cm) is the molar extinction coeffic

cm) is the molar extinction coefficient for lycopene (Rawson et al.
2011). The Lycopene was expressed as mg/mL of samples. All measurements
were taken in triplicate.
2.6. Determination of lutein
Carotenoid was extracted by using a method of Kim and
Gerber (1988) with some modification. Twenty five milliliter
juice was taken in a separation funnel for extraction using an
equal volume of acetone for 3 times and filtered by Whatman
paper No. 1, and the filter cake was re-extracted with methanol.
Acetone-methanol extract was mixed vigorously with equal
volume of petroleum ether. Upper petroleum ether layer was
dehydrated by adding anhydrous sodium sulfate in it and after
filtration it was concentrated by using a rotary evaporator
(Laborota 4000-efficient, Heidolph Instruments, Germany) at
30
C. Acetonitrileemethanoleacetone solution (40:40:20, v/v)
was added in the concentrate and stored it in a dark at 18
C
for further analysis. Lutein was detected by a modified method
of Kim and Gerber (1988). An Agilent 1100 series HPLC (Agilent
Technologies, USA) consisted of a model G1379A degasser, a
model G1311A pump, a model G1316A column oven and model
G1315B diode array detection (DAD) system was used. Agilent
Zorbax Eclipse XDB-C18 Column (4.6 150 mm, 5 mm particle
size, USA) was used. The mobile phase consisted of acetonitrilee
methanoleacetone (40:40:20, v/v), at a flow rate of 0.8 mL/min,
and 20 mL injection volumes were used. Sample was filtered
using a syringe filter of 0.45 mm diameter before injection into
column and the detection wavelength was 450 nm. Content of
lutein was calculated from a linear portion of a calibration curve
drawn up using commercial lutein as a standard compound.
2.7. Determination of chlorogenic acid content
Chlorogenic acid content was detected by the method of
Kahle, Kraus, and Richling (2005) with some modifications. An
Agilent 1100 series HPLC system was used. The mobile phase
consisted of aqueous formic acid (0.1:99.9, v/v) (A) and methanol
(B). The gradient applied was (10:90e90:10, v/v) B in 40 min at a
flow rate of 1 mL/min. Column of Agilent Zorbax Eclipse XDBC18
was used and the injection volume of 20 mL was used.
Sample was filtered by using a syringe filter of 0.45 mm diameter
before injection into column. The peak was identified by comparison
of retention time and UV spectra (320 nm) with that of
standard. A suitable calibration curve was prepared using concentrations
(10e80 mg/mL) of standard solution and the results
were expressed as mg of chlorogenic acid equivalent per mL of
sample.
2.8. Determination of contents of sugars (sucrose, glucose and
fructose)
Sugar contents were detected by a method stated by Hurst,
Martin, and Zoumas (1979). An Agilent 1100 series HPLC (Agilent
Technologies, USA) consisted of a model G1379A degasser, a model
G1311A pump, a model G1316A column oven and model G1315B
Refractive Index Detector (RID) system was used. The mobile phase
consisted of acetonitrile (75:25, v/v) and the flow rate of 1 mL/min
was adjusted. Cosmosil packed column of Sugar-D (4.6 250 mm)
was used and 20 mL sample was injected. The peaks were identified
by comparison of retention times with those of authentic reference
substances. Sucrose, glucose and fructose were used as standards
and results were expressed as g of sucrose, glucose and fructose
equivalent per liter of sample.
2.9. Analysis of mineral elements of carrot juice
Cleaning of sample containers, microwave vessel, glassware for
standard and ICP samples for the determination of mineral elements
was done as recommended by American Public Health
Association (1998) with some modifications. In brief, all the
required glassware was dipped in nitric acid solution (10:90, v/v)
for up to 4 h, washed several times with distilled water and then
oven dried prior to use. One milliliter juice sample was put into TFM
vessel and digested with 7 mL of nitric acid solution (65:35, v/v)
and 1 mL of hydrogen peroxide solution (30:70, v/v) on the microwave
work station. Temperature of microwave was adjusted as
200
C for 10 min and again 200
C for another 10 min at 1000 W,
followed by immediate ventilation at room temperature for 20 min.
Then acid digested samples were shifted to 50 mL volumetric flask
and diluted with pure water up to the mark. The samples were
analyzed by an inductively coupled plasma-optical emission spectrometer
(OPTIMATM 2100 DV, Perkin Elmer Precisely, USA). All the
measurements were conducted in triplicate. Standards for each
mineral element were prepared within the concentration range
present in the sample. All the conditions for the detection of mineral
elements are mentioned in Table 1.
