eral molecular methods have been de

eral molecular methods have been developed, including
phage typing [25] and plasmid analysis as performed in
this study (Table 1, Figure 1 and 2).
Unlike MDR S. Choleraesuis isolated from pigs and
humans [5,6], S. Braenderup and S. Bareilly isolated from
pigs were highly susceptible to antibiotics in 1971 [10]. In
addition, in a study of resistance to 11 antibiotics for Salmonella
isolated from turtles, S. Bareilly was still susceptible
to all antibiotics, and, in contrast, few S. Braenderup
isolates were resistant to gentamycin (6/15), sulfisoxazole
(6/15) and TET (2/15) [11]. In our study, almost all of the
cluster A isolates of S. Braenderup were MDR and associated
with large MDR plasmids (Table 3, Figure 1).
Although RFLP analysis separated type 1 plasmids into 7
subtypes, based on antimicrobial resistance encoded by
these plasmids, 3 subtypes were observed, conferring
resistance to AMP and Sxt (1b-1e and 1g), AMP, CHL, Sxt,
and TET (1f) and AMP, CHL, KAN, Sxt and TET (1a),
respectively (Table 3). Apparently, the dfrA12-orfF-aadA2-
qacEΔ1-sulI region of class 1 integrons, which is frequently
found in MDR Salmonella [26-28], was located on MDR
plasmid and conferred resistance to Sxt (Table 3). Insertion
sequence IS26 existed in all (Table 3) and differed
from plasmids in S. Braenderburg found in Spain [29].
The size change in type 1 plasmids may be due to presence
of multiple IS26 elements that may be involved in plasmid
rearrangement (Figure 3).
Although conjugation capability of type 2 plasmids was
higher than that of type 1 plasmids, we only identified
coexistence of type 1 and 2 plasmids in three S.
Braenderup isolates, which differed in isolation day and
PFGE pattern (Table 3). Isolate 13 with type 1f and 2a
plasmids was collected in July of 2004 from Taipei. Isolate
32 with type 1d and 2a plasmids and isolate 36 with 1c
and 2b plasmids were collected in March and May of
2005, respectively, from Taichung (Table 3). Only one
isolate 44 with a type 1d plasmid was collected before
those three isolates, in June of 2004 from Taichung. These
results suggest possibly that isolate 32 with A6 genotype
and R6 resistance pattern may be derived from isolate 44
with a type 1 plasmid, A4 genotype and R6 resistance pattern
by introduction of a type 2 plasmid. Interestingly,
type 2 plasmids are IncI1 plasmids, carrying the tnpAblaCMY-2-blc-sugE
structure (Table 3). AmpC β-lactamases
are broadly distributed among the Enteribacteriaceae, and
plasmid-mediated AmpC β-lactamases include ACC, ACT,
CFE, CMY, DHA, FOX, LAT, MIR, and MOX [30]. At least
three transposase associated genetic structures for blaCMY
include ISEcp1-blaCMY-2-blc-sugE, ISCR1-blaCMY-9-yqgF-yqgE
and IS26-frdC-frdD-ampR-blaCMY-13-blc-sugE-IS26 [30].
Recently, blaCMY has been shown to be broadly spread in
Salmonella worldwide [29,31,32] and to be present in S.
Braenderup [33]. In Taiwan, since we reported the tnpA

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วิธี eral โมเลกุลได้รับการพัฒนา รวมทั้งphage พิมพ์ [25] และวิเคราะห์ plasmid เป็นดำเนินการในศึกษาที่นี้ (ตารางที่ 1 รูปที่ 1 และ 2)ต่างจาก MDR S. Choleraesuis ที่แยกต่างหากจากสุกร และมนุษย์ [5,6], S. Braenderup และแบร์ไรล์ลี่ s ได้แยกต่างหากจากสุกรได้สูงไวต่อให้ยาปฏิชีวนะในปี 1971 [10] ในนอกจากนี้ ในการศึกษาความต้านทานต่อยาปฏิชีวนะที่ 11 สำหรับสายแยกต่างหากจากเต่า แบร์ไรล์ลี่ s ได้ถูกยังคงไวต่อให้ยาปฏิชีวนะทั้งหมด และ ในความคม ชัด Braenderup s ได้น้อยแยกได้ทนต่อ gentamycin (6/15), sulfisoxazole(6/15) และ TET (2/15) [11] ในการศึกษาของเรา เกือบทั้งหมดของการคลัสเตอร์ A แยกของ Braenderup s ได้ถูก MDR และเชื่อมโยงมีขนาดใหญ่ MDR plasmids (ตาราง 3 รูปที่ 1)แม้ว่าการวิเคราะห์ RFLP plasmids ชนิด 1 แบ่งออกเป็น 7subtypes ขึ้นอยู่กับความต้านทานจุลินทรีย์โดยการเข้ารหัสplasmids เหล่านี้ 3 subtypes สุภัค conferringต้านทานการแอมป์ Sxt (1b 1e และ 1g), AMP, CHL, Sxtและ TET (1f) และแอมป์ CHL กาญจน์ Sxt และ TET (1a),ตามลำดับ (ตาราง 3) เห็นได้ชัด dfrA12-orfF-aadA2 -qacEΔ1 sulI ภูมิภาคของคลาส 1 integrons ซึ่งเป็นบ่อยพบใน MDR ซัล [26-28] ตั้งอยู่บน MDRplasmid และปรึกษาทนต่อ Sxt (ตาราง 3) แทรกลำดับ IS26 อยู่ในทั้งหมด (ตาราง 3) และแตกต่างจาก plasmids ใน S. Braenderburg พบในสเปน [29]การเปลี่ยนแปลงขนาดชนิด 1 plasmids อาจเนื่องจากIS26 องค์ประกอบหลายอย่างที่อาจเกี่ยวข้องใน plasmidrearrangement (Figure 3).Although conjugation capability of type 2 plasmids washigher than that of type 1 plasmids, we only identifiedcoexistence of type 1 and 2 plasmids in three S.Braenderup isolates, which differed in isolation day andPFGE pattern (Table 3). Isolate 13 with type 1f and 2aplasmids was collected in July of 2004 from Taipei. Isolate32 with type 1d and 2a plasmids and isolate 36 with 1cand 2b plasmids were collected in March and May of2005, respectively, from Taichung (Table 3). Only oneisolate 44 with a type 1d plasmid was collected beforethose three isolates, in June of 2004 from Taichung. Theseresults suggest possibly that isolate 32 with A6 genotypeand R6 resistance pattern may be derived from isolate 44with a type 1 plasmid, A4 genotype and R6 resistance patternby introduction of a type 2 plasmid. Interestingly,type 2 plasmids are IncI1 plasmids, carrying the tnpAblaCMY-2-blc-sugEstructure (Table 3). AmpC β-lactamasesare broadly distributed among the Enteribacteriaceae, andplasmid-mediated AmpC β-lactamases include ACC, ACT,CFE, CMY, DHA, FOX, LAT, MIR, and MOX [30]. At leastthree transposase associated genetic structures for blaCMYinclude ISEcp1-blaCMY-2-blc-sugE, ISCR1-blaCMY-9-yqgF-yqgEand IS26-frdC-frdD-ampR-blaCMY-13-blc-sugE-IS26 [30].Recently, blaCMY has been shown to be broadly spread inSalmonella worldwide [29,31,32] and to be present in S.Braenderup [33]. In Taiwan, since we reported the tnpA

