Several studies have demonstrated t

Several studies have demonstrated the induction of resistance in rice against various diseases following
treatment with antagonistic rhizobacteria, non-pathogens and avirulent pathogens. Vidhyasekaran et
al. (2001) demonstrated that pretreatment of rice leaves with P. fluorescens induced resistance against
Xanthomonas oryzae pv. oryzae. Manandhar et al. (1998) reported that pretreatment of rice leaves with
avirulent isolates of Pyricularia oryzae and the non-rice pathogen Bipolaris sorokiniana induced a
significant level of resistance against subsequent attack by virulent isolates of P. oryzae. Someya et al.
(2002) demonstrated that treatment of rice roots with Serratia marcescens strain B2, 3 days before
pathogen inoculation induced resistance in rice against Pyricularia oryzae. Our results indicate that
foliar application of B. subtilis significantly reduced the sheath blight disease severity and increased the
plant biomass (Table 1).Compared with control plants, foliar application of B. subtilis reduced thesheath blight severity up to 40 %. Survival of the applied antagonistic organisms on the plant surface is
required for as long as possible for effective control of plant pathogens (Helbig 2001). Therefore, the
phyllosphere population of B. subtilis was monitored at different time intervals after application. Our results
indicate that B. subtilis could survive well on the leaf surface of rice and was still present after 30 days of
application (Table 2).
Several studies have suggested that B. subtilis can enhance plant growth and yield in various crops. As
seed treatment, B. subtilis strain A13 increased the yield of carrot by 48 %, oats by 33 % and peanuts
up to 37 % (Merriman et al. 1974) and potato up to 16 % (Schmiedeknecht et al. 1998). Studies on
the mode of action of B. subtilis have shown that the increase in crop growth is due to release of bacterial
metabolites that can function as precursors of auxin (indole-3-pyruvic acid) or as inducers (G3
fraction) of auxin synthesis (Bochow et al. 1996). The observed increase in plant biomass in B. subtilistreated
rice plants (Table 1) might be due to the release of such growth regulators by B. subtilis.
It is well known that many antagonistic rhizobacteria can induce resistance in plants against diverse
pathogens (van Loon et al. 1998), a phenomenon known as ‘induced systemic resistance’ (ISR)
(Hammerschmidt 1999). It has been reported that for expression of ISR, a time interval of 2 days
between application of antagonistic bacteria to plants and pathogen inoculation was necessary (Leeman
et al. 1995). Several studies indicated that the induction of biochemical defense mechanisms including