2.10. Microbial analysis
Microbial analyses of control and treated juice samples were
performed by using the standard method mentioned in the FDA’s
Bacteriological Analytical Manual (FDA, 2001). Total plate count
was determined by pour plate method. Sterilized distilled water
was used to make serial dilutions which were then poured into
sterile petri plates after decimal dilution (up to 105
) of sample.
Molten agar (15 mL) was added to each petri dish and the mixing of
samples were done five times in directions vertically, clockwise and
horizontally, anti-clockwise. The petri dishes were then allowed to
set at 25  1
C for 30 min. The dishes were then shifted to an
incubator (GSP-9080 MBE, Shanghai Boxun Industry & Commerce
Co., Ltd, China) for 2 days at 32
C by turning the dishes upside
down. Colonies in juice samples were counted (as CFU/mL juice) by
multiplying with reciprocal. The results were expressed as log
colony-forming units (CFU/mL) of sample.
Pour plate method was used to determine the total yeast and
mold counts. Known amount (39 g) of potato dextrose agar (PDA)
powder was dissolved in 1000 mL of distilled water to prepare
media. To avoid the cross contamination, tartaric acid solution
(10:90, w/v) was added in the PDA. All the petri dishes containing
PDA were placed in an incubator at 32  1
C. Then after two days

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เซนติเมตร) คือ ค่าสัมประสิทธิ์สูญพันธุ์สบสำหรับ lycopene (สอนศาสนา et al2011) . Lycopene ถูกแสดงเป็นมิลลิกรัม/มิลลิลิตรของตัวอย่าง ประเมินทั้งหมดได้รับ triplicate2.6 การกำหนดของลูทีนCarotenoid ถูกสกัดโดยวิธีของคิม และGerber (1988) มีการปรับเปลี่ยนบาง Milliliter ยี่สิบห้าถ่ายน้ำกรวยแยกในการแยกใช้เป็นเท่ากับปริมาณของอะซีโตน 3 ครั้ง และกรอง ด้วย Whatmanเอกสารหมายเลข 1 และเค้กกรองถูกแยกอีกครั้งกับเมทานอลสารสกัดเมทานอลอะซิโตนถูกผสมโยคะกับเท่ากับปริมาณของปิโตรเลียมอีเทอร์ มีชั้นบนปิโตรเลียมอีเทอร์อบแห้ง โดยการเพิ่มไดโซเดียมซัลเฟตใน และหลังจากเครื่องกรองจะได้เข้มข้นโดย evaporator โรตารี่(Laborota 4000 มีประสิทธิภาพ เครื่องมือ Heidolph เยอรมนี) ที่ค. 30 Acetonitrileemethanoleacetone โซลูชั่น (40:40:20, v/v)เข้ามาในข้น และเก็บในมืดที่ 18 Cสำหรับการวิเคราะห์เพิ่มเติม ลูทีนถูกตรวจพบ โดยวิธีการปรับเปลี่ยนคิมและ Gerber (1988) ลำดับ Agilent 1100 HPLC (Agilentเทคโนโลยี สหรัฐอเมริกา) ประกอบด้วยแบบจำลอง G1379A degasser การรุ่น G1311A ปั๊ม เตาอบรุ่น G1316A คอลัมน์ และรูปแบบใช้ระบบตรวจจับ (พ่อ) G1315B ไดโอดอาร์เรย์ AgilentZorbax คราส XDB-C18 คอลัมน์ (4.6 150 mm, 5 mm อนุภาคใช้ขนาด สหรัฐอเมริกา) เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วย acetonitrileemethanoleacetone (40:40:20, v/v), ที่อัตราการไหล 0.8 mL/นาทีและใช้ปริมาณ 20 mL ฉีด ตัวอย่างถูกกรองใช้ตัวกรองเส้นผ่าศูนย์กลาง 0.45 มม.