Materials and methods2.1. Preparati

Materials and methods
2.1. Preparation of herbal vermicompost samples
Foliages of 25 different plant species (Jatropha curcas, Annona
squamosa, Parthenium hysterophorus, Oryza sativa, Gliricidia
sepium, Adhatoda vasica, Azadirachta indica, Capsicum annuum,
Calotropis gigantea, Calotropis procera, Datura metal, Allium
sativum, Zingiber officinale, Ipomoea batatas, Momordica charantia,
Moringa oleifera, Argyranthemum frutescens, Nerium indicum,
Allium cepa, Curcuma aromatica, Pongamia pinnata, Abacopteris
multilineata, Nicotiana tabacum, Tridax procumbens and Vitex
negundo) were collected from the International Crops Research
Institute for the Semi-Arid Tropics (ICRISAT) farm and air-dried at
roomtemperature (30 2 C). The container for vermicomposting
was constructed by cutting a 200 L plastic barrel into two halves.
A metal grill was placed at the bottom of the barrel [10 cm
clearance from the base (floor) of the barrel] and the air-dried
foliages of herbals (bedding material) were composted on top of
the grill with earthworms (Eisenia foetida). The bedding material
was moistened with water before being added to the barrel. The
barrel was covered with a lid to keep the moisture intact and to
avoid light as earthworms grow well in moist environment and
darkness. A layer of foliage was added once a week as feed for the
earthworms. The whole set-up was left for 2 months until all the
foliages of herbals were digested. When the herbal compost was
ready, about 100 g of the sample was collected and stored in
a refrigerator at 4 C for further studies.
2.2. Isolation of actinomycete strains
Ten grams of herbal vermicompost from each sample were
separately suspended in 90 ml of physiological saline (0.85% of
NaCl) in a flask and placed on an orbital shaker (at 100 rpm) at room
temperature (28 2 C) for 1 h. At the end of shaking, the vermicompost
samples were serially diluted up to 106 dilutions with
physiological saline. Dilutions 104106 were plated on starch casein
agar (SCA) by spread plate technique and incubated at 28 2 C for
four days. The most prominent colonies (the ones which were
found abundantly in the plate, produced pigments and inhibited
the adjacent colonies) were isolated and maintained on SCA slants
at 4 C for further studies.
2.3. In vitro antifungal activity
Actinomycete isolates were evaluated for their antifungal
activity against FOC (Race 1; causal agent of Fusarium wilt in
chickpea), Rhizoctonia bataticola (Taub) Butter (three strains viz.
RB-6, RB-24 and RB-115; causal agent of dry root rot in chickpea)
and Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. (causal agent of charcoal
rot in sorghum) by dual-culture assay. FOC and all the three
strains of R. bataticola were acquired from the Legumes Pathology
Division, ICRISAT, Patancheru, India and M. phaseolinawas acquired
from the Directorate of Sorghum Research, Hyderabad, India.
A fungal disk (FOC/R. bataticola) of 6 mm dia. was placed on one
edge (1 cm from the corner) of the glucose casamino acid yeast
extract (GCY agar; Anjaiah et al., 1998) plate, and actinomycete
isolate was streaked on the other edge of the plate (1 cm from the
corner), followed by incubation at 28 2 C for four days or until
the pathogen covered the entire plate in the control plate. Inhibition
of fungal mycelium (halo zone) around the actinomycete
colony was noted as positive and the inhibition zone measured.
2.4. Enzymatic activities and secondary metabolite production by
the actinomycete isolates
2.4.1. Siderophore production
Siderophore production was determined according to the
methodology described by Schwyn and Neilands (1987). Actinomycetes
were streaked on chrome azurol S (CAS) agar media and
incubated at 28 2 C for four days. When the actinomycetes
consume iron, present in the blue-colored CAS media, orange halos
are produced around the colonies, which indicate the presence of
siderophores. Observations were recorded on a 04 rating scale as
follows: 0 ¼ no change; 1 ¼ positive; 2 ¼ halo zone of 1e3 mm;
3 ¼ halo zone of 4e6 mm and 4 ¼ halo zone of 7 mm and above.
2.4.2. Cellulase production
The standardized protocols of Hendricks et al. (1995) were used
to evaluate the cellulase production. Actinomycetes were streaked
on cellulose Congo red agar media and incubated at 28 2 C for
four days. The plates were observed for halo zone around the
actinomycete colonies, which indicate the presence of cellulase.