activation of phenylpropanoid metabolism, synthesis and accumulation of pathogenesis-related (PR)
proteins and lignification in plants is associated with ISR (Meena et al. 2000; Heil and Bostock
2002; Ramamoorthy et al. 2002). The level of accumulation of products or the speed of the induction
of these defense genes in a host plant is correlated with the degree of its disease resistance (Lawrence
et al. 1996). PAL is the first enzyme of phenylpropanoid metabolism in higher plants and has been suggested
to play an important role in the accumulation of phenolics (Massala et al. 1980). PAL catalyzes the
conversion of phenylalanine to trans-cinnamic acid which supplies the precursors for flavonoid pig-

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

หลายการศึกษาได้แสดงให้เห็นการเหนี่ยวนำต้านทานข้าวป้องกันโรคต่าง ๆ ต่อไปนี้การรักษา ด้วย rhizobacteria ปรปักษ์ ปลอดเชื้อโรค และเชื้อโรค avirulent Vidhyasekaran ร้อยเอ็ดal. (2001) แสดงให้เห็นว่าปรับสภาพของใบข้าวกับ P. fluorescens เหนี่ยวนำต้านทดสอบพันธุ์อ้อย oryzae pv oryzae นานดา et al. (1998) รายงานที่ปรับสภาพของใบข้าวแยก avirulent Pyricularia oryzae และเชื้อโรคไม่ใช่ข้าวที่ Bipolaris sorokiniana เกิดการระดับนัยสำคัญของความต้านทานการโจมตีโดยแยก virulent ของ P. oryzae Someya et al(2002) แสดงให้เห็นว่าการรักษารากข้าวกับ Serratia marcescens สายพันธุ์ B2, 3 วันก่อนเชื้อโรค inoculation เกิดต้านทานข้าวกับ Pyricularia oryzae ผลลัพธ์ที่บ่งชี้ว่าพ่นของ B. subtilis ลดความรุนแรงของโรคไหม้ฝัก และเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญพืชชีวมวล (ตาราง 1) เมื่อเทียบกับโรงงานควบคุม พ่นของ B. subtilis ลด thesheath ไหม้รุนแรงถึง 40% การอยู่รอดของสิ่งมีชีวิตต่อต้านที่ใช้บนพื้นผิวพืชอยู่จำนานที่สุดเพื่อการควบคุมที่มีประสิทธิภาพของเชื้อโรคพืช (Helbig 2001) ดังนั้น การประชากร phyllosphere B. subtilis ถูกตรวจสอบในช่วงเวลาต่าง ๆ หลังจากการประยุกต์ ผลของเราว่า B. subtilis สามารถอยู่รอดได้ดีบนผิวใบข้าว และยังคงมีอยู่หลังจาก 30 วันของแอพลิเคชัน (ตาราง 2)หลายการศึกษาได้แนะนำว่า B. subtilis สามารถเพิ่มการเจริญเติบโตของพืช และผลผลิตในพืชต่าง ๆ เป็นรักษาเมล็ดพันธุ์ สายพันธุ์ B. subtilis A13 เพิ่มผลแครอท 48% ข้าวโอ๊ต โดย 33% และถั่วลิสงถึง 37% (Merriman et al. 1974) และมันฝรั่งถึง 16% (Schmiedeknecht et al. 1998) การศึกษาการโหมดของการดำเนินการของ B. subtilis ได้แสดงว่า การเพิ่มการเจริญเติบโตของพืชเนื่องจากมีการปล่อยของแบคทีเรียสารที่สามารถทำงาน เป็นสารตั้งต้นของออกซิน (กรดอินโดล-3-เซ) หรือ เป็น inducers (G3ส่วนของการสังเคราะห์ออกซิน (Bochow et al. 1996) เพิ่มขึ้นจากการสังเกตในพืชชีวมวลใน B. subtilistreatedปลูกข้าว (ตารางที่ 1) อาจเป็น เพราะการปล่อยฮอร์โมนดังกล่าวโดย B. subtilisเป็นที่ทราบกันดีว่า ปรปักษ์ rhizobacteria จำนวนมากสามารถก่อให้เกิดความต้านทานในพืชกับหลากหลายเชื้อโรค (แวนลูนโชวฮา et al. 1998) เรียกว่า 'เกิดความต้านทานระบบ' (ISR)(Hammerschmidt 1999) มีรายงานว่า สำหรับนิพจน์ของ ISR ช่วงเวลาของวันที่ 2ระหว่างความเป็นปรปักษ์แบคทีเรียพืชและเชื้อโรค