- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
3.7. Fourier-transform infrared spe
3.7. Fourier-transform infrared spectroscopy (FTIR)
FTIR analysis aided identification of the functional groups present
in the samples and revealed how the composition and structure
of the banana fibers changed along the treatments. Fig. 6
contains the FTIR spectrum of the banana peel bran and CNFs.
The large absorption band in the region of 3650e3000 cm1
referred to eOH groups and represented the hydrophilicity of the
natural fibers (bran) and CT- and ET-treated CNFs. The peak at
3337 cm1 corresponded to eOH stretching; this band was related
to specific intramolecular hydrogen bonds of cellulose II (Yang, Yan,
Chen, Lee, & Zheng, 2007; Zuluaga et al., 2009). The bran displayed
a small band in the region of 2920 cm1, typical of the stretching
vibrations of the CeH bonds in hemicelluloses and cellulose. This
peak became more intense in the spectra of the treated CNFs
samples.
The bands relative to cellulose were more intense in the spectra
of the treated samples, because lignin removal augmented their
crystalline content. Indeed, the peaks assigned to the cellulose CeH
groups stretching in the 1400e1300 cm1 region were more
intense in the treated samples as compared with the bran.
The shoulder at 1731 cm1 in the spectrum of the bran corresponded
to vibrations of the acetyl and uronic ester groups of
hemicelluloses or to the ester linkage of carboxylic group of the
ferulic and p-coumaric acids of lignin (Cherian et al., 2008). This
peak did not appear in the spectrum of the CT-treated nanofiber,
because the bleaching process removed most of the hemicelluloses
and lignin from the CNFs. Siqueira, Bras, and Dufresne (2010b)
attributed bands near 1730 cm1 to deformation of the C]O
groups of xylan, the main component of hemicelluloses. The
absence of this band in the spectrum of the ET-treated nanofibers
confirmed that xylanase acted on the sample during ET.
Fig. 6 evidences that the bleaching (CT) and alkaline treatment
(ET) steps removed most of the lignin from the CNFs: the bands at
1525 cm1 (aromatic ring vibration) and 761 cm1 (CeH strains)
disappeared after these pretreatments (Zuluaga et al., 2009).
The shoulder that appeared in the spectrum of the CT-treated
CNFs at 1635 cm1 was associated with adsorbed water; it could
also reveal that conjugated carbonyl groups either existed in the
polyphenolic structure of lignin or resulted from carbohydrate
oxidation (Hassan et al., 2010).
The spectrum of the bran also exhibited a large band in the
1600e1500 cm1 region, due to conjugated aromatic rings and
carbonyl groups present in the polyphenolic structure of lignin
(Hassan et al., 2010). Only very weak peaks emerged in this region
of the spectrum of the CT-treated CNFs, confirming substrate
delignification. Nevertheless, the ET-treated CNFs presented a peak
in this region, at 1574 cm1, which attested that the sample contained
lignin residues; i.e., ET did not remove lignin completely.
Some authors have reported that vibrations around 2850 cm1
corresponded to OeH stretching of the waxes and lignin (Xu, Sun,
Sun, Fowler, & Baird, 2006; Zuluaga et al., 2009). Therefore, the
peak at 2855 cm1 corroborated that lignin did remain in the ETtreated
lignin sample.
Probably, the band at 1102 cm1 in CNFs spectra was associated
with changes in hydrogen bonds, suggesting transition from cellulose
I to cellulose II (Zuluaga et al., 2009). The peak that emerged
in the region of 1034 cm1 in all the spectra was ascribed toxyloglucans fractions associated with non-hydrolyzed hemicelluloses
strongly bound within the cellulose microfibrils (Viikari,
Kantelinen, Sundquist, & Linko, 1994; Zuluaga et al., 2009).
The peak at 888 cm1 in the spectra of the CNFs samples and
absent from the spectrum of the bran referred to typical cellulose
structures, as reported by Alemdar and Sain (2008). Meanwhile, the
band at 840 cm1 in the spectrum of the bran corresponded to aromatic
ring CeH groups in the lignin (Marcovich, Reboredo, &
Aranguren, 1996). This band did not exist in the spectrum of the
CNFs samples, confirming lignin removal. These results allowed to
state that both CT and ET effectively removed the amorphous components
from the structure of the bran and permitted CNFs isolation.
FTIR analysis aided identification of the functional groups present
in the samples and revealed how the composition and structure
of the banana fibers changed along the treatments. Fig. 6
contains the FTIR spectrum of the banana peel bran and CNFs.
The large absorption band in the region of 3650e3000 cm1
referred to eOH groups and represented the hydrophilicity of the
natural fibers (bran) and CT- and ET-treated CNFs. The peak at
3337 cm1 corresponded to eOH stretching; this band was related
to specific intramolecular hydrogen bonds of cellulose II (Yang, Yan,
Chen, Lee, & Zheng, 2007; Zuluaga et al., 2009). The bran displayed
a small band in the region of 2920 cm1, typical of the stretching
vibrations of the CeH bonds in hemicelluloses and cellulose. This
peak became more intense in the spectra of the treated CNFs
samples.
