2.3.2. Pectin extraction from fresh

2.3.2. Pectin extraction from fresh dragon fruit peels
Fresh dragon fruit peel (WPF or IPF) was mixed with 1% citric
acid (pH 2.03) using 1:4 (w:v) sample to citric acid ratio in a 250 mL
Schott bottle using a shakingwater bath. The extractionwas carried
out at 73
C for 67 min. The extraction temperature, time and pH
were similar as used in Subsection 2.3.1, only the sample to
extracting solution ratio was different where 1:4 (w/v) was used
instead of 1:50 (w/v) since the moisture content of fresh dragon
fruit peels is >90%. The extraction method from here on, however,
is as described by Yuliarti et al. (2008) whereby the resulting
extract was centrifuged at 3300  g for 20 min and the supernatant
was decanted. Citric acid (1%) at 73
Cwas added to the pellet in the
ratio of 1:1 (w:v) to extract any remaining pectin, and centrifuged
again as before. Undenatured ethanol (95%) was added to the
combined supernatants, the mixturewas stirred and kept at 4
C for
4 h to facilitate pectin precipitation. The mixturewas centrifuged at
3300  g for 10 min and the supernatant was discarded. The pellet
was washed with 95% undenatured ethanol (1:1; w:v) and centrifuged
again. This pellet washing step was further repeated. The
final pellet was dried, weighed and ground as described in
Subsection 2.3.1. The pectin yield on fresh (Yf) and dry (Y) weight
basis when fresh dragon fruit peel was used were calculated using
Equations (2) and (3), respectively:
Yf ð%Þ ¼ 100 ½weight of dried pectin ðgÞ=weight of fresh
dragon fruit peel ðgÞ (2)
Yð%Þ ¼ 100Yf ð100  moisture content of fresh
.
dragon fruit peelÞ (3)
2.4. Functional groups determination using Fourier transform
infrared (FT-IR) spectroscopy
Samples were desiccated overnight in a glass dessicator containing
anhydrous silica gel prior to FT-IR analysis. FT-IR spectra
were recorded using a universal ATR accessory on a Perkin Elmer
Spectrum 100 FT-IR spectrophotometer at the absorbance mode
from 4000 to 400 cm1 (mid infrared region). The measuring resolution
was 4 cm1 and 128 scans were collected to get a high
signal-to-noise ratio.
2.5. Determination of degree of esterification
The degree of esterification (DE)was determined using the FT-IR
method. DE (%) is defined as (number of esterified carboxylic
groups/number of total carboxylic groups)  100. The ratio of the
area of the band at 1745 cm1 (corresponding to the number of
esterified carboxylic groups) over the sum of the areas of the bands
at 1745 cm1 and 1630 cm1 (corresponding to the number of total
carboxylic groups) should be proportional to the DE, i.e.
DE ¼ A1745/(A1745 þ A1630) (Chatjigakis et al., 1998; Manrique &
Lajolo, 2002). OMNIC software version 8.0 (Thermo Nicolet Corp.,
USA) was used to measure the areas of interest.