Observations were recorded on a 04 rating scale as follows: 0 ¼ no
change; 1 ¼ positive; 2 ¼ halo zone of 1e3 mm; 3 ¼ halo zone of
4e6 mm and 4 ¼ halo zone of 7 mm and above.
2.4.3. Protease production
It was done as per the protocols of Bhattacharya et al. (2009).
Actinomycetes were streaked on casein agar and incubated at
28 2 C for four days. At the end of the incubation, the plates were
observed for halo zone around the colonies, which indicates the
presence of protease. Observations were recorded on a 04 rating
scale as follows: 0 ¼ no change; 1 ¼ positive; 2 ¼ halo zone of
1e3 mm; 3 ¼ halo zone of 4e6 mm and 4 ¼ halo zone of 7 mm and
above.
2.4.4. Hydrocyanic acid (HCN) production
HCN was estimated qualitatively by the sulfocyanate colorimetric
method (Lorck, 1948). The actinomycetes were grown in
Bennett agar amended with glycine (4.4 g l1). One sheet of
Whatman filter paper no. 1 (8 cm dia.) was soaked in 1% picric acid
(in 10% sodium carbonate; filter paper and picric acid were sterilized
separately) for a minute and stuck underneath the Petri dish
lids. The plates were sealed with Parafilm and incubated at
28 2 C for four days. Development of reddish brown color on the
filter paper indicated positive for HCN production. Observations
were recorded (by a panel of three observers) on a 03 rating scale

Materials and methods
2.1. Preparation of herbal vermicompost samples
Foliages of 25 different plant species (Jatropha curcas, Annona
squamosa, Parthenium hysterophorus, Oryza sativa, Gliricidia
sepium, Adhatoda vasica, Azadirachta indica, Capsicum annuum,
Calotropis gigantea, Calotropis procera, Datura metal, Allium
sativum, Zingiber officinale, Ipomoea batatas, Momordica charantia,
Moringa oleifera, Argyranthemum frutescens, Nerium indicum,
Allium cepa, Curcuma aromatica, Pongamia pinnata, Abacopteris
multilineata, Nicotiana tabacum, Tridax procumbens and Vitex
negundo) were collected from the International Crops Research
Institute for the Semi-Arid Tropics (ICRISAT) farm and air-dried at
roomtemperature (30  2 C). The container for vermicomposting
was constructed by cutting a 200 L plastic barrel into two halves.
A metal grill was placed at the bottom of the barrel [10 cm
clearance from the base (floor) of the barrel] and the air-dried
foliages of herbals (bedding material) were composted on top of
the grill with earthworms (Eisenia foetida). The bedding material
was moistened with water before being added to the barrel. The
barrel was covered with a lid to keep the moisture intact and to
avoid light as earthworms grow well in moist environment and
darkness. A layer of foliage was added once a week as feed for the
earthworms. The whole set-up was left for 2 months until all the
foliages of herbals were digested. When the herbal compost was
ready, about 100 g of the sample was collected and stored in
a refrigerator at 4 C for further studies.
2.2. Isolation of actinomycete strains
Ten grams of herbal vermicompost from each sample were
separately suspended in 90 ml of physiological saline (0.85% of
NaCl) in a flask and placed on an orbital shaker (at 100 rpm) at room
temperature (28  2 C) for 1 h. At the end of shaking, the vermicompost
samples were serially diluted up to 106 dilutions with
physiological saline. Dilutions 104106 were plated on starch casein
agar (SCA) by spread plate technique and incubated at 28  2 C for
four days. The most prominent colonies (the ones which were
found abundantly in the plate, produced pigments and inhibited
the adjacent colonies) were isolated and maintained on SCA slants
at 4 C for further studies.
2.3. In vitro antifungal activity
Actinomycete isolates were evaluated for their antifungal
activity against FOC (Race 1; causal agent of Fusarium wilt in
chickpea), Rhizoctonia bataticola (Taub) Butter (three strains viz.
RB-6, RB-24 and RB-115; causal agent of dry root rot in chickpea)
and Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. (causal agent of charcoal
rot in sorghum) by dual-culture assay. FOC and all the three
strains of R. bataticola were acquired from the Legumes Pathology
Division, ICRISAT, Patancheru, India and M. phaseolinawas acquired
from the Directorate of Sorghum Research, Hyderabad, India.
A fungal disk (FOC/R. bataticola) of 6 mm dia. was placed on one
edge (1 cm from the corner) of the glucose casamino acid yeast
extract (GCY agar; Anjaiah et al., 1998) plate, and actinomycete
isolate was streaked on the other edge of the plate (1 cm from the
corner), followed by incubation at 28  2 C for four days or until
the pathogen covered the entire plate in the control plate. Inhibition
of fungal mycelium (halo zone) around the actinomycete
colony was noted as positive and the inhibition zone measured.
