ผลของแหล่งอาหารแป้ง digestibility เจริญเติบโต และลักษณะคุณภาพของสุกรที่เจริญเติบโตไฮไลท์•ข้าวบาร์เลย์ ข้าว ข้าวโพด และถั่วเป็นแหล่งของแป้งได้ทดสอบในสุกร•รูปแบบของลำไส้การย่อยอาหารของแป้งแหล่งอาจมีผลต่อลักษณะการเจริญเติบโตและลึก backfat•ลักษณะพิเศษที่หายากถูกตรวจสอบคุณภาพเนื้อสัตว์บทคัดย่อข้าวบาร์เลย์ ข้าว ข้าวโพด และถั่วเป็นแหล่งของแป้งได้ทดสอบการเรียนถ้าความแตกต่างของดัชนี glycemic อาจมีผลต่อการใช้ประโยชน์อาหารสัตว์ แสดงประสิทธิภาพ และลักษณะคุณภาพสำหรับสุกรเจริญเติบโต ทดลองอาหาร 4 มีสูตรรวม 420 g แป้ง/กก. ข้าวบาร์เลย์ ข้าวข้าวบาร์เลย์/เสีย ชุดข้าวบาร์เลย์/ข้าวโพดหรือข้าวบาร์เลย์/ถั่วลันเตา (อาหารรหัส B, R, M และ P ตามลำดับ) โดย 45% ของแป้งทั้งหมดจากอาหาร R, M และ P ได้โดยหักข้าว ข้าวโพด หรือถั่ว จำแนกเครื่องมือของตัวดึงข้อมูลแสดงให้เห็นว่า เศษแป้ง digestible อย่างรวดเร็วสุดสำหรับ R (P < 0.001) และไม่แตกต่างบันทึกระหว่างอาหารอื่น ๆ ในขณะที่เศษ digestible ช้าได้สูงกว่า B และ M กว่า R (P < 0.01) และที่สูงกว่าสำหรับ P (P < 0.01) แล้วเศษแป้งทนได้สูงสำหรับ P มากกว่า B และ M (P < 0.001) และสูงกว่าสำหรับ R (P < 0.001) อัตราการปล่อยกลูโคสได้เร็วที่สุด ด้วย R (P < 0.001), และประเมินของดัชนี glycemic สูงสุด R และต่ำสุดสำหรับ P (P < 0.001) การทดลองในสัตว์ทดลอง จำนวน 72 × Duroc (แม่ซื้อสีขาวขนาดใหญ่) ผลิตแม่สุกร กับ 63.0±4.55 กก.น้ำหนัก (116±3 วันอายุ) ใช้ แนวโน้มทางสถิติ (P รุ่น < 0.10) สุภัค ADG และ FCR แม่สุกรที่เลี้ยงอาหาร P โตเร็ว (P < 0.05) และ FCR ต่ำ (P < 0.05) กว่าผู้เลี้ยงอาหารอาร์ Digestibility อินทรีย์ชัดเจนสำหรับอาหาร R และ P ต่ำกว่าสำหรับอาหาร B (P < 0.001) แต่สูงกว่าสำหรับอาหาร M (P < 0.01) ในทำนองเดียวกัน digestibility โปรตีนหยาบชัดเจนมีสูงกับอาหาร R มากกว่าด้วยอาหาร M (P < 0.01) แม่สุกรที่ใช้จาก 32% เป็น 40% ของอาหารว่างภายใน h 2 แรกหลังจากเสนอ แล้วอัตราที่ลดลงจาก 2 ไป 4 h (P < 0.05) และแทบ nil 10 กับ 12 h สำหรับอาหารทั้งหมด มีอิทธิพลจำกัดอาหารลักษณะซากและเนื้อ แต่ไขมันบาดทะยักจากจากสุกรเลี้ยง B พบสูง (P < 0.001) รวมกรดไขมันอิ่มตัว และลดลง (P < 0.001) รวมเนื้อหากรดไขมัน monounsaturated กว่าจากสุกรที่เลี้ยง M จึงสามารถสรุปได้ว่า รูปแบบของลำไส้การย่อยอาหารของแหล่งแป้งอาจมีผลต่อ backfat ความหนาและการเจริญเติบโตประสิทธิภาพการทำงานของแม่สุกร มีผลไม่เพียงพอคุณภาพเนื้อ1. บทนำแป้งเป็นแหล่งพลังงานหลักในอาหารสำหรับสุกรในระบบการผลิตแบบเร่งรัด