ก่อนที่จะฉีดเข้าไปในเข็มคอลัมน์และความยาวคลื่นตรวจจับถูก 450 nm เนื้อหาของส่วนเส้นตรงของเส้นโค้งเทียบคำนวณลูทีนออกค่าใช้ลูทีนค้าเป็นมาตรฐานผสม2.7 การกำหนดกรด chlorogenicกรด Chlorogenic ตรวจพบ โดยวิธีการKahle, Kraus และ Richling (2005) มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง มีใช้ชุด Agilent 1100 ระบบ HPLC ระยะเคลื่อนประกอบด้วยกรดฟอร์มิกอควี (0.1:99.9, v/v) (A) และเมทานอล(ข) การไล่ระดับสีที่ใช้ได้ (10:90e90:10, v/v) B ใน 40 นาทีที่เป็นอัตราการไหลของ 1 mL คอลัมน์ Agilent Zorbax คราส XDBC18 นาทีใช้ และใช้ฉีดปริมาณ 20 mLตัวอย่างถูกกรอง โดยใช้ตัวกรอง 0.45 มม.เส้นผ่าศูนย์กลางเข็มก่อนที่จะฉีดลงในคอลัมน์ สูงสุดที่ระบุได้โดยการเปรียบเทียบรักษาเวลาและแรมสเป็คตรา UV (320 nm) กับค่าของมาตรฐาน เส้นโค้งเทียบเหมาะถูกเตรียมไว้โดยใช้ความเข้มข้น(10e80 mg/mL) ของสารละลายมาตรฐานและผลการถูกแสดงเป็นมิลลิกรัมของกรด chlorogenic เท่าต่อมิลลิลิตรของตัวอย่างการ2.8 การกำหนดเนื้อหาของน้ำตาล (ซูโครส กลูโคส และฟรักโทส)ตรวจพบ โดยวิธีตาม Hurst เนื้อหาน้ำตาลมาร์ติน และ Zoumas (1979) ลำดับ Agilent 1100 HPLC (Agilentเทคโนโลยี สหรัฐอเมริกา) ประกอบด้วยแบบจำลอง G1379A degasser แบบปั๊ม G1311A เตาอบรุ่น G1316A คอลัมน์และรุ่น G1315Bใช้ระบบดรรชนีจับ (RID) ระยะเคลื่อนประกอบด้วย acetonitrile (75:25, v/v) และอัตราการไหล 1 มิลลิลิตร/นาทีถูกปรับปรุง Cosmosil บรรจุคอลัมน์ D น้ำตาล (4.6 250 mm)ถูกใช้ และถูกฉีดตัวอย่างปริมาณ 20 mL แห่งระบุโดยเก็บข้อมูลเวลาเปรียบเทียบกับอาหารอ้างอิงสาร ซูโครส กลูโคส และฟรักโทสถูกใช้เป็นมาตรฐานและมีแสดงผลเป็นกรัมซูโครส กลูโคส และฟรักโทสเทียบเท่ากับต่อลิตรของตัวอย่าง2.9 การวิเคราะห์องค์ประกอบแร่ธาตุของน้ำแครอททำความสะอาดภาชนะบรรจุตัวอย่าง เรือไมโครเวฟ เครื่องแก้วสำหรับมาตรฐานและตัวอย่าง ICP สำหรับกำหนดองค์ประกอบของแร่ทำตามที่แนะนำโดยอเมริกันสาธารณสุขสมาคม (1998) มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง ในย่อ ทุกแก้วต้องถูกจุ่มลงในกรดไนตริกโซลูชัน (10:90, v/v)ถึง 4 h ล้างหลาย ๆ ครั้ง ด้วยน้ำกลั่นแล้วเตาอบแห้งก่อนนำไปใช้ ตัวอย่างน้ำ milliliter หนึ่งถูกเก็บไว้ใน TFMเรือ และต้อง มี 7 mL ของกรดไนตริก (65:35, v/v)และ 1 mL ของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (30:70, v/v) ไมโครเวฟสถานีทำงาน อุณหภูมิของไมโครเวฟถูกปรับปรุงเป็น200 C 10 นาทีและอีก 200 C ในอีก 10 นาทีที่ 1000 Wตาม ด้วยระบายทันทีที่อุณหภูมิห้องใน 20 นาทีแล้ว ผลจากกรดตัวอย่างต้องการหนาว volumetric 50 mLและแตกออกน้ำบริสุทธิ์ถึงหมาย ตัวอย่างดีวิเคราะห์ โดยสเปกโตรมิเตอร์ปล่อยก๊าซพลาสม่าแสงท่าน(OPTIMATM 2100 DV เพอร์เอลเมอแม่นยำ สหรัฐอเมริกา) ทั้งหมดนี้วัดได้ดำเนินการใน triplicate มาตรฐานสำหรับแต่ละมีเตรียมองค์ประกอบแร่ภายในช่วงความเข้มข้นในตัวอย่าง เงื่อนไขทั้งหมดตรวจแร่องค์ประกอบกล่าวถึงในตารางที่ 12.10. จุลินทรีย์วิเคราะห์จุลินทรีย์วิเคราะห์และตัวอย่างน้ำที่บำบัดได้ดำเนินการ โดยใช้วิธีการมาตรฐานที่กล่าวถึงใน FDABacteriological วิเคราะห์ด้วยตนเอง (FDA, 2001) จำนวนแผ่นทั้งหมดถูกกำหนด โดยวิธีจานเท น้ำกลั่น sterilizedใช้ทำ dilutions ล็อตซึ่งมี poured แล้วเข้าแผ่นใส่ petri หลังเจือจางทศนิยม (ถึง 10 5) ของตัวอย่างหลอมละลาย agar (15 mL) ถูกเพิ่มเข้าไปแต่ละจานเพาะเชื้อและการผสมของตัวอย่างทำห้าครั้งในทิศทางแนวตั้ง ตามเข็มนาฬิกา และแนวนอน ทวนเข็มนาฬิกา จาน petri ได้รับอนุญาตแล้วให้ตั้งที่ 25 1 C สำหรับ 30 นาที อาหารแล้วผลจากการบ่มเพาะวิสาหกิจ (MBE GSP-9080 เซี่ยงไฮ้ Boxun อุตสาหกรรม และการพาณิชย์Co., Ltd จีน) 2 วันที่ 32 C โดยการเปิดจานคว่ำลง อาณานิคมในตัวอย่างน้ำถูกนับ (เป็นน้ำ CFU/mL) โดยคูณกับซึ่งกันและกัน ผลลัพธ์ได้แสดงเป็นล็อกเป็นโคโลนี (CFU/mL) ของตัวอย่างระบุหน่วยเทแผ่นวิธีใช้ยีสต์รวมกำหนด และแม่พิมพ์ไว้ รู้จักจำนวน (39 กรัม) มันฝรั่งขึ้น agar (PDA)ผงถูกละลายใน 1000 mL ของน้ำกลั่นในการเตรียมสื่อ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนข้าม กรด tartaric โซลูชัน(10:90, w/v) ถูกเพิ่มลงใน PDA จาน petri ทั้งหมดที่ประกอบด้วยPDA ถูกวางในการบ่มเพาะวิสาหกิจที่ 32 1 C. หลังจาก 2 วันแล้ว

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ซม.) เป็นค่าสัมประสิทธิ์การสูญเสียฟันกรามสำหรับไลโคปีน (รอว์ et al.
2011) ไลโคปีนได้รับการแสดงเป็นมิลลิกรัม / มิลลิลิตรของกลุ่มตัวอย่าง
วัดทั้งหมดถูกถ่ายในเพิ่มขึ้นสามเท่า.
2.6 ความมุ่งมั่นของลูทีน
carotenoid
ถูกสกัดโดยใช้วิธีการของคิมและเกอร์เบอร์(1988) มีการดัดแปลงบางส่วน ยี่สิบห้ามิลลิลิตรน้ำถูกนำมาในช่องทางแยกในการสกัดโดยใช้ปริมาณที่เท่ากันของอะซิโตน3 ครั้งและกรองโดยเบอร์กระดาษฉบับที่1, เค้กและตัวกรองเป็นอีกครั้งที่สกัดด้วยเมทานอล. สารสกัดจากอะซีโตนเมทานอลผสมกับแรงเท่ากับปริมาณของปิโตรเลียมอีเทอร์ บนชั้นปิโตรเลียมอีเธอร์ได้รับการอบแห้งโดยการเพิ่มโซเดียมซัลเฟตปราศจากน้ำในนั้นและหลังจากการกรองมันเป็นความเข้มข้นโดยใช้เครื่องระเหยแบบหมุน(Laborota 4000 ที่มีประสิทธิภาพ Heidolph เครื่องมือ, เยอรมนี) ที่30 องศาเซลเซียส วิธีการแก้ปัญหา Acetonitrileemethanoleacetone (40:40:20, v / v) ถูกบันทึกอยู่ในสมาธิและเก็บไว้ในที่มืด? 18? C สำหรับการวิเคราะห์ต่อ ลูทีนได้รับการตรวจพบโดยวิธีการปรับเปลี่ยนของคิมและเกอร์เบอร์ (1988) Agilent 1100 ชุด HPLC (Agilent Technologies, USA) ประกอบไปด้วยรุ่น G1379A degasser เป็นรูปแบบปั๊มG1311A คอลัมน์รุ่น G1316A เตาอบและรูปแบบG1315B