere I go, there you go, to
- มิกกี้ เมาส์ (อังกฤษ: Mickey Mouse) เป็น
- ถ้าคุณมาประเทศไทย คนจะมาคนเดียว หรือ มาก
- I wish everywhere I go, there you go, to
- give a general statement about the party
- Information to be tested is between A to
- cooker
- กิจกรรมที่ได้ฝึกปฏิบัติ
- คุณเรียกอาหารจานนั้นว่า
- สวัสดีค่ะ ใช่คุณโมหรือเปล่า
- มิกกี้ เมาส์ (อังกฤษ: Mickey Mouse) เป็น
- พร้อมจะไปทำงาน ,ไปหาฟาร์มอิแกนิก
- Swine
- Und ich sagte, dass ich wurde damit beau
- I miss memory for 4 month ago