inoculation เป็นสิ่งจำเป็น (Leemanet al. 1995) หลายการศึกษาระบุว่า การเหนี่ยวนำของกลไกการป้องกันทางชีวเคมีรวมทั้งการทำงานของการเผาผลาญ phenylpropanoid สังเคราะห์ และสะสมของที่เกี่ยวข้องกับพยาธิกำเนิด (PR)โปรตีนและ lignification ในพืชเกี่ยวข้องกับ ISR (รวม et al. 2000 ไฮล์และ Bostock2002 Ramamoorthy et al. 2002) ระดับการสะสมของผลิตภัณฑ์หรือความเร็วของการเหนี่ยวนำของยีนเหล่านี้ป้องกันพืชโฮสต์มีความสัมพันธ์กับระดับของความต้านทานโรค (Lawrenceet al. 1996) PAL เป็นเอนไซม์แรกของการเผาผลาญ phenylpropanoid ในพืชสูง และได้รับการแนะนำการเล่นบทบาทสำคัญในการสะสม phenolics (Massala et al. 1980) PAL catalyzes การแปลงของ phenylalanine กรดทรานส์ cinnamic ซึ่งส่งสารตั้งต้นสำหรับ flavonoid หมู-

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การศึกษาหลายแห่งได้แสดงให้เห็นการเหนี่ยวนำของความต้านทานข้าวกับโรคต่าง ๆ ดังต่อไปนี้
การรักษาด้วย rhizobacteria ปฏิปักษ์เชื้อโรคที่ไม่ใช่และเชื้อโรค avirulent Vidhyasekaran et
al, (2001) แสดงให้เห็นว่าการปรับสภาพของข้าวใบกับ P. fluorescens เหนี่ยวนำให้เกิดความต้านทานต่อ
เชื้อ Xanthomonas oryzae pv oryzae Manandhar et al, (1998) รายงานว่าการปรับสภาพของข้าวใบกับ
ไอโซเลท avirulent ของ Pyricularia oryzae และเชื้อโรคที่ไม่ใช่ข้าว Bipolaris sorokiniana เหนี่ยวนำ
ระดับนัยสำคัญของความต้านทานการโจมตีที่ตามมาจากสายพันธุ์รุนแรงของ P. oryzae Someya et al.
(2002) แสดงให้เห็นว่าการรักษาของรากข้าวกับ Serratia marcescens สายพันธุ์บี 2, 3 วันก่อนที่จะ
ก่อให้เกิดโรคฉีดวัคซีนต้านทานการเหนี่ยวนำข้าวกับ Pyricularia oryzae ผลของเราแสดงให้เห็นว่า
ทางใบของ B. subtilis ลดลงอย่างมีนัยสำคัญความรุนแรงโรคกาบใบไหม้และเพิ่ม
มวลชีวภาพพืช (ตารางที่ 1) เมื่อพิจารณาเปรียบเทียบกับพืชควบคุมทางใบของ B. subtilis ลด thesheath ความรุนแรงทำลายได้ถึง 40% การอยู่รอดของสิ่งมีชีวิตที่เป็นปฏิปักษ์นำไปใช้บนพื้นผิวโรงงานจะ
ต้องให้นานที่สุดเท่าที่เป็นไปได้สำหรับการควบคุมที่มีประสิทธิภาพของเชื้อสาเหตุโรคพืช (Helbig 2001) ดังนั้น
ประชากร phyllosphere ของ B. subtilis ได้รับการตรวจสอบในช่วงเวลาที่แตกต่างกันหลังจากการประยุกต์ใช้ ผลของเรา
แสดงให้เห็นว่า B. subtilis สามารถอยู่รอดได้ดีบนผิวใบข้าวและยังคงอยู่หลังจาก 30 วันของ
การประยุกต์ใช้ (ตารางที่ 2).
การศึกษาหลายคนบอกว่า B. subtilis สามารถเพิ่มประสิทธิภาพการเจริญเติบโตของพืชและผลผลิตในพืชต่างๆ ขณะที่
การรักษาเมล็ด B. subtilis สายพันธุ์ A13 เพิ่มขึ้นของอัตราผลตอบแทนแครอท 48%, ข้าวโอ๊ต 33% และถั่วลิสง
ไม่เกิน 37% (Merriman et al. 1974) และมันฝรั่งถึง 16% (Schmiedeknecht et al. 1998) การศึกษาเกี่ยวกับ
รูปแบบของการดำเนินการของ B. subtilis ได้แสดงให้เห็นว่าการเพิ่มขึ้นในการเจริญเติบโตพืชเกิดจากการปล่อยของแบคทีเรีย
สารที่สามารถทำงานเป็นสารตั้งต้นของออกซิน (กรด indole-3-pyruvic) หรือปฏิกิริยา (G3
ส่วน) ของการสังเคราะห์ออกซิน (Bochow et al. 1996) เพิ่มขึ้นสังเกตได้ในชีวมวลพืชในบี subtilistreated
ต้นข้าว (ตารางที่ 1) อาจเนื่องมาจากการเปิดตัวของควบคุมการเจริญเติบโตดังกล่าวโดย B. subtilis ได้.