การตรวจสอบอาร์เรย์ไดโอด (DAD) ระบบถูกนำมาใช้ Agilent Zorbax คราส XDB-C18 คอลัมน์ (4.6 150 มิลลิเมตร, 5 มมอนุภาคขนาดสหรัฐอเมริกา) ถูกนำมาใช้ เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วย acetonitrilee methanoleacetone (40:40:20, v / v) ที่อัตราการไหล 0.8 มิลลิลิตร / นาที, และ 20 มิลลิลิตรปริมาณการฉีดถูกนำมาใช้ ตัวอย่างถูกกรองโดยใช้ตัวกรองเข็มฉีดยา 0.45 มิลลิเมตรก่อนที่จะฉีดเข้าไปในคอลัมน์และการตรวจสอบความยาวคลื่น450 นาโนเมตร เนื้อหาของลูทีนที่คำนวณได้จากส่วนเชิงเส้นของเส้นโค้งการสอบเทียบดึงขึ้นมาใช้ในเชิงพาณิชย์ลูทีนเป็นสารมาตรฐาน. 2.7 การหาปริมาณกรด chlorogenic Chlorogenic ปริมาณกรดที่ถูกตรวจพบโดยวิธีการKahle, Kraus และ Richling (2005) มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง Agilent 1100 ชุดระบบ HPLC ได้ถูกนำมาใช้ เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วยกรดน้ำ (0.1: 99.9 v / v) (A) และเมทานอล (B) ลาดนำไปใช้เป็น (10: 90e90: 10, v / v) B ใน 40 นาทีที่อัตราการไหล1 มิลลิลิตร / นาที เสา Agilent Zorbax คราส XDBC18 ถูกนำมาใช้และปริมาณการฉีด 20 มลถูกนำมาใช้. ตัวอย่างถูกกรองโดยใช้ตัวกรองเข็มฉีดยา 0.45 มิลลิเมตรก่อนที่จะฉีดลงในคอลัมน์ ยอดเขาที่ถูกระบุโดยเปรียบเทียบของการเก็บรักษาเวลาและสเปกตรัมรังสียูวี (320 นาโนเมตร) กับที่ของมาตรฐาน เส้นโค้งการสอบเทียบที่เหมาะสมถูกจัดทำขึ้นโดยใช้ความเข้มข้น(10e80 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร) ของการแก้ปัญหามาตรฐานและผลที่ได้รับการแสดงเป็นมิลลิกรัมเทียบเท่ากรดchlorogenic ต่อมิลลิลิตรตัวอย่าง. 2.8 การกำหนดเนื้อหาของน้ำตาล (ซูโครสกลูโคสและฟรุกโตส) เนื้อหาน้ำตาลถูกตรวจพบโดยวิธีการที่ระบุไว้โดยเฮิร์สต์, มาร์ตินและ Zoumas (1979) Agilent 1100 ชุด HPLC (Agilent Technologies, USA) ประกอบไปด้วยรุ่น G1379A degasser, รูปแบบปั๊มG1311A, เตาอบคอลัมน์รุ่น G1316A และรูปแบบ G1315B ดัชนีหักเหตรวจจับ (RID) ระบบถูกนำมาใช้ เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วย acetonitrile (75:25, v / v) และอัตราการไหล 1 มิลลิลิตร / นาทีมีการปรับ Cosmosil บรรจุคอลัมน์น้ำตาล-D (4.6 มม 250) ถูกนำมาใช้และ 20 ตัวอย่างมิลลิลิตรฉีด ยอดเขาที่ถูกระบุโดยเปรียบเทียบการเก็บรักษาครั้งกับของแท้อ้างอิงสาร ซูโครสกลูโคสฟรุกโตสและถูกนำมาใช้เป็นมาตรฐานและผลการวิจัยที่แสดงเป็นกรัมของน้ำตาลซูโครสกลูโคสฟรุกโตสและเทียบเท่าต่อลิตรของตัวอย่าง. 2.9 การวิเคราะห์องค์ประกอบแร่ของน้ำแครอททำความสะอาดของภาชนะบรรจุตัวอย่างเรือเครื่องไมโครเวฟ, เครื่องแก้วสำหรับตัวอย่างมาตรฐานและICP สำหรับความมุ่งมั่นของแร่ธาตุได้ทำตามคำแนะนำของอเมริกันสาธารณสุขสมาคม(1998) มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง ในช่วงสั้น ๆ ทุกแก้วที่จำเป็นต้องได้รับการจุ่มลงในสารละลายกรดไนตริก(10:90, v / v) ได้นานถึง 