2.4. Enzymatic activities and secondary metabolite production by
the actinomycete isolates
2.4.1. Siderophore production
Siderophore production was determined according to the
methodology described by Schwyn and Neilands (1987). Actinomycetes
were streaked on chrome azurol S (CAS) agar media and
incubated at 28  2 C for four days. When the actinomycetes
consume iron, present in the blue-colored CAS media, orange halos
are produced around the colonies, which indicate the presence of
siderophores. Observations were recorded on a 04 rating scale as
follows: 0 ¼ no change; 1 ¼ positive; 2 ¼ halo zone of 1e3 mm;
3 ¼ halo zone of 4e6 mm and 4 ¼ halo zone of 7 mm and above.
2.4.2. Cellulase production
The standardized protocols of Hendricks et al. (1995) were used
to evaluate the cellulase production. Actinomycetes were streaked
on cellulose Congo red agar media and incubated at 28  2 C for
four days. The plates were observed for halo zone around the
actinomycete colonies, which indicate the presence of cellulase.
Observations were recorded on a 04 rating scale as follows: 0 ¼ no
change; 1 ¼ positive; 2 ¼ halo zone of 1e3 mm; 3 ¼ halo zone of
4e6 mm and 4 ¼ halo zone of 7 mm and above.
2.4.3. Protease production
It was done as per the protocols of Bhattacharya et al. (2009).
Actinomycetes were streaked on casein agar and incubated at
28  2 C for four days. At the end of the incubation, the plates were
observed for halo zone around the colonies, which indicates the
presence of protease. Observations were recorded on a 04 rating
scale as follows: 0 ¼ no change; 1 ¼ positive; 2 ¼ halo zone of
1e3 mm; 3 ¼ halo zone of 4e6 mm and 4 ¼ halo zone of 7 mm and
above.
2.4.4. Hydrocyanic acid (HCN) production
HCN was estimated qualitatively by the sulfocyanate colorimetric
method (Lorck, 1948). The actinomycetes were grown in
Bennett agar amended with glycine (4.4 g l1). One sheet of
Whatman filter paper no. 1 (8 cm dia.) was soaked in 1% picric acid
(in 10% sodium carbonate; filter paper and picric acid were sterilized
separately) for a minute and stuck underneath the Petri dish
lids. The plates were sealed with Parafilm and incubated at
28  2 C for four days. Development of reddish brown color on the
filter paper indicated positive for HCN production. Observations
were recorded (by a panel of three observers) on a 03 rating scale

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