2.6. Proximate analyses
Moisture content was determined according to AOAC Method
934.01 (AOAC, 2005). Ash was analysed gravimetrically by incineration
of sample in a muffle furnace for 2 h at 900
C. The protein
content estimated as % nitrogen  6.25 (conversion factor) was
determined with the Kjeldahl method on a Kjeltec 8400 Analyser
(FOSS-Tecator AB, Hoganas, Sweden) which is consistent with
AOAC Method 978.04 (AOAC, 2005). Dietary fibre was determined
using Megazyme Total Dietary Fibre Assay kit which is in accordance
with AOAC Method 991.43 (AOAC, 2005) using a Fibretec
System E1023 (FOSS-Tecator AB, Hoganas, Sweden).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3.2. เพกทินสกัดจากผลไม้สดมังกรมักหลุดลอกเปลือกผลไม้สดมังกร (WPF หรือ IPF) ถูกผสมกับ 1% แอซิด ซิทริกกรด (pH 2.03) โดยใช้ตัวอย่าง (w:v) 1:4 อัตราส่วนกรดซิตริกใน 250 มลขวด Schott ที่ใช้อาบน้ำ shakingwater Extractionwas ดำเนินการออกที่ 73 C ในนาที 67 สกัดอุณหภูมิ เวลา และค่า pHคล้ายกันที่ใช้ใน Subsection 2.3.1 ตัวอย่างการแยกอัตราส่วนของโซลูชั่นแตกต่างกันที่ใช้ 1:4 (w/v)แทนที่เป็น 1:50 (w/v) ตั้งแต่ชื้นของมังกรที่สดเป็นผลไม้ peels > 90% วิธีสกัดจากนี่คือ อย่างไรก็ตามอธิบายโดย Yuliarti et al. (2008) โดยเป็นการส่งผลสารสกัดที่ centrifuged ที่ 3300 g 20 นาทีและ supernatantถูก decanted กรดซิตริก (1%) ที่ 73 Cwas เพิ่มเม็ดในอัตราส่วน 1:1 (w:v) เพื่อแยกใด ๆ เหลือเพกทิน และ centrifugedมาเป็นก่อน Undenatured เอทานอล (95%) ถูกเพิ่มเข้าไปรวม supernatants, mixturewas กวน และเก็บไว้ที่ C 4 สำหรับh 4 เพื่อฝนเพกทิน Mixturewas centrifuged ที่3300 g 10 นาทีและ supernatant ถูกละทิ้ง เม็ดล้าง ด้วยเอทานอล 95% undenatured (1:1, w:v) และ centrifugedอีกครั้ง เม็ดนี้ล้างขั้นตอนต่อไปมีการทำซ้ำ ที่เม็ดสุดท้ายแห้ง น้ำหนัก และอธิบายไว้ในดินSubsection 2.3.1 ผลผลิตเพกทินสด (วายเอฟ) และน้ำหนัก (Y) แห้งพื้นฐานเมื่อมีใช้เปลือกผลไม้สดมังกรถูกคำนวณโดยใช้สมการ (2) และ (3), ตามลำดับ:วายเอฟð%Þ¼ 100 ½weight ของเพกทินแห้ง ðgÞ =น้ำหนักสดðgÞ เปลือกผลไม้มังกร (2)Yð %Þ¼ 100Yf ð100 ชื้นของสด.มังกรผลไม้ peelÞ (3)2.4. กลุ่ม Functional กำหนดใช้การแปลงฟูรีเยอินฟราเรด (FT IR) กตัวอย่างที่ desiccated ค้างคืนในตัวแก้ว dessicator ประกอบด้วยไดซิลิก้าเจลก่อนวิเคราะห์ FT IR FT-IR แรมสเป็คตราได้รับการบันทึกโดยใช้อุปกรณ์เอทีอาร์สากลบนการเพอร์เอลเมอสเปกตรัมเครื่องทดสอบกรดด่าง FT-IR 100 ที่โหมด absorbanceจาก 4000 ซม. 400 1 (กลางภาคอินฟราเรด) ความละเอียดการวัดถูกสแกน 4 ซม. 1 และ 128 ถูกเก็บรวบรวมได้มากอัตราส่วนสัญญาณต่อเสียง2.5 การกำหนดระดับของ esterificationกำหนดระดับของการ esterification (DE) ใช้ FT IRวิธีการ DE (%) ถูกกำหนดให้เป็น (จำนวน esterified carboxylicกลุ่ม/จำนวนของกลุ่มรวม carboxylic) 100 อัตราส่วนของการตั้งวงที่ 1745 ซม 1 (ที่สอดคล้องกับจำนวนesterified กลุ่ม carboxylic) มากกว่าผลรวมของพื้นที่ของวงดนตรีที่ 1 และพ.