The seeds of wild type Arabidopsis

The seeds of wild type Arabidopsis thaliana (Columbia) wereobtained from plants grown in-house and sterilized as describedin the Supplementary information (Protocol S-1). The stratification of seeds was performed by subjecting the dry seeds to lowtemperature (4 ◦C) for two days. Germination and plant growthwere accomplished under sterile conditions in culture boxes(Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, Germany), equipped with96-well polypropylene trays (SARSTEDT AG & Co, Nürnbrecht,Germany) and filled with 200 mL of half-strength Murashige andSkoog medium supplemented with 0.5% (w/v) sucrose, pH 5.7 (themedium level reached the lower surface of the trays). 200 Lpolypropylene tubes (PCR grade, without caps, Biozym ScientificGmbH, Hessisch Oldendorf, Germany) were filled with 0.8% (w/v)agar in half-strength Murashige and Skoog medium (Fig. S-1A).When agar polymerization was completed, the tube tips were cutand each placed in one well of the 96-well trays (Fig. S-1B,C).The seeds were planted under sterile conditions in agar-filledtubes (1 seed per tube) and the culture boxes were closed andisolated with Parafilm®. The plants were grown for two weeksin a phytotron MLR-351H (SANYO Electric Co., Ltd., Moriguchi,Japan) at 23 ◦C (day) and 18 ◦C (night) under short-day conditionswith an 8 h light (112.5 ± 2.5 mol photons m−2 s−1 and additionally 27.5 ± 2.5 mol photons m−2 s−1 for 1 h before and afterthe light phase)/16 h dark cycle and 60% humidity before transfer to 50-mL brown glass Duran bottles filled with a half-strengthMurashige and Skoog medium (pH 5.7). The tubes were insertedin the cap holes before screwing the caps tightly. No additionalaeration was provided. After growth for four weeks under thesame conditions, the hypoxically pre-adapted plants in polypropylene tubes were transferred to agar (0.8%, 200 mL) supplementedwith the same medium in 6 mmol/L MES buffer (pH 5.7) and filledin polypropylene pots (Combiness Europe Nazareth, Belgium).Prior to the plant transfer, agar was overlaid for three days with300 mL of the half-strength Murashige and Skoog medium prepared in 6 mmol/L MES buffer (pH 5.7, Verslues et al., 2006) withaddition of 124.43–700.00 g/L PEG8000 to provide drought stress(−0.2 MPa ≤ w ≤ 1.7 MPa) (Money, 1989). The plants were transferred on agar, in approximately 1-cm-deep wells made by scalpel.Thus, the roots were placed in the body of the agar layer. The

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เมล็ดของป่าประเภท Arabidopsis thaliana (โคลัมเบีย) ถูก
ที่ได้จากพืชที่ปลูกในบ้านและฆ่าเชื้อตามที่อธิบายไว้
ในข้อมูลเสริม (พิธีสาร S-1) ชนชั้นของเมล็ดได้ดำเนินการโดยหนอนบ่อนไส้เมล็ดแห้งที่ต่ำ
อุณหภูมิ (4 ◦C) เป็นเวลาสองวัน งอกและการเจริญเติบโตของพืช
ได้รับการประสบความสำเร็จภายใต้สภาวะปลอดเชื้อในกล่องวัฒนธรรม
(Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, เยอรมนี) พร้อมกับ
ถาดโพรพิลีน 96 หลุม (SARSTEDT AG & Co, Nürnbrecht,
เยอรมนี) และเต็มไปด้วย 200 มลครึ่งแข็งแรง และอาหารสูตร Murashige
กุคเติม 0.5% (w / v) ซูโครสค่า pH 5.7 (คน
ระดับปานกลางถึงพื้นผิวด้านล่างของถาด) 200 หลอด Lpolypropylene (PCR เกรดโดยไม่ต้องหมวก, Biozym วิทยาศาสตร์
GmbH, Hessisch ดอร์ฟ, เยอรมนี) เต็มไปด้วย 0.8% (w / v)
วุ้นในช่วงครึ่งแข็งแรง Murashige และ Skoog กลาง (รูป. S-1A)
เมื่อพอลิเมอวุ้นเสร็จสมบูรณ์และเคล็ดลับหลอดถูกตัด