The bands relative to cellulose were more intense in the spectra
of the treated samples, because lignin removal augmented their
crystalline content. Indeed, the peaks assigned to the cellulose CeH
groups stretching in the 1400e1300 cm1 region were more
intense in the treated samples as compared with the bran.
The shoulder at 1731 cm1 in the spectrum of the bran corresponded
to vibrations of the acetyl and uronic ester groups of
hemicelluloses or to the ester linkage of carboxylic group of the
ferulic and p-coumaric acids of lignin (Cherian et al., 2008). This
peak did not appear in the spectrum of the CT-treated nanofiber,
because the bleaching process removed most of the hemicelluloses
and lignin from the CNFs. Siqueira, Bras, and Dufresne (2010b)
attributed bands near 1730 cm1 to deformation of the C]O
groups of xylan, the main component of hemicelluloses. The
absence of this band in the spectrum of the ET-treated nanofibers
confirmed that xylanase acted on the sample during ET.
Fig. 6 evidences that the bleaching (CT) and alkaline treatment
(ET) steps removed most of the lignin from the CNFs: the bands at
1525 cm1 (aromatic ring vibration) and 761 cm1 (CeH strains)
disappeared after these pretreatments (Zuluaga et al., 2009).
The shoulder that appeared in the spectrum of the CT-treated
CNFs at 1635 cm1 was associated with adsorbed water; it could
also reveal that conjugated carbonyl groups either existed in the
polyphenolic structure of lignin or resulted from carbohydrate
oxidation (Hassan et al., 2010).
The spectrum of the bran also exhibited a large band in the
1600e1500 cm1 region, due to conjugated aromatic rings and
carbonyl groups present in the polyphenolic structure of lignin
(Hassan et al., 2010). Only very weak peaks emerged in this region
of the spectrum of the CT-treated CNFs, confirming substrate
delignification. Nevertheless, the ET-treated CNFs presented a peak
in this region, at 1574 cm1, which attested that the sample contained
lignin residues; i.e., ET did not remove lignin completely.
Some authors have reported that vibrations around 2850 cm1
corresponded to OeH stretching of the waxes and lignin (Xu, Sun,
Sun, Fowler, & Baird, 2006; Zuluaga et al., 2009). Therefore, the
peak at 2855 cm1 corroborated that lignin did remain in the ETtreated
lignin sample.
Probably, the band at 1102 cm1 in CNFs spectra was associated
with changes in hydrogen bonds, suggesting transition from cellulose
I to cellulose II (Zuluaga et al., 2009). The peak that emerged
in the region of 1034 cm1 in all the spectra was ascribed toxyloglucans fractions associated with non-hydrolyzed hemicelluloses
strongly bound within the cellulose microfibrils (Viikari,
Kantelinen, Sundquist, & Linko, 1994; Zuluaga et al., 2009).
The peak at 888 cm1 in the spectra of the CNFs samples and
absent from the spectrum of the bran referred to typical cellulose
structures, as reported by Alemdar and Sain (2008). Meanwhile, the
band at 840 cm1 in the spectrum of the bran corresponded to aromatic
ring CeH groups in the lignin (Marcovich, Reboredo, &
Aranguren, 1996). This band did not exist in the spectrum of the
CNFs samples, confirming lignin removal. These results allowed to
state that both CT and ET effectively removed the amorphous components
from the structure of the bran and permitted CNFs isolation.
