The growth profiles of six differen

The growth profiles of six different Lactobacillus strains in the
presence of lactulose, GOS-La, GOS-Lu are shown in Fig. 1. Glucose
was also included in this study for comparative purposes. All
Lactobacillus strains grew during the first 24 h for all the substrates.
Higher growth rates were observed for LC and LD with glucose and
lactulose than with GOS-La and GOS-Lu substrates, whereas for LP1,
LP2 and LS the initial growth rates were similar for all carbohydrates
tested, and for LB the lowest initial growth was obtained
with glucose. However, after this time, growth rates of all Lactobacillus
strains decreased quickly when they were grown with
glucose and lactulose, whilst all strains kept constant or were
slightly modified with GOS-Lu and GOS-La. This response could be
attributed to different reasons. It is known that carbohydrates with
longer chain lengths are fermented more slowly (Cummings et al.,
2001) which is in agreement with the fermentation kinetics of
Lactobacillus strains exhibited in presence of GOS-La and GOS-Lu
(Fig. 1). Likewise, this could also explain the initial higher growth
observed for LC and LD with glucose and lactulose at 24 h
of incubation. However, no notable differences were detected
between GOS-La and GOS-Lu for all fermentation times and strains.
Similar behaviour has previously been reported in some bifidobacteria
species, using fructooligosaccharides and inulin as the
carbon sources, where the oligomers with high molecular weight
promoted a higher bacterial growth than other substrates with
lower molecular weight (Vernazza et al., 2006).
Conversely the metabolism of large carbohydrate molecules
requires the use of glycosidases and specific transport mechanisms
for the hydrolysis products (Vernazza et al., 2006). In Lactobacillus
genus, the b-galactosidases are specifically located in the cytoplasm
(Fortina et al., 2003) which implies that for the metabolization
of GOS, Lactobacillus strains need a transport system in order to
hydrolyze these oligosaccharides into the cell by b-galactosidases.
This could explain the slower growth of LC and LD strains at 24 h
with GOS-Lu and GOS-La compared with glucose and lactulose;
however, for LP1, LP2 and LS, the similar values for initial growth
provide evidence for a strain-dependence on the assimilation of
carbon source.
Furthermore, it has been previously observed that the monomeric
composition, polymerization degree and type of glycosidic
linkages can affect the growth of probiotic strains (Rastall et al.,
2005). GOS-La obtained from Vivinal-GOS primarily consist of
b-(1-4) linkages (Coulier et al., 2009; Rastall, 2010) and GOS-Lu
consist of b-(1-6), being the most abundant trisaccharide 60-
galactosyl-lactulose (Hernández-Hernández et al., 2011). Cardelle-
Cobas et al. (2011) when studying the effect of different trisaccharides
isolated from GOS-Lu and GOS-La mixtures on different
bacteria strains, including Lactobacillus, reported a preference for
linkages b-(1-6) instead of b-(1-4); however, the results obtained in
our work showed no differences in growth responses of Lactobacillus
strains using GOS-Lu or GOS-La.
3.2. Lactic and acetic acid production
In general, for all strains and carbon sources tested, concentrations
of lactic acid were higher than that of acetic acid (Table 1).
Lactobacillus strains grown in glucose and lactulose generated
higher concentrations of lactic acid than GOS-La and GOS-Lu,
whilst similar levels of acetic acid were found for all assayed
carbohydrates. The low amount of lactic acid produced in GOS
grown culture could be due to the slower and prolonged fermentation
by the bacterial strains. This could also have an influence on
the higher survival rate of Lactobacillus strains grown in GOS
substrates (Fig. 1), as a lower acid production leads to less acidic pH
values. No significant differences were, in general, detected among
the different incubation times either for each carbohydrate or
between GOS-La and GOS-Lu. Lactic and acetic acids are fermentation
products of lactic acid bacteria (Lindgren and Dobrogosz,
1990). These acids decrease the pH and consequently can
prevent the over growth of pathogenic bacteria in the intestine
(Roy et al., 2006). Short chain fatty acids (SCFA) such as acetic and
lactic acids are involved in multiple beneficial effects on the host.