และแต่ละคนอยู่ในหนึ่งเดียวของถาด 96 หลุม (รูป. S-1B, C)
เมล็ดที่ปลูกภายใต้เงื่อนไขที่ผ่านการฆ่าเชื้อในอาหารเลี้ยงเชื้อที่เต็มไปด้วย
หลอด (1 เมล็ดต่อหลอด) และกล่องวัฒนธรรมถูกปิดและ
แยกกับParafilm® พืชที่ปลูกเป็นเวลาสองสัปดาห์
ใน phytotron MLR-351H (ซันโยไฟฟ้า จำกัด Moriguchi,
ญี่ปุ่น) ณ วันที่ 23 ◦C (วัน) และ 18 ◦C (คืน) ภายใต้เงื่อนไขที่วันสั้น
กับแสง 8 ชั่วโมง (112.5 ± 2.5 โฟตอน mol m-2 s-1 และนอกจากนี้ 27.5 ± 2.5 โฟตอน mol m-2 s-1 เป็นเวลา 1 ชั่วโมงก่อนและหลัง
ขั้นตอนแสง) / 16 ชั่วโมงวงจรมืดและความชื้น 60% ก่อนที่จะ การถ่ายโอนไป 50 มลแก้วสีน้ำตาลขวด Duran เต็มไปด้วยครึ่งแข็งแรง
Murashige and Skoog medium (pH 5.7) หลอดเสียบ
ในรูฝาครอบก่อนที่จะคาดคั้นหมวกแน่น ไม่มีเพิ่มเติม
เติมอากาศให้ หลังจากที่การเจริญเติบโตสำหรับสี่สัปดาห์ภายใต้
เงื่อนไขเดียวกันพืช hypoxically ล่วงหน้าปรับตัวในท่อโพรพิลีนถูกย้ายไปวุ้น (0.8%, 200 มิลลิลิตร) เสริม
ด้วยสื่อเดียวกันใน 6 มิลลิโมล / ลิตร MES buffer (pH 5.7) และเต็มไป
ในโพรพิลีน กระถาง (Combiness ยุโรปชาวนาซาเร็ ธ เบลเยียม)
ก่อนที่จะมีการถ่ายโอนโรงงานวุ้นเป็นที่วางซ้อนสามวันกับ
300 มลครึ่งแข็งแรง Murashige และ Skoog กลางเตรียมใน 6 มิลลิโมล / ลิตร MES buffer (pH 5.7 Verslues et al., 2006) ที่มี
การเพิ่มของ 124.43-700.00 กรัม / L PEG8000 เพื่อให้ภัยแล้งความเครียด
(-0.2 MPa ≤ W ≤ 1.7 MPa) (Money, 1989) พืชที่มีการถ่ายโอนในอาหารเลี้ยงเชื้อในบ่อประมาณ 1 ซม. ลึกทำโดยมีดผ่าตัด
ดังนั้นรากถูกวางไว้ในร่างกายของชั้นวุ้น

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

เมล็ดพันธุ์ของป่าประเภทที่มีความเป็นอยู่
ที่ได้จากพืชที่ปลูกในบ้านและการฆ่าเชื้อตามที่ได้อธิบายไว้
ในข้อมูลเสริม (โพรโทคอล S-1) การแบ่งเมล็ดพันธุ์ถูกดำเนินการโดยการทำให้เมล็ดแห้งไปต่ำ
(4 ◦ C) เป็นเวลาสองวัน การงอกและการเจริญเติบโตของพืช
ประสบผลสำเร็จภายใต้สภาวะการฆ่าเชื้อในกล่องวัฒนธรรม
(Greiner ไบโอ-วัน GmbH, ฟราเฮาเซิน, เยอรมนี) พร้อมกับ
๙๖-ถาดโพรพิลีนแบบดี (SARSTEDT AG & Co, Nürnbrecht,
เยอรมนี) และเต็มไปด้วย๒๐๐ mL ของ Murashige ความแข็งแรงครึ่งหนึ่งและ
Skoog สื่อเสริมด้วย๐.๕% (w/v) ซูโครส, pH ๕.๗ (the
ระดับกลางถึงพื้นผิวด้านล่างของถาด) ๒๐๐ท่อ lpolypropylene รพิลีน (เกรด PCR, ไม่มีหมวก, Biozym วิทยาศาสตร์
เยอรมนี) เต็มไปด้วย๐.๘% (w/v)
ในความแข็งแรงครึ่งหนึ่งและ Skoog ขนาดกลาง (รูป. S-1A).
เมื่อนาการ์พอลิเมอเสร็จสิ้น, เคล็ดลับหลอดถูกตัด
และแต่ละที่วางอยู่ในหนึ่งดีของถาด๙๖ (มะเดื่อ S-1B, C)
เมล็ดถูกปลูกภายใต้สภาวะฆ่าเชื้อในนาการ์ที่เต็มไปด้วย
หลอด (1 เมล็ดต่อหลอด) และกล่องวัฒนธรรมที่ถูกปิดและ
® พืชปลูกเป็นเวลาสองสัปดาห์
ใน 351H (บริษัท SANYO ไฟฟ้าจำกัด, จำกัด, โมริกุจิ,
ญี่ปุ่น) ที่23◦ C (วัน) และ18◦ C (คืน) ภายใต้เงื่อนไขระยะสั้น
ด้วยแสง 8 h (๑๑๒.๕±๒.๕ mol โฟตอน m − 2 s −1และนอกจากนี้๒๗.๕±๒.๕ mol โฟตอน m − 2 s −1สำหรับ1ชั่วโมงก่อนและหลัง
ระยะแสง)/16 h รอบมืดและ๖๐% ความชื้นก่อนที่จะถ่ายโอนไปยัง๕๐-mL แก้วสีน้ำตาล Duran ขวดที่เต็มไปด้วยความแข็งแรงครึ่ง
มูชิเงะและ Skoog ขนาดกลาง (pH ๕.๗). หลอดถูกแทรก
ในหลุมหมวกก่อนที่จะขันฝาครอบให้แน่น ไม่มีเพิ่มเติม
หากท่าน หลังจากเติบโตเป็นเวลาสี่สัปดาห์ภายใต้
เงื่อนไขเดียวกัน, พืชที่ดัดแปลงก่อนในท่อโพรพิลีนมีการโอนย้ายไปยัง agar (๐.๘%, ๒๐๐ mL) เสริม
มีขนาดกลางเดียวกันในบัฟเฟอร์ของ 6 mmol/L MES (pH ๕.๗) และเต็มไปด้วย
ในหม้อโพรพิลีน (ยุโรป, เบลเยียม)
ก่อนการถ่ายโอนโรงงาน, นาการ์ถูกทับซ้อนสามวันกับ
๓๐๐ mL ของความแข็งแรงครึ่งหนึ่งของ Murashige และ Skoog ขนาดกลางที่เตรียมไว้ใน 6 mmol/L ของบัฟเฟอร์ (pH ๕.๗, Verslues et al., ๒๐๐๖) กับ
นอกเหนือจาก 124.43-700.00 g/L PEG8000 เพื่อให้ความเครียดในภัยแล้ง
(−๐.๒ MPa ≤ w ≤๑.๗ MPa) (เงิน๑๙๘๙) พืชถูกถ่ายทอดในนาการ์, ประมาณ1ซม. ลึกที่ทำโดยการเจาะ.
