Essential oils were diluted from th

Essential oils were diluted from the concentration
of 150.0 to 5.0mg (150.0, 100.0, 75.0, 50.0, 25.0, 10.0 and 5.0 mg) in
DMSO and a 10-l aliquot of each concentration was added on the
inner surface of the inverted lid of Petri dishes with amicropipette
giving concentrations of 15, 10, 7.5, 5.0, 2.5, 1.0 and 0.5gml−1 air.
Plates were sealed immediately with parafilm to prevent loss of
essential oils from the plates. Three replications weremadefor each
concentration. As untreated control, three Petri dishes containing
only 10-l of DMSO were used.
The treated mite-chambers were returned to the incubator set at
26 ◦C, 60–65% R.H., and a photoperiod of 16:8 (L:D) h. Mortality was
determined under a dissecting microscope 24 h after treatment.
When making observations, the location of each mite remaining
on the leaves was ascertained using the naked eye, and a binocular
light microscope then used to determine whether the mite was
alive, immobile or dead. Live mites can cling to the underside of
leaf due to the meshing of the microscopic hairs on their legs. Mites
were considered dead if appendages did not move when prodded
with a fine paintbrush. Mites were assessed at 30 min for mobility
and at 2 h for mortality, defined by lack of response to stroking with
a paintbrush. This was the maximum time during which the mites
could reasonably be kept in situ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

น้ำมันหอมระเหยที่ได้รับจากการปรับลดความเข้มข้นของการ 5.0mg 150.0 (150.0, 100.0, 75.0, 50.0, 25.0, 10.0 และ 5.0 มก.) ใน DMSO และ 10? aliquot ลิตรของความเข้มข้นของแต่ละถูกบันทึกบนผิวด้านในของฝาคว่ำอาหารเลี้ยงเชื้อที่มี amicropipette ให้ความเข้มข้น 15, 10, 7.5, 5.0, 2.5, 1.0 และ 0.5? GML-1 อากาศ. แผ่นถูกปิดผนึกทันทีด้วย parafilm เพื่อป้องกันการสูญเสียของน้ำมันหอมระเหยจากแผ่นเปลือกโลก สามซ้ำ weremadefor แต่ละความเข้มข้น ในฐานะที่ได้รับการรักษาควบคุมสามจานเลี้ยงเชื้อที่มี?. เพียง 10 ลิตร DMSO ถูกนำมาใช้รับการรักษาในห้องไรถูกส่งกลับไปยังศูนย์บ่มเพาะที่ตั้งไว้ที่26 ◦C, 60-65% RH และแสง 16: 8 (L: D) ชั่วโมง ตายถูกกำหนดภายใต้กล้องจุลทรรศน์ 24 ชั่วโมงหลังการรักษา. เมื่อการสังเกตที่ตั้งของแต่ละไรที่เหลืออยู่บนใบได้รับการตรวจสอบโดยใช้ตาเปล่าและกล้องสองตาแสงกล้องจุลทรรศน์ที่ใช้แล้วเพื่อตรวจสอบว่าไรก็ยังมีชีวิตอยู่นิ่งหรือตาย. ไรสดสามารถยึดติดกับด้านล่างของใบเนื่องจากการสอดคล้องของเส้นขนกล้องจุลทรรศน์บนขาของพวกเขา ไรได้รับการพิจารณาความตายถ้าอวัยวะไม่ได้ย้ายเมื่อแหย่ด้วยพู่กันดี ไรมีการประเมินวันที่ 30 นาทีสำหรับการเคลื่อนไหวและ2 ชั่วโมงสำหรับการตายที่กำหนดโดยขาดการตอบสนองที่จะลูบด้วยพู่กัน นี่เป็นครั้งสูงสุดในระหว่างที่ไรพอจะเก็บไว้ในแหล่งกำเนิด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

น้ํามันหอมระเหยลดจากความเข้มข้นของ 150.0
เพื่อ 5.0mg ( 150.0 100.0 , 75.0 , 50.0 , 25.0 10.0 และ 5.0 มก. )
DMSO และ 10 -  L ส่วนลงตัวของแต่ละความเข้มข้นเพิ่มบน
ผิวด้านในของฝาคว่ำจานเลี้ยงเชื้อที่มี amicropipette
ให้ความเข้มข้น 10 15 , 7.5 , 5.0 , 2.5 , 1.0 และ 0.5  GML − 1 อากาศ
แผ่นถูกปิดสนิททันทีกับพาราฟิล์มเพื่อป้องกันการสูญหาย
น้ำมันหอมระเหยจากจาน weremadefor
3 ซ้ำแต่ละความเข้มข้น ควบคุมรักษา สามจานเลี้ยงเชื้อที่มีเพียง 10 - 
L
DMSO ใช้รักษาไรห้องกลับเพื่อบ่มเพาะไว้ที่ 26 ◦
C 60 - 65% R.H . และช่วงแสง 16 : 8 ( L : D ) H .
ตัดสินใจผ่าตายภายใต้กล้องจุลทรรศน์ 24 H หลัง การรักษา .
เมื่อทำการสังเกตสถานที่ตั้งของแต่ละไรที่เหลือ
บนใบคือการใช้ตาเปล่าและกล้องจุลทรรศน์กล้องส่องทางไกล
แล้วใช้เพื่อตรวจสอบว่าไรคือ
มีชีวิต เคลื่อนไหวไม่ได้ หรือตาย ขี้อยู่สามารถยึดด้านล่างของ
ใบเนื่องจากการใหม่ของเส้นขนด้วยกล้องจุลทรรศน์ในขาของพวกเขา ไร
ถือว่าตายถ้าระยางค์ไม่ได้ย้ายเมื่อ prodded
ด้วยพู่กันค่ะขี้ครั้งที่ 30 นาทีสำหรับการเคลื่อนไหว
2 H สำหรับการตายที่กำหนดไว้ โดยขาดการชื่นชมกับ
พู่กัน นี้คือเวลาสูงสุด ในระหว่างที่ไร
มีเหตุผลที่จะถูกเก็บไว้ในแหล่งกำเนิด