วัสดุและวิธีการ2.1 การเตรียมตัวอย่างสมุนไพร vermicompostFoliages 25 พืชต่างชนิด (สบู่ดำ curcas, Annonasquamosa, Parthenium hysterophorus, Oryza ซา แคฝรั่ง Adhatoda vasica สะเดา annuum พริกหวานCalotropis gigantea, Calotropis procera, Datura โลหะ ต้นsativum, officinale ไพล batatas ผัก สมุนไพรมะระขี้ นกOleifera มะรุม Argyranthemum frutescens, Nerium เก...ต้น cepa, aromatica ใช้ขมิ้นชัน Pongamia pinnata, Abacopterismultilineata, Nicotiana tabacum, Tridax procumbens และไม้negundo) ได้รวบรวมจากงานวิจัยพืชนานาชาติสถาบันสำหรับฟาร์ม Semi-Arid เขตร้อน (ICRISAT) และ air-dried ที่roomtemperature (30 2 C) ที่เก็บ vermicompostingถูกสร้างขึ้น โดยตัดเป็นถังพลาสติกขนาด 200 ลิตรเป็นสองซีกมีวางตะแกรงโลหะที่ด้านล่างของกระบอก [10 ซม.เคลียร์จากฐาน (ชั้น) กระบอก] และที่ air-driedfoliages herbals (นอนวัสดุ) มี composted บนย่าง ด้วยไส้เดือน (Eisenia โหม) วัสดุเครื่องนอนมี moistened น้ำก่อนที่จะถูกเพิ่มให้กระบอก ที่บาร์เรลถูกปกคลุม ด้วยฝาเพื่อเก็บความชื้นเหมือนเดิม และการหลีกเลี่ยงแสงไส้เดือนเจริญเติบโตดีในสภาพแวดล้อมชุ่มชื่น และความมืด มีเพิ่มชั้นของใบเมื่อสัปดาห์เป็นอาหารสำหรับการไส้เดือนนั้น การตั้งค่าทั้งหมดที่เหลือ 2 เดือนจนกว่าทุกfoliages herbals ถูกต้อง เมื่อได้ปุ๋ยสมุนไพรพร้อม รวบรวม และจัดเก็บไว้ในตัวอย่างประมาณ 100 กรัมตู้เย็นที่ 4 C สำหรับศึกษาเพิ่มเติม2.2 การแยกสายพันธุ์ actinomycete10 กรัมของ vermicompost สมุนไพรจากแต่ละอย่างได้แยกชั่วคราวใน 90 ml ของ physiological น้ำเกลือ (0.85%NaCl) ในความหนาว และวางลงในเชคเกอร์ของวงโคจร (ที่ 100 rpm) ห้องอุณหภูมิ (28 2 C) สำหรับ 1 h ที่สุดของการสั่น การ vermicompostตัวอย่างที่ผสมถึง dilutions 106 กับ seriallyน้ำเกลือ physiological Dilutions 104 106 ถูกชุบในแป้งเคซีนagar (SCA) โดยแผ่แผ่นเทคนิค และ incubated ที่ 2 C 28 สำหรับวันที่สี่ อาณานิคมที่สุด (คนที่ถูกอุดมสมบูรณ์ในจาน ผลิตสี และห้ามแยกต่างหาก และอยู่ใน SCA slants อาณานิคมอยู่ติดกัน)ที่ C 4 สาขา2.3 การกิจกรรมเพาะในต้านเชื้อราแยก actinomycete ถูกประเมินสำหรับการต้านเชื้อรากิจกรรมกับ FOC (แข่งขัน แทนสาเหตุของการเหี่ยว Fusarium ในแกงถั่วเขียว), Rhizoctonia bataticola (Taub) เนย (สามสายพันธุ์ vizRB 6, RB-24 และ RB-115 ตัวแทนสาเหตุของแห้งรากเน่าในแกงถั่วเขียว)Macrophomina phaseolina (Tassi) และ Goid (สาเหตุแทนถ่านเน่าในข้าวฟ่าง) โดยวิเคราะห์จากสองวัฒนธรรม FOC และทั้งสามสายพันธุ์ของอาร์ bataticola ได้รับมาจากพยาธิกินมา phaseolinawas หาร ICRISAT, Patancheru อินเดีย และม.จากฝ่ายวิจัยข้าวฟ่าง ไฮเดอราบัด อินเดียดิสก์แบบเชื้อรา (FOC/R. bataticola) ของ 6 mm dia.ถูกวางบนขอบ (1 ซม.จากมุม) ยีสต์น้ำตาลกลูโคสกรดของ casaminoสารสกัด (GCY agar Anjaiah และ al., 1998) จาน และ actinomyceteแยกเป็นลายบนขอบของจาน (1 ซ.ม.จากมุม), ตาม ด้วยการบ่มที่ 28 2 C สี่วัน หรือจนกว่าการศึกษาครอบคลุมทั้งแผ่นในแผ่นควบคุม ยับยั้งการของ mycelium เชื้อรา (halo โซน) สถาน actinomyceteโคโลนีที่สังเกตเป็นบวก และโซนยับยั้งวัด2.4 กิจกรรมที่เอนไซม์ในระบบและ metabolite รองผลิตโดยแยก actinomycete2.4.1. Siderophore ผลิตผลิต Siderophore กำหนดตามวิธีที่อธิบายไว้ โดย Schwyn และ Neilands (1987) Actinomycetesมีลายบนโครเมี่ยม azurol media agar S (CAS) และincubated ที่ 28 2 C 4 วัน เมื่อ actinomycetesใช้เหล็ก นำเสนอในสื่อสีน้ำเงิน CAS, halos ส้มผลิตทั่วอาณานิคม ซึ่งบ่งชี้สถานะของsiderophores บันทึกข้อสังเกตใน 4 0 เรทติ้งเป็นดังต่อไปนี้: 0 ¼ไม่เปลี่ยนแปลง 1 ¼บวก 2 โซน¼ halo 1e3 มม.3 โซน¼ halo 4e6 มม.