0/5000
3.7 การแปลงฟูรีเยกอินฟราเรด (FTIR)รหัสของกลุ่ม functional อยู่ช่วยวิเคราะห์ FTIRในตัวอย่าง และวิธีการเปิดเผยส่วนประกอบและโครงสร้างของเส้นใยกล้วยที่เปลี่ยนแปลงไปตามการรักษา Fig. 6ประกอบด้วยสเปคตรัม FTIR รำเปลือกกล้วยและ CNFsวงดนตรีขนาดใหญ่ดูดซึมในภูมิภาคของ 3650e3000 ซม. 1เรียกว่ากลุ่ม eOH และแสดง hydrophilicity ของเส้นใยธรรมชาติ (รำ) และรับ CT และ ET CNFs สูงสุดที่3337 ซม. 1 corresponded การ eOH ยืด วงดนตรีนี้ไม่เกี่ยวข้องการพันธบัตรไฮโดรเจน intramolecular เฉพาะของเซลลูโลส II (ยาง ย่านเฉิน Lee, & เจิ้ง 2007 Zuluaga et al., 2009) รำแสดงวงดนตรีขนาดเล็กในภูมิภาค 2920 ซม. 1 ของการยืดสั่นสะเทือนของพันธบัตร CeH hemicelluloses และเซลลูโลส นี้สูงสุดเป็นรุนแรงมากขึ้นในแรมสเป็คตราของ CNFs บำบัดตัวอย่างการวงดนตรีที่สัมพันธ์กับเซลลูโลสได้รุนแรงมากขึ้นในการแรมสเป็คตราการบำบัดของตัวอย่าง เนื่องจากออกเมนต์ lignin กำจัดของพวกเขาเนื้อหาเป็นผลึก แน่นอน ยอดกับเซลลูโลส CeHยืดในภูมิภาค 1400e1300 ซม. 1 กลุ่มได้มากขึ้นเข้มข้นในตัวอย่างการบำบัดเมื่อเทียบกับการรำไหล่ที่ 1731 ซม. 1 สเปกตรัมของรำที่ correspondedการสั่นสะเทือนของ acetyl และ uronic เอสกลุ่มของhemicelluloses หรือเชื่อมโยงเอสกลุ่ม carboxylicp-coumaric และ ferulic กรดของ lignin (เชน et al., 2008) นี้สูงสุดไม่ปรากฏในสเปกตรัมของ nanofiber ถือว่า CTเนื่องจากกระบวนการฟอกสีออกทั้ง hemicellulosesและ lignin CNFs Siqueira ยกทรง และ Dufresne (2010b)บันทึกวงใกล้ 1730 ซม. 1 แมพของ C] Oกลุ่ม xylan องค์ประกอบหลักของ hemicelluloses ที่การขาดงานของวงนี้ในที่ของ nanofibers ถือว่า ETยืนยันว่า ได้ปฏิบัติตามตัวอย่างในระหว่าง ET ไซลาเนสFig. 6 evidences ที่ฟอกสี (CT) และรักษาด่างขั้นตอน (ET) เอาทั้ง lignin ที่จาก CNFs: วงที่1525 ซม. 1 (แหวนหอมสั่นสะเทือน) และ 1 (สายพันธุ์ CeH) 761 ซม.หายไปหลังจากนี้ pretreatments (Zuluaga et al., 2009)ไหล่ที่ปรากฏในสเปกตรัมของการ CT-รักษาCNFs ที่ 1635 ซม 1 เกี่ยวข้องกับน้ำ adsorbed มันสามารถยัง ค่อย ๆ ที่กลวง carbonyl กลุ่มอย่างใดอย่างหนึ่งอยู่ในโครงสร้าง lignin polyphenolic หรือเป็นผลมาจากคาร์โบไฮเดรตออกซิเดชัน (Hassan et al., 2010)สเปกตรัมของการรำยังจัดแสดงวงดนตรีขนาดใหญ่ในการ1600e1500 ซม. 1 ภาค เนื่องจากแหวนกลวงหอม และกลุ่ม carbonyl อยู่ในโครงสร้าง polyphenolic lignin(Hassan et al., 2010) เฉพาะ ยอดอ่อนมากเกิดในภูมิภาคนี้ของสเปกตรัมของการรักษา CT CNFs ยืนยันพื้นผิวdelignification อย่างไรก็ตาม CNFs ถือว่า ET แสดงสูงสุดในภาคนี้ ที่ 1574 ซม 1 ซึ่งรับรองว่า ประกอบด้วยตัวอย่างlignin ตก เช่น ET ไม่ลบ lignin อย่างสมบูรณ์ผู้เขียนบางคนรายงานว่า สั่นสะเทือนประมาณ 2850 ซม. 1corresponded การยืด OeH ไขและ lignin (Xu ดวงอาทิตย์ดวงอาทิตย์ ฟาวเลอร์ & Baird, 2006 Zuluaga et al., 2009) ดังนั้น การสูงสุดที่ 2855 ซม 1 corroborated ที่ lignin ไม่ได้อยู่ใน ETtreatedlignin อย่างคง วงดนตรีที่ 1102 ซม. 1 แรมสเป็คตรา CNFs เกี่ยวข้องมีการเปลี่ยนแปลงในพันธบัตรไฮโดรเจน แนะนำเปลี่ยนจากเซลลูโลสฉันกับเซลลูโลส II (Zuluaga et al., 2009) ช่วงที่เกิดในภูมิภาคของ 1034 ซม. 1 ในแรมสเป็คตราทั้งหมดถูกเศษ ascribed toxyloglucans ที่เกี่ยวข้องกับไม่ใช่ hydrolyzed hemicellulosesขอผูกภายใน microfibrils เซลลูโลส (ViikariKantelinen, Sundquist, & Linko, 1994 Zuluaga et al., 2009)สูงสุดที่ 1 ซม. 888 ในแรมสเป็คตราอย่าง CNFs และขาดจากสเปกตรัมของรำที่เรียกว่าเซลลูโลสโดยทั่วไปโครงสร้าง ตามที่รายงาน โดย Alemdar และ Sain (2008) ในขณะเดียวกัน การวงที่ 840 ซม. 1 รำที่ corresponded การหอมแหวน CeH lignin ในกลุ่ม (Marcovich, Reboredo, &Aranguren, 1996) วงนี้ไม่มีอยู่ในสเปคตรัมของการอย่าง CNFs ยืนยันลบ lignin ผลลัพธ์เหล่านี้สามารถสถานะที่ CT และ ET มีประสิทธิภาพลบส่วนประกอบไปจากโครงสร้างของรำและอนุญาต CNFs แยก
การแปล กรุณารอสักครู่..