มันเป็นที่รู้จักกันดีว่าเป็นปฏิปักษ์ rhizobacteria จำนวนมากสามารถทำให้เกิดความต้านทานในพืชที่มีความหลากหลายกับ
เชื้อโรค (Van Loon et al. 1998) ปรากฏการณ์ที่เรียกว่า 'เหนี่ยวนำให้เกิดความต้านทานระบบ (ISR)
(Hammerschmidt 1999) มันได้รับรายงานว่าสำหรับการแสดงออกของ ISR, ช่วงเวลา 2 วัน
ระหว่างโปรแกรมประยุกต์ของเชื้อแบคทีเรียปฏิปักษ์กับพืชและเชื้อโรคฉีดวัคซีนเป็นสิ่งจำเป็น (Leeman
et al. 1995) งานวิจัยหลายชิ้นชี้ให้เห็นว่าการชักนำของกลไกการป้องกันทางชีวเคมีรวมทั้ง
การเปิดใช้งานของการเผาผลาญ phenylpropanoid การสังเคราะห์และการสะสมของ (PR) ทำให้เกิดโรคที่เกี่ยวข้องกับ
โปรตีนและ lignification ในพืชมีความเกี่ยวข้องกับ ISR (นา et al, 2000. Heil และสต็อค
ปี 2002 Ramamoorthy et al, . 2002) ระดับของการสะสมของผลิตภัณฑ์หรือความเร็วของการเหนี่ยวนำของ
เหล่านี้ยีนป้องกันในพืชจะมีความสัมพันธ์กับระดับของความต้านทานโรคของตน (อเรนซ์
et al. 1996) PAL เป็นเอนไซม์แรกของการเผาผลาญ phenylpropanoid ในพืชที่สูงขึ้นและได้รับการแนะนำ
ในการเล่นบทบาทสำคัญในการสะสมของฟีนอล (ที่ Massala et al. 1980) PAL กระตุ้น
การแปลงของ phenylalanine กรดทรานส์ซินนามิกซึ่งวัสดุสารตั้งต้นสำหรับ pig- flavonoid

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การศึกษาหลายแห่งได้แสดงให้เห็นถึงการต้านทานต่อโรคต่าง ๆ ต่อไปนี้ในข้าวการรักษาด้วยเชื้อไรโซแบคทีเรียและเชื้อโรคไม่ avirulent เชื้อโรค vidhyasekaran และอัล ( 2001 ) แสดงให้เห็นว่าการกระตุ้นความต้านทานโรคใบข้าว กับ พี กับXanthomonas oryzae pv . ข่าวจาก . manandhar et al . ( 2541 ) รายงานว่า ภาวะของใบข้าวด้วยavirulent ไอโซเลทของ Pyricularia oryzae และไม่ทำให้เชื้อโรค bipolaris sorokiniana ข้าวระดับความต้านทานต่อการโจมตีรุนแรงตามมา โดยเชื้อ P . oryzae . โซมียะ et al .( 2002 ) พบว่า การรักษารากข้าวกับเซอร์ราเทีย marcescens สายพันธุ์ 2 , 3 วัน ก่อนการฉีดวัคซีนกระตุ้นความต้านทานโรคในข้าวกับ Pyricularia oryzae . ผลของเราระบุว่าใบสมัครของ B . subtilis การทดลองที่กาบใบแห้ง โรค และความรุนแรงเพิ่มขึ้นชีวมวลพืช ( ตารางที่ 1 ) เมื่อเทียบกับพืชควบคุม การใช้ทางใบของ B . subtilis thesheath ไหม้ความรุนแรงลดลงถึง 