4 ชั่วโมงล้างหลายครั้งด้วยน้ำกลั่นแล้วอบแห้งก่อนที่จะใช้ ตัวอย่างหนึ่งมิลลิลิตรน้ำถูกนำไป TFM เรือและย่อย 7 มิลลิลิตรของสารละลายกรดไนตริก (65:35, v / v) และ 1 มิลลิลิตรของสารละลายไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (30:70, v / v) ในไมโครเวฟสถานีงาน อุณหภูมิของเตาไมโครเวฟปรับเป็น200 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 นาทีและอีกครั้ง 200? C เป็นเวลาอีก 10 นาทีที่ 1,000 W, ตามด้วยการระบายอากาศทันทีที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 20 นาที. จากนั้นกลุ่มตัวอย่างย่อยกรดถูกขยับไป 50 มลขวดปริมาตรและเจือจางด้วยน้ำบริสุทธิ์ขึ้นเครื่องหมาย กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการวิเคราะห์โดยการปล่อยสเปกโตรมิเตอร์ inductively คู่พลาสม่าออปติคอล (2100 OPTIMATM DV, Perkin Elmer แม่นยำสหรัฐอเมริกา) ทุกวัดได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า มาตรฐานสำหรับแต่ละองค์ประกอบแร่ได้จัดทำอยู่ในช่วงความเข้มข้นอยู่ในตัวอย่าง เงื่อนไขทั้งหมดสำหรับการตรวจหาแร่องค์ประกอบที่กล่าวถึงในตารางที่ 1 2.10 การวิเคราะห์จุลินทรีย์จุลินทรีย์วิเคราะห์การควบคุมและรับการรักษาตัวอย่างน้ำผลไม้ได้รับการดำเนินการโดยใช้วิธีการมาตรฐานที่กล่าวถึงในองค์การอาหารและยาของคู่มือวิเคราะห์แบคทีเรีย(องค์การอาหารและยา, 2001) จำนวนจุลินทรีย์ทั้งหมดถูกกำหนดโดยวิธีการเทแผ่น น้ำกลั่นฆ่าเชื้อถูกนำมาใช้เพื่อให้เจือจางอนุกรมที่ถูกแล้วเทลงในจานเพาะเชื้อผ่านการฆ่าเชื้อหลังจากการลดสัดส่วนทศนิยม(ไม่เกิน 10? 5) ของกลุ่มตัวอย่าง. Molten วุ้น (15 มิลลิลิตร) ถูกบันทึกอยู่ในอาหารแต่ละจานเพาะเชื้อและการผสมของกลุ่มตัวอย่างได้ทำห้าครั้งในทิศทางแนวตั้งตามเข็มนาฬิกาและแนวนอนทวนเข็มนาฬิกา อาหารเลี้ยงเชื้อที่ได้รับอนุญาตแล้วจะตั้งไว้ที่ 25? 1 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที จานจากนั้นก็ขยับไปยังศูนย์บ่มเพาะ (GSP-9080 MBE, เซี่ยงไฮ้ Boxun อุตสาหกรรมและพาณิชย์ จำกัด , จีน) เป็นเวลา 2 วันที่ 32 องศาเซลเซียสโดยการหมุนจานคว่ำลง อาณานิคมในตัวอย่างน้ำผลไม้นับ (น้ำผลไม้เป็นโคโลนี / มิลลิลิตร) โดยคูณด้วยซึ่งกันและกัน ผลการวิจัยแสดงเป็นบันทึกของหน่วยอาณานิคมขึ้นรูป (โคโลนี / มิลลิลิตร) ของกลุ่มตัวอย่าง. เทแผ่นวิธีการที่ถูกใช้ในการกำหนดยีสต์รวมและนับแม่พิมพ์ ที่รู้จักกันในจำนวนเงินที่ (39 กรัม) วุ้นเดกซ์โทรสมันฝรั่ง (PDA) ผงถูกละลายใน 1,000 มิลลิลิตรของน้ำกลั่นเพื่อเตรียมความพร้อมสื่อ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนข้ามสารละลายกรดทาร์ทาริก(10:90, w / v) ถูกเพิ่มเข้ามาในพีดีเอ ทุกจานเพาะเชื้อที่มีPDA ถูกวางไว้ในตู้อบที่ 32 อยู่แล้ว? 1 องศาเซลเซียส แล้วหลังจากที่สองวัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เซนติเมตร ) คือ ค่าสัมประสิทธิ์การสูญพันธุ์ระหว่างไลโคปีน ( รอว์สัน et al .