และ 4 โซน¼ halo ของ 7 มม. และเหนือ2.4.2. cellulase ผลิตใช้โพรโทคอลที่เป็นมาตรฐานของนดริกส์ et al. (1995)การประเมินการผลิต cellulase Actinomycetes มีลายบนเซลลูโลสคองโกแดง agar media และ incubated ที่ 2 C 28 สำหรับวันที่สี่ แผ่นสุภัคสำหรับ halo โซนสถานอาณานิคม actinomycete ซึ่งบ่งชี้สถานะของ cellulaseสังเกตบันทึกบนเรทติ้งดัง 4 0:0 ¼ไม่เปลี่ยน 1 ¼บวก 2 โซน¼ halo 1e3 มม. 3 โซน¼ halo ของ4e6 มม.และ 4 โซน¼ halo ของ 7 มม. และเหนือ2.4.3. รติเอสผลิตมันทำตามโปรโตคอลของ Bhattacharya et al. (2009)Actinomycetes เป็นลายบน agar เคซีน และ incubated ที่28 C 2 วัน 4 ที่สุดของการบ่มเพาะวิสาหกิจ แผ่นได้สังเกตสำหรับโซน halo ทั่วอาณานิคม ซึ่งบ่งชี้ถึงการสถานะของรติเอส บันทึกข้อสังเกตใน 0 4 คะแนนขนาดดัง: 0 ¼ไม่เปลี่ยนแปลง 1 ¼บวก 2 โซน¼ halo ของ1e3 mm 3 โซน¼ halo 4e6 มม.และ 4 โซน¼ halo มม. 7 และข้างต้น2.4.4 การกรดไฮโดรไซยานิก (HCN) ผลิตHCN ได้ประมาณ qualitatively โดย sulfocyanate เคียงวิธี (Lorck, 1948) Actinomycetes ถูกปลูกในเบนเนต agar แก้ไขกับ glycine (4.4 g l 1) แผ่นเดียวกระดาษกรอง Whatman หมายเลข 1 (8 ซม. dia.) ถูกนำไปแช่ในกรด picric 1%(10% โซเดียมคาร์บอเนต กระดาษกรอง และกรด picric ถูก sterilizedแยกต่างหาก) สำหรับนาที และติดอยู่ใต้จานเพาะเชื้อฝา ปิดผนึก ด้วย Parafilm และ incubated ที่แผ่น28 C 2 วัน 4 การพัฒนาของสีน้ำตาลสีน้ำตาลบนใบกระดาษกรองระบุค่าบวกสำหรับผลิต HCN ข้อสังเกตุบันทึก (โดยแผงของผู้สังเกตการณ์ที่สาม) บน 3 0 ที่เรทติ้ง

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

วัสดุและวิธีการ
2.1 การเตรียมการของกลุ่มตัวอย่างมูลไส้เดือนสมุนไพร
foliages 25 พันธุ์พืชที่แตกต่างกัน (สบู่ดำ, น้อยหน่า
squamosa, Parthenium hysterophorus, Oryza sativa, Gliricidia
sepium, Adhatoda vasica, สะเดา, พริกพริกหยวก,
ดอกรัก gigantea, ดอกรัก procera โลหะลำโพง, Allium
sativum, ขิง , Ipomoea batatas, มะระ,
มะรุม, Argyranthemum ขี้หนู, Nerium indicum,
Allium cepa, ว่านนางคำ, Pongamia pinnata, Abacopteris
multilineata, Nicotiana tabacum, procumbens Tridax และ Vitex
negundo) ที่ถูกเก็บรวบรวมจากพืชนานาชาติวิจัย
สถาบันกึ่งแห้งแล้ง Tropics (ICRISAT) ฟาร์มและอากาศแห้งที่
roomtemperature (30? 2? C) ภาชนะสำหรับไส้เดือน
ถูกสร้างขึ้นโดยการตัดถังพลาสติก 200 ลิตรเป็นสองส่วน.
ตะแกรงโลหะวางอยู่ที่ด้านล่างของถัง [10 ซม
กวาดล้างจากฐาน (ชั้น) ของถัง] และอากาศแห้ง
foliages ของสมุนไพร (เตียงวัสดุ) ได้รับการหมักที่ด้านบนของ
เตาย่างกับไส้เดือนดิน (Eisenia foetida) วัสดุเตียง
ถูกชุบน้ำก่อนที่จะถูกเพิ่มลงในถัง
บาร์เรลถูกปกคลุมด้วยฝาปิดเพื่อให้ความชื้นเหมือนเดิมและเพื่อ
หลีกเลี่ยงแสงเป็นไส้เดือนดินเจริญเติบโตได้ดีในสภาพแวดล้อมที่ชื้นและ
ความมืด ชั้นของใบถูกเพิ่มเข้ามาสัปดาห์ละครั้งเป็นอาหารสำหรับ
ไส้เดือน ทั้งการตั้งค่าถูกทิ้งไว้เป็นเวลา 2 เดือนจน
foliages ของสมุนไพรที่ถูกย่อย เมื่อปุ๋ยหมักสมุนไพรก็
พร้อมที่ประมาณ 100 กรัมของกลุ่มตัวอย่างที่ถูกเก็บรวบรวมและเก็บไว้ใน
ตู้เย็นที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสสำหรับการศึกษาต่อไป.
2.2 การแยกสายพันธุ์ actinomycete
สิบกรัมของปุ๋ยหมักมูลไส้เดือนจากสมุนไพรแต่ละตัวอย่างถูก
ระงับแยกต่างหากใน 90 มล. น้ำเกลือทางสรีรวิทยา (0.85% ของ
โซเดียมคลอไรด์) ในขวดและวางไว้บนเครื่องปั่นวงโคจร (ที่ 100 รอบต่อนาที) ณ ห้อง
อุณหภูมิ (28? 2? C ) เป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในตอนท้ายของการสั่น, มูลไส้เดือน
ตัวอย่างที่ถูกปรับลดเป็นลำดับถึง 106 เจือจางด้วย
น้ำเกลือทางสรีรวิทยา เจือจาง 104? 106 ถูกชุบแป้งเคซีนใน
อาหารเลี้ยงเชื้อ (SCA) โดยใช้เทคนิคการแพร่กระจายแผ่นและบ่มที่ 28? 2? C เป็นเวลา
สี่วัน อาณานิคมที่โดดเด่นที่สุด (คนที่ถูก
พบมากในแผ่นที่ผลิตเม็ดสีและยับยั้ง
อาณานิคมอยู่ติดกัน) มีแยกและการบำรุงรักษาใน slants SCA
ที่ 4 องศาเซลเซียสสำหรับการศึกษาต่อไป.
2.3 ในกิจกรรมต้านเชื้อราหลอดทดลอง
actinomycete แยกได้รับการประเมินสำหรับเชื้อราของพวกเขา
กับกิจกรรมฟรี (การแข่งขัน 1; ตัวแทนโรคเหี่ยวใน Fusarium สาเหตุ
ถั่วเขียว) Rhizoctonia bataticola (Taub) เนย (สามสายพันธุ์ ได้แก่ .
RB-6 RB-24 RB-115; สาเหตุของโรครากเน่าแห้งในถั่วเขียว)
และ Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid (สาเหตุของถ่าน
เน่าในข้าวฟ่าง) โดยการทดสอบแบบ dual-วัฒนธรรม ฟรีและทั้งสาม
สายพันธุ์ของ bataticola อาร์ที่ได้มาจากพืชตระกูลถั่วพยาธิวิทยา
กอง ICRISAT, Patancheru อินเดียและเอ็ม phaseolinawas ที่ได้มา
จากคณะกรรมการของข้าวฟ่างวิจัย Hyderabad, India.
ดิสก์เชื้อรา (ฟรี / R. bataticola) ของ เส้นผ่าศูนย์กลาง 6 มม ถูกวางลงบนหนึ่ง
ขอบ (1 ซม. จากมุม) ของน้ำตาลกลูโคสกรดซามิยีสต์
สารสกัด (วุ้น GCY. Anjaiah, et al, 1998) แผ่นและ actinomycete
แยกถูกลายบนขอบของแผ่นอื่น ๆ (1 ซม. จาก
มุม ) ตามด้วยการบ่มที่ 28? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลาสี่วันหรือจนกว่าจะมี
การติดเชื้อที่ครอบคลุมทั้งในแผ่นแผ่นควบคุม ยับยั้ง
เส้นใยของเชื้อรา (เขตรัศมี) รอบ actinomycete
อาณานิคมถูกตั้งข้อสังเกตว่าในเชิงบวกและบริเวณยับยั้งวัด.
2.4 กิจกรรมของเอนไซม์และการผลิตสารทุติยภูมิโดย
actinomycete แยก
2.4.1 การผลิต siderophore
ผลิต siderophore ถูกกำหนดให้เป็นไปตาม
วิธีการอธิบายโดย Schwyn และ Neilands (1987) actinomycetes
ถูกเส้นโครเมี่ยมใน azurol S (CAS) วุ้นสื่อและการ
บ่มที่ 28? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลาสี่วัน เมื่อ actinomycetes
บริโภคเหล็กอยู่ในสื่อ CAS สีฟ้า, สีส้มรัศมี
มีการผลิตทั่วอาณานิคมซึ่งบ่งบอกถึงการปรากฏตัวของ
siderophores ข้อสังเกตที่ถูกบันทึกไว้บน 0 4 มาตราส่วนเป็น?
