2.9. Antioxidant and antimicrobial

2.9. Antioxidant and antimicrobial activity
To determine the antioxidant activity, the 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging method was used. Thesame procedure was used for pure chitosan, microcapsules andcoriander oil. Briefly, different amounts (1, 2, 3, 4 and 5 mg/ml) ofsamples were suspended in 1 ml ethanol. Briefly, different amounts(1, 2, 3, 4 and 5 mg/ml) of microcapsules were suspended in 1 mlethanol. After, centrifugation at 900 rpm for 10 min, 100 l sam-ples were taken from the supernatant and 3.9 ml DPPH was added.It was left in the dark for 24 h and absorbance was determined at517 nm.In our study we used the microorganism strains Aeromonashydrophila ATCC 7965 (Gram-negative), Escherichia coli ATCC 25922(Gram-negative), Escherichia coli O157 (Gram-negative), Kleb-siella pneumoniae FMC 5 (Gram-negative), Pseudomonas aeruginosaATCC 27853 (Gram-negative), Salmonella typhimurium NRRLE4463 (Gram-negative), Yersinia enterocolitica ATCC 1501 (Gram-negative), Bacillus cereus RSKK 863 (Gram-positive), Listeriamonocytogenes 1/2 B (Gram-positive) and Candida albicans ATCC1223 (yeast). The agar diffusion method was used for thedetermination of antimicrobial activities. Firstly, pure chitosan,microcapsules and coriander oil were dissolved in Dimethyl sul-foxide (DMSO) (10 mg/ml) and diluted with distilled water to theintended concentration. Then the agar diffusion method was usedto determine the antimicrobial activity of the chitosan encapsu-lated microcapsules for each microorganism given above. Eachmicroorganism was suspended in sterile nutrient broth. Yeast (C.albicans) was suspended in malt extract broth and each microor-ganism was diluted to ca. 106–107colony forming units (cfu)/mL.Then 250 l of each microorganism was added into a flask con-taining 25 ml sterile Mueller-Hinton agar or malt extract agar at45◦C and poured into Petri dishes (9 cm in diameter). The petridishes containing agar were left at 4◦C for 1 h. In the agar, fourequidistant holes were made using sterile cork borers and loadedwith 10 mg/ml (50 l) of the dissolved microcapsule solution. Yeast(C. albicans) was incubated at 25◦C for 24–48 h in the invertedposition. The other microorganisms were incubated at 37◦C for18–24 h. At the end of the period, all plates were examined forzones of growth inhibition, and the diameters of these zones weremeasured in millimeters. Tetracycline (10 mg ml−1) and Natamycin(30 mg ml−1), standard antibiotics, were used as positive con-trols.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.9 กิจกรรมสารต้านอนุมูลอิสระและสารต้านจุลชีพ การตรวจสอบกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระ 2.2 นไดฟีนิลได 1 picrylhydrazyl (DPPH) รุนแรง scavenging วิธีใช้ กระบวนการ Thesame ถูกใช้สำหรับเพียวไคโตซาน microcapsules andcoriander น้ำมัน สั้น ๆ ยอดเงินที่แตกต่างกัน (1, 2, 3, 4 และ 5 mg/ml) ofsamples ถูกหยุดชั่วคราวในเอทานอล 1 มิลลิลิตร สั้น ๆ ยอดเงินที่แตกต่างกัน (1, 2, 3, 4 และ 5 mg/ml) ของ microcapsules ถูกหยุดชั่วคราวใน 1 mlethanol หลัง หมุนเหวี่ยงที่ 900 rpm 10 นาที 100 l sam ples ถ่ายจาก supernatant และ 3.9 ml DPPH ถูก มันอยู่ในมืดใน 24 h และค่า กำหนด at517 nm ในการศึกษาของเรา เราใช้ของจุลินทรีย์สายพันธุ์ Aeromonashydrophila ATCC 7965 (แกรมลบ), Escherichia coli ATCC 25922(Gram-negative), Escherichia coli O157 (แกรมลบ), Kleb siella pneumoniae 5 ตัว (แกรมลบ), Pseudomonas aeruginosaATCC 27853 (แกรมลบ), Salmonella typhimurium NRRLE4463 (แกรมลบ), Yersinia enterocolitica ATCC 1501 (แกรมลบ), Bacillus cereus RSKK 863 (แบคทีเรีย), Listeriamonocytogenes 1/2 B (แบคทีเรีย) และ Candida albicans ATCC1223 (ยีสต์) วิธีการแพร่วุ้นใช้สำหรับ thedetermination กิจกรรมต้านจุลชีพ ประการแรก เพียวไคโตซาน microcapsules ผักชีน้ำมันละลายใน Dimethyl sul-foxide (DMSO) (10 mg/ml) และถูกเจือจาง ด้วยน้ำกลั่นเพื่อความเข้มข้นของ theintended แล้ววิธีการแพร่วุ้นถูก usedto กำหนดกิจกรรมการต้านจุลชีพของ microcapsules เกี่ยวข้องกน encapsu ไคโตซานสำหรับจุลินทรีย์แต่ละที่กำหนดข้างต้น Eachmicroorganism ถูกระงับในซุปอาหารที่ผ่านการฆ่าเชื้อ ยีสต์ (C.albicans) ถูกระงับในมอลต์สกัดซุป และแต่ละ microor ganism ถูกเจือจางไป ca 106 – 107colony สร้างหน่วย (cfu)/mL.Then l 250 ของจุลินทรีย์แต่ละถูกเพิ่มเข้าไปในตัวขวด con taining 25 มล.ผ่านการฆ่าเชื้อ Mueller Hinton วุ้นหรือมอลต์สารสกัดจากวุ้น at45◦C และเทลงในจานเพาะ (9 ซม.เส้นผ่านศูนย์กลาง) Petridishes ที่ประกอบด้วยวุ้นถูกทิ้งที่ 4◦C สำหรับ 1 h ในอาหารเลี้ยงเชื้อ รู fourequidistant ทำหมันคอร์ก borers และ loadedwith 10 mg/ml (50 ลิตร) โซลูชัน microcapsule ที่ละลายน้ำ ยีสต์ (C. albicans) incubated ที่ 25◦C สำหรับ 24 – 48 ชั่วโมงในการ invertedposition จุลินทรีย์อื่น ๆ ได้รับการกกที่ 37◦C for18 – 24 ชั่วโมง ในตอนท้ายของรอบระยะเวลา ทุกแผ่นถูก forzones ตรวจสอบของการยับยั้งการเจริญเติบโต และสมมาตรของ weremeasured โซนเหล่านี้ในหน่วยมิลลิเมตร เตตราไซคลีน (ml−1 10 มิลลิกรัม) และ Natamycin (ml−1 30 mg), ใช้ยาปฏิชีวนะมาตรฐาน เป็นบวกคอน-trols

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.9 ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและต้านจุลชีพ
เพื่อตรวจสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่ 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) วิธีการไล่หัวรุนแรงถูกนำมาใช้ ขั้นตอนเดิมที่ใช้สำหรับไคโตซานบริสุทธิ์แคปซูล andcoriander น้ำมัน สั้น ๆ , ปริมาณที่แตกต่างกัน (1, 2, 3, 4 และ 5 mg / ml) ofsamples ถูกระงับใน 1 มิลลิลิตรเอทานอล สั้น ๆ , ปริมาณที่แตกต่างกัน (1, 2, 3, 4 และ 5 mg / ml) ของไมโครแคปซูลที่ถูกระงับใน 1 mlethanol หลังจากการหมุนเหวี่ยงที่ 900 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที, 100 L-sam Ples ถูกพรากไปจากสารละลายและ 3.9 มล. DPPH เป็น added.It ถูกทิ้งไว้ในที่มืดเป็นเวลา 24 ชั่วโมงและการดูดกลืนแสงที่ถูกกำหนด at517 nm.In การศึกษาของเราเราใช้ สายพันธุ์จุลินทรีย์เชื้อ Aeromonas ATCC 7965 (แกรมลบ) Escherichia coli ATCC 25922 (แกรมลบ) Escherichia coli O157 (แกรมลบ) Kleb-siella pneumoniae เอฟเอ็มที่ 5 (แกรมลบ) Pseudomonas aeruginosaATCC 27853 (แกรมลบ) , Salmonella typhimurium NRRLE4463 (แกรมลบ) Yersinia enterocolitica ATCC 1501 (แกรมลบ) Bacillus cereus RSKK 863 (แกรมบวก), ลิสทิเรียโมโนไซโต จิเนส 1/2 B (แกรมบวก) และ Candida albicans ATCC1223 (ยีสต์) วิธีการแพร่กระจายของวุ้นที่ใช้สำหรับ thedetermination กิจกรรมต้านจุลชีพ ประการแรกไคโตซานบริสุทธิ์แคปซูลและน้ำมันผักชีถูกกลืนหายไปใน Dimethyl Sul-foxide (DMSO) (10 mg / ml) และเจือจางด้วยน้ำกลั่นกับความเข้มข้น theintended แล้ววิธีการแพร่กระจายวุ้นถูก usedto ตรวจสอบฤทธิ์ต้านจุลชีพของไคโตซานแคปซูล encapsu-lated สำหรับแต่ละจุลินทรีย์ดังกล่าวข้างต้น Eachmicroorganism ถูกระงับในน้ำซุปสารอาหารที่ผ่านการฆ่าเชื้อ ยีสต์ (C.albicans) ถูกระงับในมอลต์สกัดจากน้ำซุปและแต่ละ microor-ganism ถูกเจือจางไปแคลิฟอร์เนีย 106-107colony หน่วยขึ้นรูป (CFU) /mL.Then 250? L ของแต่ละจุลินทรีย์ที่ถูกเพิ่มเข้าไปในขวด