2011 ) มีไลโคปีนจะแสดงเป็น mg / ml ของตัวอย่าง วัดทั้งหมด
ถ่ายทั้งสามใบ
2.6 การหาปริมาณลูทีน
แคโรทีนถูกสกัดโดยใช้วิธีของคิมและ
Gerber ( 1988 ) ที่มีการปรับเปลี่ยน ยี่สิบห้ามิลลิลิตร
น้ำได้รับการแยกช่องทางสำหรับการสกัดโดยใช้
เท่ากับปริมาณของอะซิโตน 3 ครั้งและกรองโดย whatman
กระดาษหมายเลข 1 และตัวเค้กจะสกัดด้วยเมทานอล สารสกัดเมทานอล
อะซิโตนผสมอย่างแข็งขันด้วยปริมาณเท่ากับ
ของปิโตรเลียมอีเทอร์ . ปิโตรเลียมอีเธอร์ชั้นบนคือ
แห้งโดยการเพิ่มอันไฮดรัสโซเดียมซัลเฟตในนั้น และหลังจาก
กรองมันเข้มข้นโดยใช้เครื่องระเหยแบบหมุน (
laborota 4000 ที่มีประสิทธิภาพเครื่องมือ heidolph , เยอรมนี )
30
C acetonitrileemethanoleacetone โซลูชั่น ( 40:40:20 , V / V )
เพิ่มในมุ่ง และเก็บไว้ในที่มืดที่  18
C
สำหรับการวิเคราะห์ต่อไป ลูทีน ที่ตรวจพบโดยวิธีดัดแปลงแบบ
ของคิมเบอร์ ( 1988 ) เป็น Agilent 1100 ชุด HPLC ( Agilent
เทคโนโลยี , USA ) มีรูปแบบ g1379a degasser ,
g1311a แบบปั๊มรูปแบบคอลัมน์และ g1316a เตาอบแบบ
g1315b ไดโอดเรย์ตรวจจับ ( พ่อ ) ระบบที่ใช้
คอลัมน์ด้าน zorbax คราส xdb-c18 ( 4.6 150 มม. 5 มม. ขนาดอนุภาค
, USA ) ใช้ เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วย acetonitrilee
methanoleacetone ( 40:40:20 , V / V ) ที่อัตราการไหล 0.8 ml / min
20 ml ฉีดและปริมาณการใช้ ตัวอย่างการใช้หลอดดูดกรองกรอง
0ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 45 มม. ก่อนฉีดลงในคอลัมน์และตรวจจับความยาวคลื่น
ได้ 450 nm . เนื้อหาของ
ลูทีน คำนวณจากส่วนเชิงเส้นของรูปโค้ง
วาดขึ้นโดยใช้สารเชิงพาณิชย์เป็นสารมาตรฐาน
2.7 . การหาปริมาณกรด chlorogenic กรด chlorogenic
เนื้อหาที่ถูกตรวจพบโดยวิธี
คาห์ลเคราส์ และริชลิ้ง , ( 2005 ) มีการปรับเปลี่ยน
เป็นAgilent 1100 ชุด 2 ระบบที่ใช้
เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วยสารละลายกรด ( 0.1:99.9 , v / v ) และเมทานอล
( B ) การไล่ระดับสีใช้เป็น ( 10:90e90:10 , v / v ) B ใน 40 นาที ที่อัตราการไหล
1 มิลลิลิตร / นาที คอลัมน์ของ Agilent zorbax คราส xdbc18
ใช้กับการฉีดปริมาณ 20 ml ใช้ .
ตัวอย่างกรองโดยใช้หลอดดูดกรอง
เส้นผ่าศูนย์กลาง 0.45 มิลลิเมตรก่อนที่จะฉีดเข้าไปในคอลัมน์ ยอดถูกระบุโดยเปรียบเทียบ
เวลาการเก็บและ UV แสง ( 320 nm ) กับของ
มาตรฐาน เส้นโค้งสอบเทียบที่เหมาะสม เตรียมใช้ความเข้มข้น
( 10e80 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตรของสารละลายมาตรฐานและผลลัพธ์
ถูกแสดงเป็นมิลลิกรัมต่อมิลลิลิตรกรด chlorogenic เทียบเท่า
. .
2.8 . วิเคราะห์หาปริมาณของน้ำตาล ( ซูโครส กลูโคส และฟรักโทส

)น้ำตาลเนื้อหาถูกตรวจพบโดยวิธีการที่ระบุไว้โดยเฮิร์สต
Martin และ zoumas ( 1979 ) เป็น Agilent 1100 ชุด HPLC ( Agilent
เทคโนโลยี , USA ) มีรูปแบบ g1379a degasser , รูปแบบ
g1311a ปั๊ม แบบ g1316a คอลัมน์เตาอบและรูปแบบ g1315b
ดรรชนีหักเหตรวจจับ ( RID ) ระบบที่ใช้
เฟสเคลื่อนที่ประกอบด้วยไน ( 5 , v / v ) และอัตราการไหล 1 มิลลิลิตรต่อนาที
คือปรับcosmosil คอลัมน์ของ sugar-d ( 4.6 250 มม. )
ใช้ 20 ml ใช้ฉีด ยอดเขาที่ถูกระบุโดยการเปรียบเทียบความคงทนในการจำ
ครั้งกับบรรดาสารอ้างอิง
ของแท้ ซูโครสกลูโคสและฟรักโทส พบว่าผลมาตรฐาน
และแสดงเป็นกรัมซูโครส กลูโคส และฟรักโทสสมมูลต่อลิตรของตัวอย่าง
.