ต่อไปนี้: 0 ¼ไม่มีการเปลี่ยนแปลง 1 ¼บวก; 2 ¼โซนรัศมีของ 1e3 มม
3 ¼โซนรัศมีของมม 4e6 และ 4 ¼เขตรัศมี 7 มิลลิเมตรและสูงกว่า.
2.4.2 ผลิตเซลลูเล
โปรโตคอลมาตรฐานของเฮ็นดริกเอตอัล (1995) ถูกนำมาใช้
ในการประเมินการผลิตเซลลูเลส actinomycetes ถูกลาย
บนเซลลูโลสคองโกสื่อวุ้นสีแดงและบ่มที่ 28? 2? C เป็นเวลา
สี่วัน แผ่นถูกตั้งข้อสังเกตสำหรับโซนรัศมีรอบ
อาณานิคม actinomycete ซึ่งบ่งบอกถึงการปรากฏตัวของเซลลูเลส.
สังเกตที่ถูกบันทึกไว้บน 0 4 ระดับคะแนนดังต่อไปนี้: 0 ¼ไม่มี
การเปลี่ยนแปลง 1 ¼บวก; 2 ¼โซนรัศมีของมม 1e3; 3 ¼โซนรัศมีของ
มม 4e6 และ 4 ¼เขตรัศมี 7 มิลลิเมตรและสูงกว่า.
2.4.3 การผลิตโปรติเอส
มันก็ทำตามโปรโตคอลของ Bhattacharya et al, (2009).
Actinomycetes ถูกลายเคซีนในอาหารเลี้ยงเชื้อและบ่มที่
28? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลาสี่วัน ในตอนท้ายของการบ่มแผ่นที่ถูก
ตั้งข้อสังเกตสำหรับโซนรัศมีรอบอาณานิคมซึ่งบ่งชี้ว่า
การปรากฏตัวของโปรติเอส ข้อสังเกตที่ถูกบันทึกไว้ใน 4 0 คะแนน?
ขนาดดังต่อไปนี้: 0 ¼ไม่มีการเปลี่ยนแปลง 1 ¼บวก; 2 ¼โซนรัศมีของ
มม 1e3; 3 ¼โซนรัศมีของมม 4e6 และ 4 ¼เขตรัศมี 7 มิลลิเมตรและ
ด้านบน.
2.4.4 กรดไฮโดรไซยา (HCN) ผลิต
HCN เป็นที่คาดกันในเชิงคุณภาพโดยสี sulfocyanate
วิธี (Lorck, 1948) แอคติโนมัยถูกปลูกใน
เบนเน็ตต์กับวุ้นแก้ไข glycine (4.4 GL 1) หนึ่งแผ่น
กระดาษกรอง Whatman ไม่มี 1 (. 8 ซม. เส้นผ่าศูนย์กลาง) ถูกแช่ในกรด picric 1%
(ในโซเดียมคาร์บอเนต 10%; กระดาษกรองและกรด picric ถูกฆ่าเชื้อ
แยกต่างหาก) สำหรับนาทีและติดอยู่ใต้จานเลี้ยงเชื้อ
ฝาปิด แผ่นถูกปิดผนึกด้วย Parafilm และบ่มที่
28? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลาสี่วัน การพัฒนาที่มีสีน้ำตาลแดงบน
กระดาษกรองชี้ให้เห็นในเชิงบวกสำหรับการผลิต HCN ข้อสังเกต
ที่ถูกบันทึกไว้ (โดยแผงของสามผู้สังเกตการณ์) ในวันที่ 0 3 มาตราส่วน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

วัสดุและวิธีการ
2.1 . การเตรียม foliages ตัวอย่าง
Vermicompost สมุนไพร 25 ชนิดพืชที่แตกต่างกัน ( สบู่ดำผลน้อยหน่า
, , hysterophorus parthenium , ข้าว , gliricidia
sepium adhatoda vasica , สะเดา , พริก annuum , , วัด calotropis procera
, ,
sativum ย์ลำโพงโลหะ , ขิง , สมุนไพร , batatas ไอโพเมียใช้
, ,มะรุมเม็ด argyranthemum , ,
indicum ยี่โถ , หอมหัวใหญ่ ขมิ้น aromatica pongamia , 2543 abacopteris
multilineata , การคูณ , ตีนตุ๊กแก , และน้ำ ) ถูกเก็บไวเท็กซ์