3.7. Fourier-transform infrared spectroscopy (FTIR)
FTIR analysis aided identification of the functional groups present
in the samples and revealed how the composition and structure
of the banana fibers changed along the treatments. Fig. 6
contains the FTIR spectrum of the banana peel bran and CNFs.
The large absorption band in the region of 3650e3000 cm1
referred to eOH groups and represented the hydrophilicity of the
natural fibers (bran) and CT- and ET-treated CNFs. The peak at
3337 cm1 corresponded to eOH stretching; this band was related
to specific intramolecular hydrogen bonds of cellulose II (Yang, Yan,
Chen, Lee, & Zheng, 2007; Zuluaga et al., 2009). The bran displayed
a small band in the region of 2920 cm1, typical of the stretching
vibrations of the CeH bonds in hemicelluloses and cellulose. This
peak became more intense in the spectra of the treated CNFs
samples.
The bands relative to cellulose were more intense in the spectra
of the treated samples, because lignin removal augmented their
crystalline content. Indeed, the peaks assigned to the cellulose CeH
groups stretching in the 1400e1300 cm1 region were more
intense in the treated samples as compared with the bran.
The shoulder at 1731 cm1 in the spectrum of the bran corresponded
to vibrations of the acetyl and uronic ester groups of
hemicelluloses or to the ester linkage of carboxylic group of the
ferulic and p-coumaric acids of lignin (Cherian et al., 2008). This
peak did not appear in the spectrum of the CT-treated nanofiber,
because the bleaching process removed most of the hemicelluloses
and lignin from the CNFs. Siqueira, Bras, and Dufresne (2010b)
attributed bands near 1730 cm1 to deformation of the C]O
groups of xylan, the main component of hemicelluloses. The
absence of this band in the spectrum of the ET-treated nanofibers
confirmed that xylanase acted on the sample during ET.
Fig. 6 evidences that the bleaching (CT) and alkaline treatment
(ET) steps removed most of the lignin from the CNFs: the bands at
1525 cm1 (aromatic ring vibration) and 761 cm1 (CeH strains)
disappeared after these pretreatments (Zuluaga et al., 2009).
The shoulder that appeared in the spectrum of the CT-treated
CNFs at 1635 cm1 was associated with adsorbed water; it could
also reveal that conjugated carbonyl groups either existed in the
polyphenolic structure of lignin or resulted from carbohydrate
oxidation (Hassan et al., 2010).
The spectrum of the bran also exhibited a large band in the
1600e1500 cm1 region, due to conjugated aromatic rings and
carbonyl groups present in the polyphenolic structure of lignin
(Hassan et al., 2010). Only very weak peaks emerged in this region
of the spectrum of the CT-treated CNFs, confirming substrate
delignification. Nevertheless, the ET-treated CNFs presented a peak
in this region, at 1574 cm1, which attested that the sample contained
lignin residues; i.e., ET did not remove lignin completely.
Some authors have reported that vibrations around 2850 cm1
corresponded to OeH stretching of the waxes and lignin (Xu, Sun,
Sun, Fowler, & Baird, 2006; Zuluaga et al., 2009). Therefore, the
peak at 2855 cm1 corroborated that lignin did remain in the ETtreated
lignin sample.
Probably, the band at 1102 cm1 in CNFs spectra was associated
with changes in hydrogen bonds, suggesting transition from cellulose
I to cellulose II (Zuluaga et al., 2009). The peak that emerged
in the region of 1034 cm1 in all the spectra was ascribed toxyloglucans fractions associated with non-hydrolyzed hemicelluloses
strongly bound within the cellulose microfibrils (Viikari,
Kantelinen, Sundquist, & Linko, 1994; Zuluaga et al., 2009).
The peak at 888 cm1 in the spectra of the CNFs samples and
absent from the spectrum of the bran referred to typical cellulose
structures, as reported by Alemdar and Sain (2008). Meanwhile, the
band at 840 cm1 in the spectrum of the bran corresponded to aromatic
ring CeH groups in the lignin (Marcovich, Reboredo, &
Aranguren, 1996). This band did not exist in the spectrum of the
CNFs samples, confirming lignin removal. These results allowed to
state that both CT and ET effectively removed the amorphous components
from the structure of the bran and permitted CNFs isolation.
FTIR analysis aided identification of the functional groups present
in the samples and revealed how the composition and structure
of the banana fibers changed along the treatments. Fig. 6
contains the FTIR spectrum of the banana peel bran and CNFs.