Acetic acid is metabolised by different human tissues representing
a route to obtain energy from non-digestible carbohydrates (Roy
et al., 2006; Roberfroid et al., 2010); however, lactic and acetic
acids are assimilated by different species present in the gut
microbiota, producing butyric acid which can be involved in
multiple positive effects such as the reduction of colon cancer risk
(Roy et al., 2006; Falony and De Vuyst, 2009; Roberfroid et al.,
2010).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

โพรไฟล์การเจริญเติบโตของหกแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์แตกต่างกันในการสถานะการออนไลน์ของ lactulose, GOS-La, GOS Lu จะแสดงในรูปที่ 1 กลูโคสยังถูกรวมอยู่ในการศึกษานี้เปรียบเทียบ ทั้งหมดแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์เติบโตมาในช่วง 24 ชั่วโมงแรกสำหรับพื้นผิวทั้งหมดสูงกว่าสุภัค LC และ LD มีกลูโคส และlactulose กว่า ด้วยพื้นผิวลา GOS และ GOS Lu ในขณะที่สำหรับ LP1LP2 และ LS ราคาเริ่มต้นเจริญเติบโตคล้ายกันสำหรับคาร์โบไฮเดรตทั้งหมดทดสอบ และ สำหรับปอนด์การเจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดที่ได้รับมีกลูโคส อย่างไรก็ตาม หลังจากนี้ อัตราการเติบโตของทั้งแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาได้เติบโตด้วยกลูโคสและ lactulose ในขณะที่ทุกสายพันธุ์เก็บไว้คง หรือถูกแก้ไขเล็กน้อยกับ GOS Lu และ GOS La. ตอบสนองนี้อาจเป็นประกอบกับเหตุผลต่าง ๆ เป็นที่รู้จักกันที่คาร์โบไฮเดรตด้วยโซ่ยาวหมักช้า (ฝรั่ง et al.,2001) ซึ่งอยู่ในข้อตกลงจลนพลศาสตร์ของการหมักของจัดแสดงสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสใน GOS La และ GOS Lu(1 รูป) ทำนองเดียวกัน นี้สามารถอธิบายการเจริญเติบโตเริ่มสูงขึ้นสังเกต LC และ LD ด้วยกลูโคสและ lactulose ใน 24 ชมการกกไข่ อย่างไรก็ตาม ตรวจพบความแตกต่างไม่โดดเด่นระหว่างลา GOS และ Lu GOS ทุกครั้งหมักและสายพันธุ์ก่อนหน้านี้ได้รายงานพฤติกรรมคล้ายกันในบาง bifidobacteriaพันธุ์ ใช้ fructooligosaccharides และอินนูลิเป็นการแหล่งคาร์บอน ที่ oligomers มีน้ำหนักโมเลกุลสูงส่งเสริมการเจริญเติบโตของแบคทีเรียที่สูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆ ที่มีน้ำหนักโมเลกุลต่ำ (Vernazza et al. 2006)ในทางกลับกันการเผาผลาญโมเลกุลของคาร์โบไฮเดรตที่มีขนาดใหญ่ต้องใช้ glycosidases และกลไกขนส่งเฉพาะสำหรับผลิตภัณฑ์ย่อยสลาย (Vernazza et al. 2006) ในแลคโตบาซิลลัสสกุล b-galactosidases ตั้งอยู่โดยเฉพาะในพลาสซึม(Fortina et al. 2003) ซึ่งหมายถึงที่สำหรับ metabolizationของ GOS แลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ต้องมีระบบขนส่งเพื่อhydrolyze oligosaccharides เหล่านี้ลงในเซลล์ โดยบี-galactosidasesนี้สามารถอธิบายการเจริญเติบโตช้าลงของสายพันธุ์ LC และ LD ที่ 24 ชมGOS Lu และ GOS ลาเมื่อเทียบกับกลูโคสและ lactuloseอย่างไรก็ตาม สำหรับ LP1, LP2 และ LS ค่าคล้ายกันสำหรับการเริ่มต้นเจริญเติบโตให้หลักฐานสายพันธุ์พึ่งพาของประชาชนแหล่งคาร์บอนนอกจากนี้ มันได้รับก่อนหน้านี้ปฏิบัติที่ที่ monomericส่วนประกอบ polymerization ระดับ และชนิดของ glycosidicเชื่อมโยงส่งผลต่อการเจริญเติบโตของสายพันธุ์โปรไบโอติก (Rastall et al.,2005) . GOS ลาได้จาก Vivinal-GOS หลักประกอบด้วยb-(1-4) เชื่อมโยง (Coulier et al. 2009 Rastall, 2010) และ GOS Luประกอบด้วย b-(1-6) ถูก trisaccharide สุด 60-lactulose galactosyl (เอร์เอร์ et al. 2011) Cardelle-Cobas et al. (2011) เมื่อศึกษาผลของ trisaccharides แตกต่างกันแยกจาก GOS Lu และ GOS ลาผสมกันสายพันธุ์แบคทีเรีย แลคโตบาซิลลัส รวมทั้งรายงานมีความต้องการเชื่อมโยง b-(1-6) แทน b-(1-4) อย่างไรก็ตาม ผลที่ได้รับในงานของเราแสดงให้เห็นว่าไม่มีความแตกต่างในการตอบสนองการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ใช้ GOS Lu หรือ GOS La.3.2. คติ ผลิตกรดอะซิติกทั่วไป ทุกสายพันธุ์และคาร์บอน แหล่งทดสอบ ความเข้มข้นของกรดได้สูงกว่าของกรดน้ำส้ม (ตาราง 1)แลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ปลูกในกลูโคสและ lactulose สร้างความเข้มข้นสูงของกรดแลคติกกว่า GOS ลาและ GOS-Luในขณะที่พบทั้งหมด assayed มีระดับกรดอะซิติกคล้ายคาร์โบไฮเดรต ยอดเงินต่ำสุดของกรดแลคติกผลิตใน GOSปลูกวัฒนธรรมอาจเกิดจากการหมักที่ช้า และเป็นเวลานานโดยสายพันธุ์แบคทีเรีย นี้ยังอาจมีอิทธิพลต่อในอัตราการอยู่รอดสูงกว่าของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ปลูกใน GOSพื้นผิว (รูปที่ 1), เป็นการผลิตกรดต่ำนำไปสู่ค่า pH ที่เป็นกรดน้อยลงค่า ไม่มีความแตกต่างกัน ทั่วไป ตรวจพบระหว่างเวลากกไข่แตกต่างกันสำหรับคาร์โบไฮเดรตแต่ละ หรือระหว่างลา GOS และ GOS Lu แลคติกและกรดน้ำส้มหมักผลิตภัณฑ์ของแบคทีเรียกรดแลคติก (Lindgren และ Dobrogosz1990) การลด pH กรดเหล่านี้ และดังนั้น สามารถป้องกันมากกว่าการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียก่อโรคในลำไส้(Roy et al. 2006) สั้นห่วงโซ่กรดไขมัน) เช่นอะซิติก และกรดแลคติกมีส่วนร่วมในผลประโยชน์หลายบนโฮสต์กรดอะซิติกเป็น metabolised โดยเนื้อเยื่อมนุษย์อื่นแทนเส้นทางการรับพลังงานจากคาร์โบไฮเดรตย่อย (Royet al. 2006 Roberfroid et al. 2010); อย่างไรก็ตาม อะซิติก