ถึงถึง 400 – 500 g/kg น้ำหนักแห้งอาหาร ดี ธัญพืชธัญพืชเป็นแหล่งอาหารสำคัญของแป้ง การหาค่าเฉลี่ย 60 – 80% ของอาหารทั้งหมด แต่ส่วนผสมอื่น ๆ เช่นกิน ถือเป็นแหล่งของแป้ง (ฮูเวอร์และโจว 2003) มันเป็นที่ยอมรับกันว่า แป้งเกือบหมดย่อยในลำไส้หมู (Bach Knudsen, 2011 ชิก Noblet, 1993) อย่างไรก็ตาม ปัจจัยตามกำเนิดโบตานิค เช่นสัดส่วนของ amylase และ amylopectin โครงสร้างโมเลกุล และ crystallinity ขนาดอนุภาค และโต้ตอบกับคอมโพเนนต์ตัวดึงข้อมูล รวมทั้งผลิตเอนไซม์ในระบบของสัตว์ย่อยสลายหรือแปรรูปธัญพืช อาจมีผลต่ออัตราการใช้ประโยชน์แป้ง (Bach Knudsen, 2011 ฮูเวอร์ และ โจว 2003 และเลห์แมน และ โรบิน 2007) ได้มีการจัดโดย Englyst et al. (1992) ตามอัตราและขอบเขตของการย่อยอาหารเอนไซม์ในระบบเป็นอย่างรวดเร็ว digestible แป้ง (RDS), แป้งช้า digestible (SDS) และแป้งที่ไม่ต้องตามด้วยกองทัพ – amylase และแปรงขอบเอนไซม์ในลำไส้เล็ก (ทนแป้ง RS) เป็นสมมติว่า ความแตกต่างในสัดส่วนของส่วนเหล่านี้มีผลต่อกลูโคส postprandial พร้อมและอินซูลินเลือดความเข้มข้น (van der Meulen et al., 1997 และแวน Kempen et al., 2010) และดังนั้นการใช้ประโยชน์พลังงาน และโปรตีนและไขมันเผาผลาญ (ดึง et al., 2012 และเดนบอร์น et al., 2007) ดังนั้น ธรรมชาติของแหล่งแป้งอาจมีอิทธิพลต่อลักษณะการเจริญเติบโต เป็นซากและเนื้อความสมบูรณ์ และผลดังกล่าวจะขึ้นอยู่กับอัตราการ ปล่อยน้ำตาลกลูโคสจากการย่อยอาหาร เช่น การเปลี่ยนแปลงในความเข้มข้นน้ำตาลในเลือด (glycemic ดัชนี GI Al. และ Giuberti, 2012a เจงกินส์ et al., 2002 และแวน Kempen et al., 2010) GI มียังเกี่ยวข้องกับรูปแบบการให้อาหาร เนื่องจากระดับกลูโคสสูง postprandial ก่อให้เกิดผลกระทบยาวนานสามารถ (Bach Knudsen, 2011 และ Menoyo et al., 2011)ข้าวโพดและข้าวบาร์เลย์ใช้เป็นแหล่งของแป้งในอาหารหมู แต่รวมของกินเช่นถั่วลันเตาหรือถั่วเป็นแหล่งโปรตีนยังหมายถึงการป้อนข้อมูลของแป้ง ข้าวมียังถือเป็นอาหารสำหรับสุกร เป็นข้าวหัก (Mateos et al., 2007), แม้ว่าทรูดจำกัดเนื่องจากความสามารถกับอาหารมนุษย์ แป้งข้าวโพดย่อยอาหารบางส่วนถูกป้องกัน โดยเมทริกซ์โปรตีนเอนโดสเปิร์ม (Svihus et al., 2005), ในขณะที่ขนาดอนุภาคขนาดเล็กของข้าวช่วยให้การย่อยอาหารอย่างรวดเร็ว (Tester et al., 2004) เกี่ยวกับถั่ว โครงสร้างผลึกของตัวแป้ง ปรับสัดส่วนและเซลล์โครงสร้างล้อมเม็ดแป้งให้มันบางขอบเขตของความต้านทานการย่อยอาหาร amylase (ฮูเวอร์และโจว 2003 และซันและ al., 2006) ดัง GI ประเมินจัดอันดับแหล่งแป้ง: ข้าว > ข้าวบาร์เลย์ > ข้าวโพด > ถั่ว (ดึง et al., 2012, Giuberti et al., 2012b, Menoyo และ al., 2011 และ van der Meulen et al., 1997)วัตถุประสงค์ของงานนี้คือการ ประเมินว่า GI ของแหล่งแป้งอาจมีผลต่อการเจริญเติบโตและเลี่ยนของสุกรที่เจริญเติบโตจบ ดังนั้น สี่แหล่งของแป้ง (ข้าวบาร์เลย์ ข้าวหัก ข้าวโพด และถั่ว) แตกต่างกันในอัตราการย่อยอาหารได้ดำเนินการเพาะเลี้ยง และ GIs ผู้ถูกประเมิน แล้ว แหล่งที่สี่รวมอยู่ในอาหารสำหรับสุกรเจริญเติบโตและประสิทธิผลโภชน์ digestibility อาหาร และทดสอบลักษณะคุณภาพ2. วัสดุและวิธีการ2.1 การทดลองตัวดึงข้อมูลทดลองอาหาร 4 มีสูตรรวม 420 g แป้ง/กก. ข้าวบาร์เลย์ ข้าวข้าวบาร์เลย์/เสีย ชุดข้าวบาร์เลย์/ข้าวโพดหรือข้าวบาร์เลย์/กฟภ (อาหารรหัส B, R, M และ P ตามลำดับ) โดย การกำหนดอาหารที่เป็นเนื้อเดียวกัน จำนวนคงทั่วไปแป้งแหล่ง (490 g/kg), เช่นข้าวบาร์เลย์ ถูกรวม ดังนั้น สัดส่วน 43 – 45% ของแป้งทั้งหมดจากอาหาร M, R และ P ให้ โดยข้าวโพด (แป้ง 614 g kg), ข้าวหัก (แป้ง 698 g/kg) หรือถั่ว (472 g แป้ง/kg), ในขณะที่แป้งทั้งหมดในอาหาร B มาจากข้าวบาร์เลย์ (แป้ง 511 g กิโลกรัม) ในอาหารที่ P ถั่วบางส่วนแทนข้าวบาร์เลย์ แต่กากถั่วเหลืองเป็นแหล่งโปรตีน (ดิบโปรตีนของถั่วลันเตา 204 g กิโลกรัม) ในอาหาร R, hulls ถั่วเหลืองถูกรวมอยู่ในการรักษาระดับเส้นใยคล้ายระหว่างอาหาร อาหารมีสูตรเป็น isonutritive ตรงกับ หรือเกินกว่าระดับแนะนำ โดย FEDNA (2013) สำหรับสุกรเจริญเติบโต องค์ประกอบส่วนผสมและเนื้อหาธาตุอาหารของอาหารทดลองแสดงในตารางที่ 1ตารางที่ 1 องค์ประกอบส่วนผสมและเคมีของอาหารทดลองอาหาร ข้าวบาร์เลย์ข้าวหักข้าวโพดถั่วลันเตาส่วนผสม (g/kg เลี้ยงเป็นเกณฑ์) ข้าวบาร์เลย์ 780 490 490 490 ข้าวหัก – 230 – – ข้าวข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ – – 270 – ถั่วลันเตา-- -400 กากถั่วเหลือง (440 g ดิบโปรตีน/กก.) 172 198 198 60 ฟาตาผสม 20 19 10 19 ถั่วเหลือง hulls-33.5 3 4.3 แคลเซียมคาร์บอเนต 10 10 10 10 Dicalcium ฟอสเฟต 8 10.5 9 8 โซเดียมคลอไรด์ 4 4 4 4 l-Lysine 1.5 0.8 1.5 – dl-Methionine 0.5 0.2 0.5 0.7 Vitamin and mineral premixb 4 4 4 4 Calculated compositionc (g/kg as-fed basis) Metabolisable energy (Kcal/kg) 3093 3141 3118 3111 Starch 403 426 426 426 Lysine 9.0 9.4 9.2 9.6 Methionine 3.0 3.0 3.1 2.9 Threonine 5.9 6.5 6.1 6.1 Tryptophan 2.0 2.1 1.9 1.7 Calcium 6.7 7.5 6.9 6.7 Digestible phosphorous 2.4 2.5 2.4 2.6 Analysed