The large absorption band in the region of 3650e3000 cm1
referred to eOH groups and represented the hydrophilicity of the
natural fibers (bran) and CT- and ET-treated CNFs. The peak at
3337 cm1 corresponded to eOH stretching; this band was related
to specific intramolecular hydrogen bonds of cellulose II (Yang, Yan,
Chen, Lee, & Zheng, 2007; Zuluaga et al., 2009). The bran displayed
a small band in the region of 2920 cm1, typical of the stretching
vibrations of the CeH bonds in hemicelluloses and cellulose. This
peak became more intense in the spectra of the treated CNFs
samples.
The bands relative to cellulose were more intense in the spectra
of the treated samples, because lignin removal augmented their
crystalline content. Indeed, the peaks assigned to the cellulose CeH
groups stretching in the 1400e1300 cm1 region were more
intense in the treated samples as compared with the bran.
The shoulder at 1731 cm1 in the spectrum of the bran corresponded
to vibrations of the acetyl and uronic ester groups of
hemicelluloses or to the ester linkage of carboxylic group of the
ferulic and p-coumaric acids of lignin (Cherian et al., 2008). This
peak did not appear in the spectrum of the CT-treated nanofiber,
because the bleaching process removed most of the hemicelluloses
and lignin from the CNFs. Siqueira, Bras, and Dufresne (2010b)
attributed bands near 1730 cm1 to deformation of the C]O
groups of xylan, the main component of hemicelluloses. The
absence of this band in the spectrum of the ET-treated nanofibers
confirmed that xylanase acted on the sample during ET.
Fig. 6 evidences that the bleaching (CT) and alkaline treatment
(ET) steps removed most of the lignin from the CNFs: the bands at
1525 cm1 (aromatic ring vibration) and 761 cm1 (CeH strains)
disappeared after these pretreatments (Zuluaga et al., 2009).
The shoulder that appeared in the spectrum of the CT-treated
CNFs at 1635 cm1 was associated with adsorbed water; it could
also reveal that conjugated carbonyl groups either existed in the
polyphenolic structure of lignin or resulted from carbohydrate
oxidation (Hassan et al., 2010).
The spectrum of the bran also exhibited a large band in the
1600e1500 cm1 region, due to conjugated aromatic rings and
carbonyl groups present in the polyphenolic structure of lignin
(Hassan et al., 2010). Only very weak peaks emerged in this region
of the spectrum of the CT-treated CNFs, confirming substrate
delignification. Nevertheless, the ET-treated CNFs presented a peak
in this region, at 1574 cm1, which attested that the sample contained
lignin residues; i.e., ET did not remove lignin completely.
Some authors have reported that vibrations around 2850 cm1
corresponded to OeH stretching of the waxes and lignin (Xu, Sun,
Sun, Fowler, & Baird, 2006; Zuluaga et al., 2009). Therefore, the
peak at 2855 cm1 corroborated that lignin did remain in the ETtreated
lignin sample.
Probably, the band at 1102 cm1 in CNFs spectra was associated
with changes in hydrogen bonds, suggesting transition from cellulose
I to cellulose II (Zuluaga et al., 2009). The peak that emerged
in the region of 1034 cm1 in all the spectra was ascribed toxyloglucans fractions associated with non-hydrolyzed hemicelluloses
strongly bound within the cellulose microfibrils (Viikari,
Kantelinen, Sundquist, & Linko, 1994; Zuluaga et al., 2009).
The peak at 888 cm1 in the spectra of the CNFs samples and
absent from the spectrum of the bran referred to typical cellulose
structures, as reported by Alemdar and Sain (2008). Meanwhile, the
band at 840 cm1 in the spectrum of the bran corresponded to aromatic
ring CeH groups in the lignin (Marcovich, Reboredo, &
Aranguren, 1996). This band did not exist in the spectrum of the
CNFs samples, confirming lignin removal. These results allowed to
state that both CT and ET effectively removed the amorphous components
from the structure of the bran and permitted CNFs isolation.
การแปล กรุณารอสักครู่..
3.7 ฟูเรียร์ทรานฟอร์มอินฟราเรดสเปกโทรสโกปี ( FTIR )
( ช่วยวิเคราะห์การวิเคราะห์หมู่ฟังก์ชันปัจจุบัน
ในตัวอย่าง และพบว่าองค์ประกอบและโครงสร้างของเส้นใยกล้วย
เปลี่ยนแนวการรักษา ภาพที่ 6
ประกอบด้วย FTIR สเปกตรัมของเปลือกกล้วยน้ำมันรำข้าวและ cnfs .
วงดูดขนาดใหญ่ในภูมิภาค 1
3650e3000 ซม.เรียกว่ากลุ่ม EOH และแทน hydrophilicity ของ
ใยธรรมชาติ ( รำข้าว ) และ CT - และรักษา cnfs . จุดสูงสุดที่
3337 ซม. 1 ตรงกับ EOH ยืด ; วงนี้เกี่ยวข้องกับ
เฉพาะ intramolecular พันธะไฮโดรเจนของเซลลูโลส II ( หยาง เหยียน ,
เฉิน ลี &เจิ้ง , 2007 ; zuluaga et al . , 2009 ) จมูกข้าวแสดง
วงดนตรีขนาดเล็ก ในพื้นที่ของ 2920 ซม. 1 , โดยทั่วไปของการยืด
การสั่นสะเทือนของเดนมาร์กและพันธบัตรใน hemicelluloses เซลลูโลส ยอดเขานี้
กลายเป็นที่รุนแรงมากขึ้นในช่วงของการรักษา cnfs
ตัวอย่าง วงญาติเซลลูโลสเป็นรุนแรงมากขึ้นในสเปกตรัม
ของตัวอย่างได้รับการรักษา เพราะการกำจัดลิกนินเติมปริมาณผลึกของพวกเขา
แน่นอน , ยอดมอบหมายให้เซลลูโลสชี่
กลุ่มยืดใน 1400e1300 ซม. 1 เขต (
เข้มข้นในการปฏิบัติตัวอย่างเปรียบเทียบกับรำข้าว
ไหล่ที่ 1731 ซม. 1 ในสเปกตรัมของการรำของการสั่นของอะ
hemicelluloses ของหมู่เอสเทอร์และ uronic หรือการเชื่อมโยงของกลุ่มคาร์บอกซิลิกเอสเทอร์ของกรดเฟอรูลิก p-coumaric
และลิกนิน ( เชอเรียน et al . , 2008 ) . ยอดเขานี้
ไม่ปรากฏในสเปกตรัมของ CT ถือว่านาโนไฟเบอร์
,เพราะกระบวนการฟอกออกส่วนใหญ่ของ hemicelluloses
และลิกนิน จาก cnfs . siqueira , ยกทรงและเดอเฟรน ( 2010b )
ประกอบวงใกล้ 1730 ซม. 1 แมพของ C ] O
กลุ่มไซ ส่วนประกอบหลักของ hemicelluloses .
ไม่มีวงนี้อยู่ในสเปกตรัมของ ET รักษาเส้นใย
ยืนยันว่าเนสทำตัวอย่างในระหว่าง
รูป .6 หลักฐานที่ฟอกขาว ( CT ) และการรักษาด่าง
( ET ) ขั้นตอนลบส่วนใหญ่ของลิกนิน จาก cnfs : วงดนตรีที่
เดือนซม. 1 ( การสั่นสะเทือนแหวนหอม ) และคุณซม. 1 ( เชอะ ~ )
หายไปหลังจากการเตเหล่านี้ ( zuluaga et al . , 2009 ) .
ไหล่ ที่ปรากฏในสเปกตรัมของ CT ปฏิบัติ
cnfs ที่เป็นเซนติเมตร 1 ได้เกี่ยวข้องกับการดูดซับน้ำ ; มันอาจ
ยังเผยว่า และคาร์บอนิลกลุ่มให้อยู่ในโครงสร้างของลิกนินพร
( หรือเป็นผลจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน คาร์โบไฮเดรต ฮัสซาน et al . , 2010 ) .
สเปกตรัมของรำข้าวยังจัดแสดงวงดนตรีขนาดใหญ่ใน
1600e1500 ซม. 1 เขต เนื่องจากผลิตภัณฑ์และแหวนหอม
กลุ่มคาร์บอนิล ปัจจุบันโครงสร้างพรของลิกนิน
( Hassan et al . , 2010 )เฉพาะยอดอ่อนมากเกิดขึ้นในภูมิภาคนี้
ของสเปกตรัมของ CT ถือว่า cnfs ยืนยันใช้พื้นผิว
. อย่างไรก็ตาม การเสนอและ cnfs สูงสุด
ในภูมิภาคนี้ที่ 23 ซม. 1 ซึ่งพิสูจน์ได้ว่าตัวอย่างที่มีอยู่
ปริมาณตกค้าง เช่น และ ไม่ได้เอาน้ำอย่างสมบูรณ์
บางคนเขียนได้รายงานว่า แรงสั่นสะเทือนรอบ 2850 ซม. 1
โอ้ววว สอดคล้องกับการยืดของขี้ผึ้งและลิกนิน ( Xu , อาทิตย์ ,
Sun , ฟาวเลอร์ & Baird , 2006 ; zuluaga et al . , 2009 ) ดังนั้น ,
สูงสุดที่แฟลชซม. 1 ยืนยันที่ลิกนินทำอยู่
ettreated ลิกนิน ตัวอย่าง อาจ วงดนตรีที่ 1102 ซม. 1 ใน cnfs นี้เกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงในพันธะไฮโดรเจน
,
ฉันไปแนะนำการเปลี่ยนจากเซลลูโลสเซลลูโลส II ( zuluaga et al . , 2009 )ยอดเขาที่โผล่ออกมา
ในภูมิภาคของ 1034 ซม. 1 ในสเปกตรัมทั้งหมดถูก ascribed toxyloglucans เศษส่วนที่เกี่ยวข้องกับปลอดจาก hemicelluloses
ขอผูกพันภายในเซลลูโลสไมโครไฟบริล ( viikari
kantelinen &ซันด์ควิสต์ , , , linko , 1994 ; zuluaga et al . , 2009 ) .