ศ. 1745 ซมซม 1 (ที่สอดคล้องกับจำนวนรวมกลุ่ม carboxylic) ควรเป็นสัดส่วนกับ DE เช่นDE ¼ A1745 /(A1745 þ A1630) (Chatjigakis และ al., 1998 Manrique และLajolo, 2002) OMNIC ซอฟต์แวร์เวอร์ชัน 8.0 (เทอร์โม Nicolet Corp.สหรัฐอเมริกา) ถูกใช้เพื่อวัดพื้นที่ที่น่าสนใจ2.6. เคียงวิเคราะห์กำหนดตามวิธี AOAC ชื้น934.01 (AOAC, 2005) เถ้าถูก analysed gravimetrically โดยการเผาของตัวอย่างในเตาเตาสำหรับ h 2 ที่ค. 900 โปรตีนเนื้อหาประเมินเป็น%ไนโตรเจน 6.25 (ตัวแปลง)กำหนด ด้วยวิธี Kjeldahl ในการ Kjeltec 8400 Analyser(AB FOSS Tecator, Hoganas สวีเดน) ซึ่งจะสอดคล้องกับวิธี AOAC 978.04 (AOAC, 2005) กำหนดเส้นใยอาหารใช้ชุดวิเคราะห์ใยอาหารสำหรับผู้รวม Megazyme ซึ่งเป็นกับ 991.43 วิธี AOAC (AOAC, 2005) โดยใช้การ Fibretecระบบ E1023 (AB FOSS Tecator, Hoganas สวีเดน)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3.2 การสกัดเพคตินจากเปลือกแก้วมังกรสด
มังกรเปลือกผลไม้สด (WPF หรือ IPF) ผสมกับ 1% ซิตริก
กรด (pH 2.03) โดยใช้ 1: 4 (w: V) ตัวอย่างมะนาวอัตราส่วนกรดใน 250 มิลลิลิตร
ขวดชอตต์ใช้ shakingwater การอาบน้ำ extractionwas ดำเนิน
ออกที่ 73? C เป็นเวลา 67 นาที อุณหภูมิสกัดเวลาและค่า pH
มีความคล้ายคลึงกันที่ใช้ในการย่อย 2.3.1 เพียงตัวอย่างเพื่อ
สกัดอัตราส่วนการแก้ปัญหาที่แตกต่างกันที่ 1: 4 (w / v) ถูกนำมาใช้
แทน 1:50 (w / v) ตั้งแต่ความชื้น เนื้อหาของมังกรสด
เปลือกผลไม้> 90% วิธีการสกัดจากที่นี่ แต่
เป็นตามที่อธิบายไว้โดย Yuliarti และคณะ (2008) โดยผล
ของสารสกัดถูกหมุนเหวี่ยงที่ 3300? กรัมเป็นเวลา 20 นาทีและใส
ถูก decanted ? กรดซิตริก (1%) 73 Cwas เพิ่มเข้าไปในเม็ดใน
อัตราส่วน 1: 1 (w: V) เพื่อดึงใด ๆ เพคตินที่เหลืออยู่และปั่น
อีกครั้งก่อน เอทานอล undenatured (95%) ถูกบันทึกอยู่ใน
supernatants รวม mixturewas กวนและเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสสำหรับ
4 ชั่วโมงเพื่อความสะดวกในการเร่งรัดเพคติน mixturewas หมุนเหวี่ยงที่
3300? กรัมเป็นเวลา 10 นาทีและใสถูกทิ้ง เม็ด
ถูกล้างด้วยเอทานอล 95% undenatured (1: 1; w: V) และหมุนเหวี่ยง
อีกครั้ง ขั้นตอนการซักผ้าเม็ดนี้ซ้ำอีก
เม็ดสุดท้ายก็แห้งชั่งน้ำหนักและพื้นดินตามที่อธิบายใน
ข้อย่อย 2.3.1 ผลผลิตเพคตินกับความสดใหม่ (Yf) และแห้ง (Y) น้ำหนัก
พื้นฐานเมื่อเปลือกแก้วมังกรสดถูกนำมาใช้นี้จะถูกคำนวณโดยใช้
สมการ (2) และ (3) ตามลำดับ:
Yf% d Þ¼ 100 ½weightของðgÞเพคตินแห้ง = น้ำหนักของ สด
แก้วมังกรเปลือกðgÞ? (2)
YD% Þ¼ 100Yf D100? ปริมาณความชื้นของสด
.
แก้วมังกรpeelÞ (3)
2.4 กลุ่มฟังก์ชั่นการกำหนดใช้แปลงฟูริเย
อินฟาเรด (FT-IR) สเปคโทร
ตัวอย่างถูกผึ่งให้แห้งค้างคืนใน dessicator แก้วที่มี
ซิลิกาเจลปราศจากก่อนที่จะมีการวิเคราะห์ FT-IR FT-IR สเปกตรัม
ถูกบันทึกไว้โดยใช้อุปกรณ์เสริม ATR สากล Perkin Elmer
คลื่นความถี่ 100 สเปก FT-IR เมื่ออยู่ในโหมดการดูดกลืนแสง
4000-400 ซม. 1 (ภาคกลางอินฟราเรด) ความละเอียดของวัด
ถูก 4 ซม. 1 และ 128 สแกนถูกเก็บรวบรวมเพื่อให้ได้สูง
สัญญาณต่อเสียงรบกวนอัตราส่วน.
