In Experiment 1, shrimp were divide

In Experiment 1, shrimp were divided into three groups, and each group with two subgroups. There were 20 shrimp in triplicate in each subgroup. The three groups were treated by feeding rVP28-bs-, B. subtilis- and p85 buffer-coated food pellets, respectively, for 20 days. At the end of oral delivery, part of shrimp were anaesthetised by placing on ice and pierced to collect haemolymph using a wide-bore (19G) needle. The haemolymph was collected in a Petri-dish containing 5 ml ice-cold marine anticoagulant (0.45 M Nacl, 0.1 M glucose, 30 mM trisodium citrate, 26 mM citric acid, 10 mM EDTA; pH 4.6) over ice for the subsequent immune-related gene expression and phagocytosis assays. On the 7th day after 20-Day feeding, the remaining shrimp were challenged with WSSV or pBS buffer. Before the beginning of the experiments, in vivo titration of WSSV was conducted as previously described. In order to mimic the natural route of infection and the initial situation in a pond, shrimp were challenged via immersion. Dead shrimp were tested for the presence of WSSV bu PCR. Mortality was recorded for 25 days post-challenge.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในการทดลอง 1 กุ้งถูกแบ่งออกเป็นสามกลุ่ม และแต่ละกลุ่ม มีกลุ่มย่อยที่สอง มีกุ้ง 20 triplicate ในแต่ละกลุ่มย่อย กลุ่มสามได้รับการรักษา โดยให้อาหาร rVP28 - bs-, เกิด subtilis และ p85 บัฟเฟอร์เคลือบอาหารอัดเม็ด ตามลำดับ 20 วัน ที่ปลายปากจัด ส่วนของกุ้งถูก anaesthetised โดยวางบนน้ำแข็ง และ pierced เก็บ haemolymph ใช้เข็มทั้งกระบอกสูบ (19 กรัม) Haemolymph ถูกรวบรวมในแบบจานเพาะเชื้อที่มี 5 ml ฉ่ำทะเล anticoagulant (0.45 M Nacl กลูโคส 0.1 M, 30 มม. trisodium ซิเตรต กรดซิตริก 26 mM, 10 mM EDTA; pH 4.6) ผ่านน้ำแข็งในยีนที่เกี่ยวข้องกับภูมิคุ้มกันต่อนิพจน์และ phagocytosis assays ในวัน 7 หลังจาก 20 วันให้อาหาร กุ้งที่เหลือถูกท้าทาย ด้วยบัฟเฟอร์การตรวจหรือ pBS ก่อนเริ่มต้นการทดลอง การไทเทรตในสัตว์ทดลองของการตรวจได้ดำเนินเป็นก่อนหน้านี้ อธิบาย การเลียนแบบกระบวนการธรรมชาติของการติดเชื้อและสถานการณ์เริ่มต้นในบ่อ กุ้งถูกท้าทายทางแช่ กุ้งตายถูกทดสอบสำหรับของบุการตรวจ PCR การตายถูกบันทึกสำหรับความท้าทายหลังวันที่ 25

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในการทดลองที่ 1 กุ้งถูกแบ่งออกเป็นสามกลุ่มและแต่ละกลุ่มที่มีสองกลุ่มย่อย มีกุ้งอยู่ใน 20 เพิ่มขึ้นสามเท่าในแต่ละกลุ่มย่อย ทั้งสามกลุ่มได้รับการรักษาโดยการให้อาหาร rVP28-bs- บี subtilis- และ P85 บัฟเฟอร์เคลือบเม็ดอาหารตามลำดับสำหรับ 20 วัน ในตอนท้ายของการจัดส่งในช่องปากเป็นส่วนหนึ่งของกุ้งดมยาสลบโดยการวางบนน้ำแข็งและเจาะเลือดในการเก็บรวบรวมใช้กว้างเจาะ (19G) เข็ม เลือดถูกเก็บรวบรวมไว้ในจานเพาะเชื้อที่มีขนาด 5 ml เย็นสารกันเลือดแข็งทางทะเล (0.45 M Nacl 0.1 M กลูโคส 30 มิลลิซิเตรตไตรโซเดียม 26 มิลลิกรดซิตริก, EDTA 10 มิลลิ; pH 4.6) น้ำแข็งสำหรับ immune- ที่ตามมา การแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องและการตรวจเซลล์ทำลาย ในวันที่ 7 หลังจากที่ให้อาหาร 20 วันกุ้งที่เหลือถูกท้าทายด้วยตัวแดงดวงขาวหรือบัฟเฟอร์พีบีเอส ก่อนที่จะเริ่มการทดลองในไตเตรทร่างกายของตัวแดงดวงขาวได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ เพื่อที่จะเลียนแบบเส้นทางตามธรรมชาติของการติดเชื้อและสถานการณ์ในเบื้องต้นบ่อกุ้งถูกท้าทายผ่านการแช่ กุ้งตายได้มีการทดสอบการปรากฏตัวของตัวแดงดวงขาว bu วิธี PCR ตายถูกบันทึกไว้เป็นเวลา 25 วันหลังการท้าทาย

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในการทดลองที่ 1 กุ้งแบ่งออกเป็น 3 กลุ่ม และแต่ละกลุ่มมี 2 กลุ่มย่อย มี 20 กุ้งทั้งสามใบในแต่ละกลุ่มย่อย ทั้ง 3 กลุ่ม ได้รับการรักษาโดยการให้ rvp28 BS - , B . subtilis และ p85 บัฟเฟอร์เคลือบอาหารเม็ด ( สำหรับ 20 วัน ในตอนท้ายของการออกเสียงส่วนกุ้งก็ anaesthetised โดยวางในน้ำแข็งและการเจาะเก็บเลือดโดยใช้เจาะกว้าง ( 19g ) เข็ม น้ำเลือดถูกเก็บรวบรวมในจานเพาะเชื้อที่มี 5 ml เย็นทะเลเลือด ( 0.45 M NaCl 0.1 M = 30 มม. ไตรโซเดียมซิเตรต 26 มม. , กรดซิตริก , 10 mM EDTA ; pH 4.6 ) ใส่น้ำแข็งสำหรับการแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องกับระบบภูมิคุ้มกันและตามมา phagocytosis ) .ในวันที่ 7 หลังจาก 20 วัน ให้อาหารกุ้งที่เหลือถูกท้าทายด้วยีหรือ PBS buffer ก่อนที่จะเริ่มต้นของการทดลองในสัตว์ทดลองที่มีีได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ เพื่อที่จะเปลี่ยนเส้นทางธรรมชาติของการติดเชื้อ และสถานการณ์ที่เริ่มต้นในบ่อกุ้ง ถูกท้าทายทางจม . กุ้งตาย ทดสอบสถานะของีบู PCRตายถูกบันทึกไว้สำหรับ 25 วันประกาศท้าทาย