Con-25 ในประเด็นมลหมัน Mueller-Hinton agar หรือมอลต์สกัดวุ้นat45◦Cและเทลงในจานเลี้ยงเชื้อ (9 ซม. ในเส้นผ่าศูนย์กลาง ) petridishes ที่มีวุ้นถูกทิ้งไว้ที่4◦Cเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในวุ้นหลุม fourequidistant ถูกสร้างขึ้นมาโดยใช้ borers หมันจุกและ loadedwith 10 mg / ml (50 ลิตร) ของการแก้ปัญหาไมโครแคปซูลละลาย ยีสต์ (ค. albicans) คือการบ่มที่25◦Cสำหรับ 24-48 ชั่วโมงใน invertedposition จุลินทรีย์อื่น ๆ ที่ถูกบ่มที่37◦C for18-24 H ในตอนท้ายของรอบระยะเวลา, จานทั้งหมดถูกตรวจสอบ forzones การยับยั้งการเจริญเติบโตและมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนเหล่านี้ weremeasured มิลลิเมตร Tetracycline (10 มิลลิกรัม ML-1) และ Natamycin (30 มิลลิกรัม ML-1), ยาปฏิชีวนะมาตรฐานถูกนำมาใช้เป็นบวก Con-ปุ่มควบคุมต่ง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.9 . ต้านอนุมูลอิสระ และต้านจุลชีพเพื่อศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ , 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl ( dpph ) เป็นตัวเร่งปฏิกิริยา วิธีใช้ กระบวนการเดียวกันคือใช้น้ำมันเพียวไคโตซาน andcoriander แคปซูล . สั้น ๆ , ปริมาณที่แตกต่างกัน ( 1 , 2 , 3 , 4 และ 5 mg / ml ) ในประเทศไทยถูกระงับใน 1 มิลลิลิตรเอทานอล สั้น ๆ , ปริมาณที่แตกต่างกัน ( 1 , 2 , 3 , 4 และ 5 mg / ml ) ของไมโครแคปซูลที่ถูกระงับใน 1 mlethanol . หลังจากปั่น 900 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที , 100 ลิตร ples สามนำมาจากน่านและ 3.9 มล. dpph ถูกเพิ่ม มันเป็นซ้ายในที่มืดเป็นเวลา 24 ชั่วโมงและค่าถูกกำหนด at517 nm . ในการศึกษาของเรา เราใช้จุลินทรีย์สายพันธุ์ aeromonashydrophila 7965 ( เชื้อแกรมลบ ) , Escherichia coli ATCC 25922 ( กรัม ลบ ) , Escherichia coli เป็นสมาชิก ( แกรมลบ ) , kleb siella ใช้ FMC 5 ( แกรมลบ ) , Pseudomonas aeruginosaatcc นำน้ำมันระเหย ( แกรมลบ ) , Salmonella Typhimurium nrrle4463 ( แกรมลบ ) , เยอซิเนีย enterocolitica ATCC 1501 ( แกรมลบ ) , Bacillus cereus rskk 863 ( กรัมบวก ) listeriamonocytogenes 1 / 2 B ( แกรมบวก ) และ Candida albicans atcc1223 ( ยีสต์ ) อาหารเลี้ยงเชื้อแพร่ได้ใช้วิธีการกำหนดกิจกรรมการ . ประการแรก เพียวไคโตซาน และแคปซูลน้ำมันผักชีถูกละลายในไดเมทิลซัล foxide ( DMSO ) ( 10 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร ) และเจือจางด้วยน้ำกลั่นเพื่อ theintended ความเข้มข้น แล้วใช้วิธีกระจายมาศึกษาฤทธิ์ต้านจุลชีพของไคโตซาน encapsu สายไมโครแคปซูลแต่ละจุลินทรีย์ดังกล่าวข้างต้น . eachmicroorganism ถูกแขวนลอยในน้ำสารอาหารที่เป็นหมัน ยีสต์ ( c.albicans ) ถูกระงับในข้าวมอลต์และน้ำซุปแยกแต่ละ microor ganism เจือจางไปประมาณ 106 – 107colony สร้างหน่วย ( CFU ) / ml.then 250 ลิตร จุลินทรีย์ถูกเพิ่มลงในแต่ละขวด 25 ml con TAINING เป็นหมัน มูลเลอร์ ฮินตัน วุ้นหรือ malt extract agar at45 ◦ C และเทลงในจานเลี้ยงเชื้อ ( 9 เซนติเมตร ) . การ petridishes ที่มีวุ้น ถูกทิ้งไว้ที่ 4 ◦ C เป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในวุ้น fourequidistant หลุมถูกสร้างโดยใช้หนอนเจาะจุกปลอดเชื้อและ loadedwith 10 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ( 50 ลิตร ) ของไมโครแคปซูล ละลายน้ำ สารละลาย ยีสต์ ( C . albicans ) คืออุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 และ 48 ชั่วโมง◦ใน invertedposition . จุลินทรีย์อื่น ๆ◦บ่มที่ 37 องศาเซลเซียส for18 – 24 ชั่วโมง ในช่วงปลายของทุกจานถูกตรวจสอบ forzones ของการยับยั้งการเจริญเติบโตและขนาดของเขตวัดในมิลลิเมตร เตตร้าไซคลิน ( 10 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร − 1 ) และนาตาไมซิน ( 30 มิลลิกรัม ml − 1 ) , ยาปฏิชีวนะมาตรฐานที่ถูกใช้เป็น trols con บวก