composition (g/kg as-fed basis) Dry matter 902 897 901 900 Organic matter 934 940 940 938 Crude protein 173 167 172 180 Neutral detergent fiber 158 151 150 151 Ether extract 39 36 39 38 Fatty acids (g/100 g total fatty acids) C14:0 1.6 1.8 1.1 1.5 C16:0 31.5 31.7 27.4 28.3 C18:0 10.3 11.7 7.6 10.5 C18:1 26.0 26.3 25.8 29.2 C18:2 16.8 13.2 21.5 17.3 C18:3 1.3 1.4 1.7 1.4 aMixture of fat from cattle and pig.bProviding (per kg of diet): vitamin A (retinyl acetate): 6500 IU; vitamin D3 (cholecalciferol): 2000 IU; vitamin E (all-rac-α-tocopheryl acetate): 6 IU; vitamin B2 (riboflavin): 4 mg; vitamin B6 (pyridoxine): 1.5 mg; vitamin B12 (cyanocobalamin): 16 mg; niacin: 18 mg; d-pantothenic acid (dl-calcium pantothenate): 9 mg; choline (choline chloride): 75 mg; Zn (zinc oxide): 110 mg; Mn (manganese oxide): 16.6 mg; Fe (ferrous sulphate): 99.9 mg; Cu (copper sulfate): 12 mg; Co (cobalt sulfate): 0.48 mg; Se (sodium selenite): 0.21 mg; I (calcium iodate): 0.99 mg; 4920 6-Phytase: 499.8 FTU; E 4818 Endo-1,4 beta xylanase: 10 IU.cEstimated according to FEDNA (2010).Table options2.2. in vitro characterization of starchTo characterize the in vitro digestion pattern of starch, three different samples of each feed taken at the first, medium and last part of the in vivo experiment (see Section 2.3) were analysed in duplicates following the procedure described by Englyst et al. (1992) with the modifications proposed by Giuberti et al. (2012b). Pepsin (SIGMA P-7000, Sigma–Aldrich, Steinheim, Germany), pancreatin (SIGMA P-1750Sigma-Aldrich, Steinheim, Germany), amyloglucosidase (E-AMGDF100, Megazyme, Bray, Ireland) and invertase (SIGMA I-4504, Sigma–Aldrich, Steinheim, Germany) were used for enzymatic digestion. Samples were incubated at 39 °C for 0, 20, 60, 120 and 240 min, and released glucose was determined using a glucose oxidase kit (GOPODK-GLUC 07/11, Megazyme, Bray, Ireland) and reading at 510 nm wavelength. Results were expressed as glucose released per min or as proportion of total starch content that was determined enzymatically from samples ground to 0.5 mm using a commercial kit (Total Starch Assay Kit K
การแปล กรุณารอสักครู่..