และกรดกรดจะหลอมรวมสายพันธุ์ต่าง ๆ ที่อยู่ในลำไส้จุลินทรีย์ กรดแกมซึ่งจะเกี่ยวข้องในการผลิตหลายผลในเชิงบวกเช่นการลดความเสี่ยงมะเร็งลำไส้ใหญ่(Roy et al. 2006 Falony และ Vuyst De, 2009 Roberfroid et al.,2010)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเจริญเติบโตโปรไฟล์ของหกสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่แตกต่างกันในการปรากฏตัวของทูโลส โก ลา โกลู แสดงในรูปที่ 1 กลูโคสก็รวมอยู่ในการศึกษานี้เพื่อเปรียบเทียบ ทั้งหมดสายพันธุ์ Lactobacillus เติบโตในช่วง 24 ชั่วโมง สำหรับพื้นผิวทั้งหมดอัตราการเติบโตที่สูงขึ้นเป็นสังเกตสำหรับ LC และ LD กับกลูโคสแลคทูโลสมากกว่า โก ลา โกลูและพื้นผิวสำหรับ LP1 ) ,และ lp2 คืออัตราการเจริญเติบโตเริ่มต้นที่คล้ายกันสำหรับคาร์โบไฮเดรตทดสอบและปอนด์การเจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดที่ได้รับกับกลูโคส อย่างไรก็ตาม หลังจากเวลานี้ อัตราการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลัสสายพันธุ์ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาเติบโตขึ้นด้วยกลูโคสและแลคทูโลส ในขณะที่สายพันธุ์ทั้งหมดคงที่หรือการแก้ไขเล็กน้อยกับ QoS Lu และไป LA คำตอบนี้อาจเป็นเกิดจากเหตุผลที่แตกต่างกัน มันเป็นที่รู้จักกันว่าคาร์โบไฮเดรตกับความยาวโซ่ยาวมีการหมักช้า ( Cummings et al . ,2001 ) ซึ่งในข้อตกลงกับจลนพลศาสตร์ของการหมักสายพันธุ์ Lactobacillus จัดแสดงในการแสดงตนของ โก ลา โก และ ลู( รูปที่ 1 ) อนึ่ง นี้ยังไม่สามารถอธิบายการเริ่มต้นสูงกว่าสังเกตสำหรับ LC และ LD กับกลูโคสและแลคทูโลสใน 24 ชั่วโมงของการบ่ม อย่างไรก็ตามไม่พบความแตกต่างที่เด่นระหว่างไป LA ไปลูสำหรับครั้งหมักและสายพันธุ์พฤติกรรมที่คล้ายกันก่อนหน้านี้ได้มีรายงานในบางปิฟิโดแบคทีเรียชนิดและการใช้ fructooligosaccharides อินนูลินเป็นแหล่งคาร์บอนที่หน่วยที่มีน้ำหนักโมเลกุลสูงส่งเสริมการเจริญเติบโตที่สูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆด้วยแบคทีเรียน้ำหนักโมเลกุลต่ำ ( เวอนาซซา et al . , 2006 )ในทางกลับกันการเผาผลาญอาหารคาร์โบไฮเดรตโมเลกุลใหญ่ใช้ glycosidases และกลไกการขนส่งที่เฉพาะเจาะจงผลิตภัณฑ์เอนไซม์ ( เวอนาซซา et al . , 2006 ) ในแลกโตบาซิลลัสสกุล , b-galactosidases โดยเฉพาะจะอยู่ในไซโตปลาสซึม( fortina et al . , 2003 ) ซึ่งหมายความว่าสำหรับ metabolizationของรัฐ สายพันธุ์ Lactobacillus ต้องการระบบการขนส่งเพื่อไฮโดรไลซ์ โอลิโกแซคคาไรด์เหล่านี้เข้าไปในเซลล์โดย b-galactosidases .