2.5 การกำหนดระดับของ esterification
ระดับของเอ (DE) ถูกกำหนดโดยใช้ FT-IR
วิธี DE (%) ถูกกำหนดให้เป็น (จำนวน esterified คาร์บอกซิ
กลุ่ม / จำนวนของกลุ่มคาร์บอกซิทั้งหมด)? 100 อัตราส่วนของ
พื้นที่ของวงดนตรีที่ 1,745 ซม. 1 (ตรงกับจำนวนของ
กลุ่มคาร์บอกซิ esterified) มากกว่าผลรวมของพื้นที่ของวง
ที่ 1745 ซม. 1 และ 1630 ซม. 1 (ตรงกับจำนวนของ รวม
กลุ่มคาร์บอกซิ) ควรจะเป็นสัดส่วนกับ DE คือ
DE ¼ A1745 / (A1745 A1630 þ) (Chatjigakis et al, 1998;. Manrique &
Lajolo, 2002) ซอฟต์แวร์รุ่น OMNIC 8.0 (เทอร์โมเลคอร์ป
ประเทศสหรัฐอเมริกา) ถูกนำมาใช้ในการวัดพื้นที่ที่น่าสนใจ.
2.6 ใกล้เคียงวิเคราะห์
ความชื้นถูกกำหนดตาม AOAC วิธี
934.01 (AOAC, 2005) แอชได้รับการวิเคราะห์ gravimetrically โดยการเผา
ของกลุ่มตัวอย่างในเตาเผาเป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 900 องศาเซลเซียส โปรตีน
เนื้อหาประมาณไนโตรเจน%? 6.25 (ปัจจัยการแปลง) ถูก
กำหนดด้วยวิธี Kjeldahl ใน Kjeltec? 8400 วิเคราะห์
(FOSS-Tecator AB, Hoganas, สวีเดน) ซึ่งสอดคล้องกับ
วิธี AOAC 978.04 (AOAC, 2005) ใยอาหารที่ถูกกำหนด
โดยใช้ Megazyme รวมชุด Assay Fibre อาหารซึ่งเป็นไปตาม
ที่มีวิธี AOAC 991.43 (AOAC, 2005) โดยใช้ Fibretec
ระบบ E1023 (FOSS-Tecator AB, Hoganas, สวีเดน)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3.2 . การสกัดเพคตินจากเปลือกสดแก้วมังกร
เปลือกผลแก้วมังกรสด ( WPF หรือ IPF ) ผสมกับกรดซิตริก 1 %
( pH 2.03 ) ใช้ 1 : 4 ( w : V ) ตัวอย่างอัตราส่วน กรดซิตริกใน 250 ml
คือขวดใช้ shakingwater อาบ การ extractionwas อุ้ม
ที่ 73
C 67 นาที อุณหภูมิของการสกัด , เวลาและ pH
เหมือนกันที่ใช้ในส่วนย่อย 2.3.1 เท่านั้น

ตัวอย่างการแยกสารละลายมีอัตราส่วนที่แตกต่างกันที่ 1 ( w / v ) คือใช้
แทน 1 : 50 ( w / v ) เนื่องจากความชื้นของมังกรผลไม้เปลือกสด
> 90% การสกัดวิธีนี้ , อย่างไรก็ตาม ,
เป็นตามที่อธิบายไว้โดย yuliarti et al . ( 2008 ) ซึ่งเป็นระดับที่ 3 สารสกัดผล
 G สำหรับ 20 นาทีและนำ
ถูกริน . กรดซิตริก ( 1 ) ตอน 73
cwas เพิ่มเม็ดใน
อัตราส่วน 1 : 1 ( w : V ) เพื่อสกัดเพคติน ที่เหลือ และไฟฟ้า
เหมือนเมื่อก่อนอีกแล้ว undenatured เอทานอล ( 95% ) คือเพิ่ม
รวม supernatants , mixturewas กวนและเก็บไว้ที่ 4
C
4 H เพื่อความสะดวกในการตกตะกอนของเพคติน ในระดับที่ mixturewas
3300  G 10 นาทีและนำมันทิ้ง เม็ด
ซัก 95% undenatured เอทานอล ( 1 : 1 ; w : V ) ไฟฟ้า
อีกครั้ง เม็ดนี้ล้างขั้นตอนต่อไปอีก
เม็ดสุดท้ายก็แห้ง หนักและพื้นดินตามที่อธิบายไว้ในส่วนย่อย 2.3.1
. เพคติน ( yf ) ผลผลิตสดและน้ำหนักแห้ง ( Y )
พื้นฐานเมื่อเปลือกแก้วมังกรสดที่ใช้คำนวณโดยใช้
สมการ ( 2 ) และ ( 3 ) ตามลำดับ :
yf ð¼ 100 % Þ½น้ำหนักแห้งเพคตินðกรัมน้ำหนักสดÞ =
มังกรผลไม้เปลือกÞðกรัม ( 2 )
Y ð % Þ¼ 100yf ð 100  ความชื้นสด
.