จุดสูงสุดที่ 888 ซม. 1 ใน สเปกตรัมของ cnfs
ตัวอย่างและขาดจากสเปกตรัมของรำข้าวที่อ้างถึงโครงสร้างเซลลูโลส
ทั่วไป รายงานโดย alemdar และเซน ( 2008 ) โดย
วงดนตรีที่ 840 ซม. 1 ในสเปกตรัมของรำข้าวหอม
ตรงกับแหวนแห่งในกลุ่มลิกนิน ( marcovich &เรโบเรโด , ,
aranguren , 1996 ) วงนี้ไม่ได้อยู่ในสเปกตรัมของ
cnfs ตัวอย่างยืนยันการกำจัดลิกนิน ผลลัพธ์เหล่านี้ได้รับอนุญาตให้
สภาพที่ทั้ง CT และและมีประสิทธิภาพลบ
ส่วนประกอบไปจากโครงสร้างของรำข้าว และได้รับอนุญาต cnfs แยก
( ช่วยวิเคราะห์การวิเคราะห์หมู่ฟังก์ชันปัจจุบัน
ในตัวอย่าง และพบว่าองค์ประกอบและโครงสร้างของเส้นใยกล้วย
เปลี่ยนแนวการรักษา ภาพที่ 6
ประกอบด้วย FTIR สเปกตรัมของเปลือกกล้วยน้ำมันรำข้าวและ cnfs .
วงดูดขนาดใหญ่ในภูมิภาค 1
3650e3000 ซม.เรียกว่ากลุ่ม EOH และแทน hydrophilicity ของ
ใยธรรมชาติ ( รำข้าว ) และ CT - และรักษา cnfs . จุดสูงสุดที่
3337 ซม. 1 ตรงกับ EOH ยืด ; วงนี้เกี่ยวข้องกับ
เฉพาะ intramolecular พันธะไฮโดรเจนของเซลลูโลส II ( หยาง เหยียน ,
เฉิน ลี &เจิ้ง , 2007 ; zuluaga et al . , 2009 ) จมูกข้าวแสดง
วงดนตรีขนาดเล็ก ในพื้นที่ของ 2920 ซม. 1 , โดยทั่วไปของการยืด
การสั่นสะเทือนของเดนมาร์กและพันธบัตรใน hemicelluloses เซลลูโลส ยอดเขานี้
กลายเป็นที่รุนแรงมากขึ้นในช่วงของการรักษา cnfs
ตัวอย่าง วงญาติเซลลูโลสเป็นรุนแรงมากขึ้นในสเปกตรัม
ของตัวอย่างได้รับการรักษา เพราะการกำจัดลิกนินเติมปริมาณผลึกของพวกเขา
แน่นอน , ยอดมอบหมายให้เซลลูโลสชี่
กลุ่มยืดใน 1400e1300 ซม. 1 เขต (
เข้มข้นในการปฏิบัติตัวอย่างเปรียบเทียบกับรำข้าว
ไหล่ที่ 1731 ซม. 1 ในสเปกตรัมของการรำของการสั่นของอะ
hemicelluloses ของหมู่เอสเทอร์และ uronic หรือการเชื่อมโยงของกลุ่มคาร์บอกซิลิกเอสเทอร์ของกรดเฟอรูลิก p-coumaric
และลิกนิน ( เชอเรียน et al . , 2008 ) . ยอดเขานี้
ไม่ปรากฏในสเปกตรัมของ CT ถือว่านาโนไฟเบอร์
,เพราะกระบวนการฟอกออกส่วนใหญ่ของ hemicelluloses
และลิกนิน จาก cnfs . siqueira , ยกทรงและเดอเฟรน ( 2010b )
ประกอบวงใกล้ 1730 ซม. 1 แมพของ C ] O
กลุ่มไซ ส่วนประกอบหลักของ hemicelluloses .
ไม่มีวงนี้อยู่ในสเปกตรัมของ ET รักษาเส้นใย
ยืนยันว่าเนสทำตัวอย่างในระหว่าง
รูป .6 หลักฐานที่ฟอกขาว ( CT ) และการรักษาด่าง
( ET ) ขั้นตอนลบส่วนใหญ่ของลิกนิน จาก cnfs : วงดนตรีที่
เดือนซม. 1 ( การสั่นสะเทือนแหวนหอม ) และคุณซม. 1 ( เชอะ ~ )
หายไปหลังจากการเตเหล่านี้ ( zuluaga et al . , 2009 ) .