40% ความอยู่รอดของสิ่งมีชีวิตบนพื้นผิวที่ใช้ปฏิปักษ์พืชคือที่จำเป็นสำหรับตราบเท่าที่เป็นไปได้สำหรับการควบคุมที่มีประสิทธิภาพของเชื้อโรคพืช ( helbig 2001 ) ดังนั้นใบประชากรของ B . subtilis ถูกตรวจสอบในช่วงเวลาที่ต่างกัน หลังจากการประยุกต์ใช้ ผลของเราพบว่า B . subtilis สามารถอยู่รอดได้ดีบนผิวใบข้าว และยัง ปัจจุบัน หลังจาก 30 วันใบสมัคร ( ตารางที่ 2 )หลายการศึกษาพบว่า B . subtilis สามารถเพิ่มการเจริญเติบโตของพืชและผลผลิตของพืชต่าง ๆ เป็นรักษาเมล็ดพันธุ์ , B . subtilis สายพันธุ์เข้มเพิ่มผลผลิตของแครอท โดย 48% , ข้าวโอ๊ต 33% และถั่วลิสงถึง 37% ( แห่งนี้ et al . 2517 ) และมันฝรั่งถึง 16 % ( schmiedeknecht et al . 1998 ) ศึกษาเกี่ยวกับโหมดของการกระทำของ B . subtilis ได้แสดงให้เห็นว่าการเพิ่มการเจริญเติบโตของพืชเนื่องจากการปล่อยเชื้อสารที่สามารถทำหน้าที่เป็นสารตั้งต้นของออกซิน ( indole-3-pyruvic acid ) หรือการใช้ ( G3เศษส่วน ) การสังเคราะห์ออกซิน ( bochow et al . 1996 ) จากการเพิ่มชีวมวลพืชใน subtilistreated Bข้าวพืช ( ตารางที่ 1 ) อาจจะเนื่องจากการปล่อยสารควบคุมการเจริญเติบโตดังกล่าวโดย B . subtilis .มันเป็นที่รู้จักกันดีว่าไรโซแบคทีเรียปฏิปักษ์จำนวนมากสามารถทำให้เกิดความต้านทานในพืชกับหลากหลายเชื้อโรค ( แวนลูน et al . 1998 ) , ปรากฏการณ์ที่เรียกว่า " การต่อต้าน " ( ISR ) ระบบ( แฮมเมอร์ชมิดต์ 1999 ) มันได้รับรายงานว่าสำหรับการแสดงออกของ ISR , เวลาพัก 2 วันการประยุกต์ใช้แบคทีเรียปฏิปักษ์ระหว่างพืชและเชื้อโรคเชื้อเป็น ( ลิเมินet al . 1995 ) หลายการศึกษาพบว่า การทำงานของกลไกการป้องกันทางชีวเคมี ได้แก่การ phenylpropanoid การเผาผลาญอาหาร , การสังเคราะห์และการสะสมของโรคที่เกี่ยวข้อง ( PR )และโปรตีนในพืชที่เกี่ยวข้องกับ lignification ISR ( Meena et al . 2000 และ bostock เฮล2002 ; ramamoorthy et al . 2002 ) ระดับของการสะสมของผลิตภัณฑ์หรือความเร็วของการชักนำของยีนที่ป้องกันเหล่านี้เป็นพืช มีความสัมพันธ์กับระดับของความต้านทานโรค ( ลอว์เรนซ์et al . 1996 ) เพื่อน คือ คนแรกของ phenylpropanoid เอนไซม์ในพืชสูงและได้รับการแนะนำที่จะมีบทบาทสำคัญในการสะสมของโพลีฟีนอล ( massala et al . 1980 ) และ พัลการเปลี่ยนแปลงของฟีนิลอะลานีนเพื่อทรานซินนามิกที่วัสดุสารฟลาโวนอยด์ - สำหรับหมู