จากสถาบันวิจัยพืชเขตร้อนกึ่งแห้งแล้งนานาชาติ ( ICRISAT ) ฟาร์มและอากาศแห้งที่อุณหภูมิห้อง ( 30
2 C ) . ภาชนะสำหรับ vermicomposting
ถูกสร้างขึ้นโดยการตัดถังพลาสติก 200 ลิตรออกเป็นสองซีก
ย่างโลหะถูกวางไว้ที่ด้านล่างของถัง [ 10 cm
แหวนจากฐาน ( พื้น ) ของถังและอากาศแห้ง
foliages ของสมุนไพร ( วัสดุเตียง ) หมักด้านบน
ย่างไส้เดือน ( เนีย เฟติดา ) เตียงวัสดุ
ถูกชุบด้วยน้ำก่อนที่จะถูกเพิ่มไปยังถัง
บาร์เรลถูกปกคลุมด้วยฝาปิดเพื่อรักษาความชื้นและป้องกันแสงเหมือนเดิม

เป็นไส้เดือนเจริญเติบโตได้ดีในสภาพแวดล้อมที่ชื้นและ
ความมืด ชั้นของใบไม้ที่ถูกเพิ่มเข้ามาเมื่อสัปดาห์ที่เป็นอาหารสัตว์สำหรับ
ไส้เดือน การตั้งค่าทั้งหมดถูกทิ้ง 2 เดือนจน
foliages ของสมุนไพรถูกย่อย เมื่อหมักสมุนไพรมี
พร้อมประมาณ 100 กรัมของตัวอย่างที่ถูกเก็บรวบรวมและเก็บไว้ใน
ตู้เย็นที่ 4 C สำหรับการศึกษา .
2.2 . การแยกเชื้อแอคติโนมัยซีท
10 กรัมของสมุนไพร Vermicompost จากแต่ละจำนวน
แยกกันชั่วคราวใน 90 มิลลิลิตร สรีรวิทยา น้ำเกลือ ( 0.85 %
NaCl ) ในขวดและวางไว้บนเครื่องปั่นโคจร ( ที่ 100 รอบต่อนาที ที่อุณหภูมิในห้อง
( 28 2 C ) เป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในตอนท้ายของสั่น และ vermicompost
กลุ่มตัวอย่างเป็นจำนวนถึง 106 เจือจางกับ
น้ำเกลือทางสรีรวิทยา วิธีการ 104 106 ถูกชุบบนอาหารวุ้นเคซีน
แป้ง ( SCA ) โดยเทคนิคแผ่นกระจายและบ่มที่อุณหภูมิ 28 2 C
4 วัน อาณานิคมที่โดดเด่นที่สุด ( คนที่ได้
พบมากในจาน , ผลิตสีและยับยั้ง
อาณานิคมติดกัน ) ถูกแยกและรักษา SCA slants
ที่ 4 C สำหรับการศึกษา .
2.3 การเพาะเชื้อราไอโซเลททำการแอคติโนมัยซีทกิจกรรม

ต่อฤทธิ์ต้านราเสียการแข่งขัน 1 ; สาเหตุโรคเน่าแห้งเหี่ยวใน
ถั่วเขียว ) , ไรซอคโทเนีย bataticola ( เทา ) เนย ( 3 สายพันธุ์ ได้แก่ rb-6
, และ rb-24 rb-115 ; สาเหตุโรครากเน่าแห้งถั่วเขียว )
macrophomina ชีวภาพ ( tassi ) และ ทองคำ . สาเหตุโรค
( ถ่านเน่าในข้าวฟ่าง ) โดยวัฒนธรรมสองการทดสอบ ฟรีและทั้งหมด 3
สายพันธุ์ R . bataticola ได้มาจากพืชตระกูลถั่วพยาธิวิทยา
ฝ่าย ญเติบโต Patancheru , อินเดีย และ ม. phaseolinawas ได้มา
จากกรมยุทธศึกษา ข้าวฟ่าง ไฮเดอราบัด อินเดีย
ดิสก์รา ( ฟรี / R . bataticola ) ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 6 มม. ที่ถูกวางไว้บนขอบ (
1 ซม. จากมุมของกลูโคสยีสต์
casamino กรด

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.