2.9 . การวิเคราะห์แร่องค์ประกอบของ
น้ำแครอทความสะอาดของภาชนะบรรจุตัวอย่าง ไมโครเวฟ ภาชนะ เครื่องแก้วสำหรับ
มาตรฐานและตัวอย่าง ICP สำหรับการวิเคราะห์ปริมาณแร่ธาตุ
เป็นแนะนำโดยสมาคมอเมริกันสาธารณสุข
( 1998 ) ที่มีการปรับเปลี่ยน สรุปว่า ทั้งหมดต้องถูกจุ่มลงในสารละลาย
เครื่องแก้วกรดไนตริก ( 10:90 , V / V )
นานถึง 4 ชั่วโมง ล้างหลายๆครั้ง ด้วยน้ำแล้ว
อบให้แห้งก่อนการใช้หนึ่งมิลลิลิตรน้ำตัวอย่างใส่ไว้ในเรือ และย่อย TFM
7 มล. สารละลายกรดไนตริก ( ไฟฟ้า , V / V )
1 มิลลิลิตรของสารละลายไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ ( 30 : 70 , v / v ) ไมโครเวฟ
งานสถานี อุณหภูมิของเตาไมโครเวฟ จะปรับเป็น 200

นาน 10 นาทีและอีก 200
C อีก 10 นาทีที่ 1000 W ,
ตามด้วยระบายทันที ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 20 นาที
แล้วกรดย่อยตัวอย่างที่ถูกย้ายไปที่ 50 มล. ปริมาตรขวด
เจือจางกับน้ำบริสุทธิ์และขึ้นเครื่องหมาย กลุ่มตัวอย่างได้มาโดยการอุปนัยคู่

( optimatm ปล่อยพลาสม่าแสงกล้อง DV เพอร์กินเอลเมอร์ 2100 , แม่นยำ , USA ) วัดทั้งหมด
การทดลองทั้งสามใบ มาตรฐานสำหรับแต่ละองค์ประกอบ
แร่เตรียมภายในช่วง
ความเข้มข้นปัจจุบันในตัวอย่าง เงื่อนไขทั้งหมดสำหรับการตรวจหาแร่ธาตุ
เป็นตารางในข้อ 1 .
2.10 . การวิเคราะห์เชื้อจุลินทรีย์จุลินทรีย์ควบคุมและรักษา
การวิเคราะห์ตัวอย่างน้ำถูก
ดำเนินการโดยใช้วิธีการมาตรฐานของ FDA ระบุในคู่มือวิเคราะห์แบคทีเรีย
( FDA , 2001 ) จานทั้งหมดถูกกำหนดโดยเท
นับจานด้วย ฆ่าเชื้อน้ำ
ถูกนำมาใช้ในการสร้างวิธีการที่เป็นอนุกรม แล้วเทลงในจาน Petri หมันหลังทศนิยม (
( ถึง 10  5
) ของกลุ่มตัวอย่าง
หล่อวุ้น ( 15 ml ) คือเพิ่ม Petri แต่ละจาน และการผสมของ
ตัวอย่าง ทำ 5 ครั้งในทิศทางแนวตั้งและแนวนอน
ตามเข็มนาฬิกา anti ตามเข็มนาฬิกา ในจานเพาะเลี้ยง จึงอนุญาตให้
ตั้งไว้ที่ 25  1
C เป็นเวลา 30 นาที อาหาร แล้วเปลี่ยนเป็น
เครื่องฟักไข่ ( gsp-9080 MBE , พาณิชย์&อุตสาหกรรมปซุนเซี่ยงไฮ้
Co . , Ltd , China ) เป็นเวลา 2 วัน ที่ 32
C โดยการเปลี่ยนจานคว่ำ
ลง อาณานิคมในตัวอย่างน้ำถูกนับ ( CFU / มล. ของน้ำ ) โดย
คูณกับส่วนกลับ ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นบันทึก
อาณานิคมสร้างหน่วย ( CFU / ml ) ของกลุ่มตัวอย่าง ใช้วิธีเทแผ่น

หายีสต์และราทั้งหมดนับรู้จักจํานวน ( 39 กรัม ) ของอาหารเลี้ยงเชื้อ potato dextrose agar ( PDA )
ผงละลายใน 1000 มล. น้ำกลั่นเตรียม
สื่อ เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนข้ามกรด tartaric , โซลูชั่น
( 10:90 W / V ) คือเพิ่มใน PDA ทุกจานเลี้ยงเชื้อที่มี
PDA อยู่ในตู้อบที่ 32  1
หลังจาก 2 วัน
C