สามารถอธิบายการเจริญเติบโตช้าลงของ LC และ LD สายพันธุ์ใน 24 ชั่วโมงกับ โก โก ลา ลู และ เมื่อ เทียบ กับ กลูโคส และแลคทูโลส ;อย่างไรก็ตาม สำหรับ lp2 LP1 และ , LS , ค่าที่คล้ายกันเพื่อเริ่มต้นการเจริญเติบโตหลักฐานสำหรับการพึ่งพาในการผสมกลมกลืนของสายพันธุ์แหล่งคาร์บอนนอกจากนี้ยังพบว่าวิธีก่อนหน้านี้องค์ประกอบกระบวนการและชนิดของไกลโคซิดิก .การเชื่อมโยงจะมีผลต่อการเจริญเติบโตของเชื้อโปรไบโอติก ( rastall et al . ,2005 ) โก ลา ที่ได้จาก vivinal QoS เป็นหลักประกอบด้วยB - ( 1-4 ) ความเชื่อมโยง ( coulier et al . , 2009 ; rastall , 2010 ) และ โกลูประกอบด้วย B - ( 1-6 ) เป็นปริมาณมากที่สุด 60 - แซกคาไรด์galactosyl แลคทูโลส ( เ ร์น . kgm ndez เอร์นันเดซ . kgm ndez et al . , 2011 ) cardelle -cobas et al . ( 2011 ) เมื่อศึกษาผลของไตรแซ็กคาไรด์ต่าง ๆที่แยกได้จาก โก โก ลา ส่วนผสมที่แตกต่างกันและลู่แบคทีเรียแลคโตบาซิลัส สายพันธุ์ รวมถึงการตั้งค่าสำหรับการเชื่อมโยง ( 1-6 ) B - B - ( 1-4 ) แทน อย่างไรก็ตาม ผลลัพธ์ที่ได้ในงานของเรา ไม่พบความแตกต่างในการตอบสนองการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลัสสายพันธุ์ที่ใช้ QoS ลู่หรือไป LA3.2 . การผลิตกรดแลคติก และกรดโดยทั่วไป สำหรับสายพันธุ์และทดสอบความเข้มข้นของแหล่งคาร์บอน ,กรดแลคติกสูงกว่าของกรด ( ตารางที่ 1 )สายพันธุ์ Lactobacillus ปลูกสร้างกลูโคสและแลคทูโลสความเข้มข้นของกรดแลคติกสูงกว่ากว่าไป LA ไปลู่ในขณะที่ระดับของกรดที่คล้ายกันพบทั้งหมดซีรั่มคาร์โบไฮเดรต ปริมาณต่ำของกรดแลคติกที่ผลิตในโกวัฒนธรรมการเติบโตอาจจะเนื่องจากการช้าลงและนาน การหมักโดยสายพันธุ์แบคทีเรีย นอกจากนี้ยังอาจส่งผลกระทบต่อสูงกว่าอัตราการรอดตายของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ปลูกในโกพื้นผิว ( รูปที่ 1 ) เป็นกรดลดลง นำไปสู่การผลิตกรดน้อย อค่า ไม่แตกต่างกันในทั่วไปที่ตรวจพบระหว่างที่แตกต่างกันสำหรับแต่ละคาร์โบไฮเดรตหรือบ่มครั้งระหว่าง โก ลา โก และ ลู แลคติกและกรดน้ำส้ม จะหมักผลิตภัณฑ์ของแบคทีเรียกรดแลคติก และ dobrogosz ( ลินด์เกรน ,1990 ) กรดเหล่านี้ลด pH และจึงสามารถป้องกันการปนเปื้อนของแบคทีเรียในลำไส้( รอย et al . , 2006 ) กรดไขมันโซ่สั้น ( scfa ) เช่น กรดอะซิติกและกรด lactic จะเกี่ยวข้องกับผลประโยชน์หลายเจ้าภาพกรดอะซิติกถูก metabolised โดยเนื้อเยื่อของมนุษย์ที่แตกต่างกัน เป็นตัวแทนของเส้นทางที่จะได้รับพลังงานจากคาร์โบไฮเดรตที่ไม่ย่อย ( รอยet al . , 2006 ; roberfroid et al . , 2010 ) และ กรดแลคติก ; อย่างไรก็ตามกรดมีขนบธรรมเนียมประเพณี โดยสายพันธุ์ที่แตกต่างกันมีอยู่ในอุทรไมโครไบโ ้า การผลิตกรด butyric ซึ่งสามารถ มีส่วนร่วมในผลในเชิงบวกหลาย เช่น การลดความเสี่ยงมะเร็งลำไส้ใหญ่( รอย et al . , 2006 ; falony และ de vuyst , 2009 ; roberfroid et al . ,2010 )