ดังนั้นรากที่ถูกวางไว้ในร่างกายของชั้นนาการ์ การ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เมล็ดพันธุ์ Arabidopsis ป่า
ได้รับจากพืชที่ปลูกในบ้านและฆ่าเชื้อตามกฎระเบียบ
ในข้อมูลเพิ่มเติม ชั้นของเมล็ดพันธุ์ที่ทำโดยการวางเมล็ดแห้งที่อุณหภูมิต่ำ
อุณหภูมิเป็นเวลาสองวัน การงอกและการเจริญเติบโตของพืช
เสร็จสมบูรณ์ในถังเพาะเลี้ยงภายใต้สภาวะปลอดเชื้อ
ฟรีดแมนจอห์นสันกรีนเนอร์หนึ่ง GmbH
แผ่นพลาสติกโพลีโพรพิลีนที่มีรูพรุน
มิลลิลิตรครึ่งความแข็งแรงและ
การเพิ่ม 0.5 %s ของน้ำตาลซูโครสในอาหารเลี้ยงเชื้อสกูก 5.7 พีเอช
ระดับกลางถึงพื้นผิวด้านล่างของถาด ท่อโพลีโพรพิลีนชนิดไม่มีฝาปิด
เยอรมัน hesich olendorf GmbH กรอกข้อมูลใน 0.8 %s
กึ่งแข็งแรงวุ้นใน musahige และสูตรอาหาร
เมื่อวุ้นโพลิเมอร์เสร็จตัดปลายท่อ
แต่ละตัวจะถูกวางไว้ในหนึ่งหลุมในแผ่น 96
เมล็ดพันธุ์ที่ปลูกในวุ้นปลอดเชื้อ
หลอดทดลองและถังเพาะเลี้ยงปิด
แยกจากพาราฟิลิม® พืชเหล่านี้เติบโตขึ้นเป็นเวลาสองสัปดาห์
บริษัทซันโยมอเตอร์จำกัดโมริกุชิ
ในช่วงกลางวันและกลางคืนภายใต้แสงแดดสั้นๆ
ชั่วโมงก่อนและหลังการฉายรังสี 112.5 ± 2.5 มัวร์โฟตอน m-2-s-1 และอื่นๆ
และความชื้นแล้วโอนไปยัง 50ml สีน้ำตาลแก้วดูแรนขวดบรรจุครึ่งหนึ่งของความแข็งแรง
และสื่อสกูก ท่อใน
ในฝาเจาะก่อนกระชับฝา ไม่มีอะไรเพิ่มเติม
ให้ระบายอากาศ หลังจากการเจริญเติบโตรอบ
ภายใต้เงื่อนไขเดียวกันกับท่อโพลีโพรพิลีนถ่ายโอนออกซิเจนก่อนปรับพืชเพื่อเพิ่มวุ้น
เพิ่มสื่อวัฒนธรรมเดียวกันและกรอกข้อมูลในบัฟเฟอร์ 6-mm-l-mes พีเอช 5.7
ในถังโพลีโพรพิลีน
สามวันก่อนการถ่ายโอนวุ้น
การเตรียมการของ 300 ML กึ่งแข็งแรงกึ่ง murashige และ Skog ขนาดกลางใน ph5.7 versles และบัฟเฟอร์
เพิ่ม 124.43-700.00 g-l peg8000 เพื่อให้ภัยแล้งความเครียด
มันเป็นเรื่องยากที่จะได้รับปริมาณน้ำที่เพียงพอ พืชที่ถูกย้ายไปยังวุ้นและใช้มีดผ่าตัดประมาณหนึ่งเซนติเมตรลึกดี
ดังนั้นรากอยู่ในร่างกายของวุ้นชั้น นี่