มังกรผลไม้เปลือกÞ ( 3 )
2 . การทำงานกลุ่มการใช้ฟูเรียร์ทรานฟอร์มอินฟราเรดสเปกโทรสโกปี ( FT-IR ) ตัวอย่าง

ถูกผึ่งให้แห้งข้ามคืนในแก้วเดสิ กเคเตอร์ที่มี
รัสซิลิกาเจลก่อน - การวิเคราะห์ อินฟราเรดสเปกตรัมถูกบันทึกโดยใช้อุปกรณ์

เพอร์กินเอลเมอร์ ATR สากลบนอินฟราเรดสเปกตรัมการดูดกลืนแสง Spectrophotometer 100 ในโหมด
จาก 4000 400 ซม.  1 ( ภาคกลางอินฟราเรด ) การวัดละเอียด
4 ซม. จำนวน 128  1 และสแกนเพื่อให้ได้อัตราส่วนของสัญญาณสูง
.
2.5 การกำหนดระดับของปฏิกิริยาเอสเทอริฟิเคชัน
ระดับเอสเทอริฟิเคชัน ( de ) ถูกกำหนดโดยใช้ FT-IR
วิธี เดอ ( % ) หมายถึงจำนวนของ esterified กรดคาร์บอกซิลิก
กลุ่ม / จำนวนรวมของกลุ่มคาร์บอกซิลิก )  100 อัตราส่วนของ
พื้นที่วงที่ 1745 ซม.  1 ( ตรงกับหมายเลขของ
esterified หมู่คาร์บอกซิลิก ) มากกว่าผลรวมของพื้นที่ของแถบ
ที่ 1745 ซม.  1 และ 971 เซนติเมตร  1 ( สอดคล้องกับจำนวนรวม
หมู่กลุ่ม ) ควรจะได้สัดส่วนกับ เดอ ได้แก่
de ¼ a1745 / ( a1745 þ a1630 ) ( chatjigakis et al . , 1998 ;
lajolo Manrique ของ& ,2002 ) omnic ซอฟแวร์รุ่น 8.0 ( เทอร์โม nicolet .
USA ) ถูกใช้ในการวัดพื้นที่ที่น่าสนใจ
2.6 แล้วนำไปวิเคราะห์
ความชื้นพิจารณาตามวิธี
934.01 โปรตีน ( โปรตีน , 2005 ) แอชจำนวน gravimetrically โดยการเผาในเตาเผาของตัวอย่าง
2 H ที่ 900
C โปรตีน
เนื้อหาประเมินเป็น % ไนโตรเจน  6.25 ( ตัวประกอบการแปลง ) คือ
มุ่งมั่นกับ 0 วิธีใน kjeltec  8400 วิเคราะห์
( ฟอส tecator AB , PMschool , สวีเดน ) ซึ่งสอดคล้องกับวิธีการ 978.04
โปรตีน ( โปรตีน , 2005 ) ใยอาหารตั้งใจ
ใช้ megazyme รวมเส้นใยอาหาร 3 ชุดซึ่งสอดคล้อง
ด้วยวิธีไม่ 991.43 ( โปรตีน , 2005 ) โดยใช้ระบบ fibretec
e1023 ( ฟอส tecator AB , PMschool สวีเดน )