ไหล่ ที่ปรากฏในสเปกตรัมของ CT ปฏิบัติ
cnfs ที่เป็นเซนติเมตร 1 ได้เกี่ยวข้องกับการดูดซับน้ำ ; มันอาจ
ยังเผยว่า และคาร์บอนิลกลุ่มให้อยู่ในโครงสร้างของลิกนินพร
( หรือเป็นผลจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน คาร์โบไฮเดรต ฮัสซาน et al . , 2010 ) .
สเปกตรัมของรำข้าวยังจัดแสดงวงดนตรีขนาดใหญ่ใน
1600e1500 ซม. 1 เขต เนื่องจากผลิตภัณฑ์และแหวนหอม
กลุ่มคาร์บอนิล ปัจจุบันโครงสร้างพรของลิกนิน
( Hassan et al . , 2010 )เฉพาะยอดอ่อนมากเกิดขึ้นในภูมิภาคนี้
ของสเปกตรัมของ CT ถือว่า cnfs ยืนยันใช้พื้นผิว
. อย่างไรก็ตาม การเสนอและ cnfs สูงสุด
ในภูมิภาคนี้ที่ 23 ซม. 1 ซึ่งพิสูจน์ได้ว่าตัวอย่างที่มีอยู่
ปริมาณตกค้าง เช่น และ ไม่ได้เอาน้ำอย่างสมบูรณ์
บางคนเขียนได้รายงานว่า แรงสั่นสะเทือนรอบ 2850 ซม. 1
โอ้ววว สอดคล้องกับการยืดของขี้ผึ้งและลิกนิน ( Xu , อาทิตย์ ,
Sun , ฟาวเลอร์ & Baird , 2006 ; zuluaga et al . , 2009 ) ดังนั้น ,
สูงสุดที่แฟลชซม. 1 ยืนยันที่ลิกนินทำอยู่
ettreated ลิกนิน ตัวอย่าง อาจ วงดนตรีที่ 1102 ซม. 1 ใน cnfs นี้เกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงในพันธะไฮโดรเจน
,
ฉันไปแนะนำการเปลี่ยนจากเซลลูโลสเซลลูโลส II ( zuluaga et al . , 2009 )ยอดเขาที่โผล่ออกมา
ในภูมิภาคของ 1034 ซม. 1 ในสเปกตรัมทั้งหมดถูก ascribed toxyloglucans เศษส่วนที่เกี่ยวข้องกับปลอดจาก hemicelluloses
ขอผูกพันภายในเซลลูโลสไมโครไฟบริล ( viikari
kantelinen &ซันด์ควิสต์ , , , linko , 1994 ; zuluaga et al . , 2009 ) .
จุดสูงสุดที่ 888 ซม. 1 ใน สเปกตรัมของ cnfs
ตัวอย่างและขาดจากสเปกตรัมของรำข้าวที่อ้างถึงโครงสร้างเซลลูโลส
ทั่วไป รายงานโดย alemdar และเซน ( 2008 ) โดย
วงดนตรีที่ 840 ซม. 1 ในสเปกตรัมของรำข้าวหอม
ตรงกับแหวนแห่งในกลุ่มลิกนิน ( marcovich &เรโบเรโด , ,
aranguren , 1996 ) วงนี้ไม่ได้อยู่ในสเปกตรัมของ
cnfs ตัวอย่างยืนยันการกำจัดลิกนิน ผลลัพธ์เหล่านี้ได้รับอนุญาตให้
สภาพที่ทั้ง CT และและมีประสิทธิภาพลบ
ส่วนประกอบไปจากโครงสร้างของรำข้าว และได้รับอนุญาต cnfs แยก
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- situer dans l'espace
- พืช
- ทำยังไงดี
- Up to you, if I am not honest with you,
- ไม่ค่อยเก่ง
- วันเกิดคุณจริงๆไม่ใช่วันนี้
- วันนี้วางแผนพาลูกสาวไปเที่ยวไหน
- สุข สดใส นอนหลับฝันดีมีความสุขในทุกๆวันค
- ตอนนี้ฉันนั่งอยู่เฉยๆ
- ฉันไม่ค่อยสบาย
- 一起走。
- ถึงแม่ว่าแกรมม่าจะผิดก็ตาม
- มาร์คบำรุงผิวกาย
- อัสสลามมุอะลัยกุม
- due to
- Oil palm fruit was treated with enzymes
- Carlos is either the world's richest or
- Sculpture pig grind we fermented them in
- ช่างกลึง
- มีสีสัน
- วันนี้วางแผนจะพาลูกสาวทั้งสองไปเที่ยวไหน
- อีกอย่างฉันไม่ค่อยว่าง
- EPPM and willingness to respond: the rol
- I being unreasonable.so confused my Skyp