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วิธีโมเลกุล eral
ได้รับการพัฒนารวมทั้งการพิมพ์phage [25]
และการวิเคราะห์พลาสมิดที่ดำเนินการในการศึกษาครั้งนี้(ตารางที่ 1 รูปที่ 1 และ 2).
ซึ่งแตกต่างจากเอส MDR choleraesuis
ที่แยกได้จากสุกรและมนุษย์[5,6], เอส Braenderup และ S. Bareilly
ที่แยกได้จากสุกรที่มีความไวสูงในการใช้ยาปฏิชีวนะในปี1971 [10] ในนอกจากนี้ในการศึกษาความต้านทานต่อยาปฏิชีวนะ 11 สำหรับเชื้อ Salmonella ที่แยกได้จากเต่า Bareilly เอสก็ยังไวต่อยาปฏิชีวนะทั้งหมดและในทางตรงกันข้ามไม่กี่เอสBraenderup แยกถูกทนต่อ Gentamycin (6/15), ซัลฟาฟูราโซล(6 / 15) และ TET (2/15) [11] ในการศึกษาของเราเกือบทั้งหมดของคลัสเตอร์แยกเอส Braenderup เป็น MDR และเกี่ยวข้องกับพลาสมิดMDR ขนาดใหญ่ (ตารางที่ 3 รูปที่ 1). แม้ว่าการวิเคราะห์ RFLP แยกชนิดที่ 1 พลาสมิดเป็น 7 ชนิดย่อยขึ้นอยู่กับการดื้อยาเข้ารหัสโดยพลาสมิดเหล่านี้3 ชนิดย่อยพบหารือความต้านทานต่อแอมป์และSXT (1b-1e และ 1 กรัม), แอมป์, CHL, SXT, และ TET (1F) และแอมป์, CHL, KAN, SXT และ TET (1a) ตามลำดับ (ตารางที่ 3) . เห็นได้ชัดว่า dfrA12-Orff-aadA2- ภูมิภาคqacEΔ1-Suli ของชั้น 1 integrons ซึ่งมักพบในเชื้อSalmonella MDR [26-28] ตั้งอยู่บน MDR พลาสมิดและความต้านทานต่อการประชุมเพื่อ SXT (ตารางที่ 3) แทรกลำดับ IS26 อยู่ในทั้งหมด (ตารางที่ 3) และแตกต่างจากพลาสมิดในเอสBraenderburg พบในสเปน [29]. การเปลี่ยนแปลงขนาดในชนิดที่ 1 พลาสมิดอาจจะเป็นเพราะการปรากฏตัวขององค์ประกอบIS26 หลายตัวที่อาจจะเกี่ยวข้องกับพลาสมิดปรับปรุงใหม่(รูปที่ 3). แม้ว่าความสามารถในการเชื่อมต่อกันของพลาสมิดชนิดที่ 2 ได้รับสูงกว่าชนิดที่1 พลาสมิดที่เราระบุเพียงอยู่ร่วมกันของประเภทที่1 และ 2 พลาสมิดในเอสสามแยกBraenderup ซึ่งแตกต่างกันในวันแยกและรูปแบบPFGE (ตารางที่ 3) แยก 13 1f ชนิดและ 2a พลาสมิดที่ถูกเก็บรวบรวมในเดือนกรกฎาคมของปี 2004 จากไทเป แยก32 ที่มีพลาสมิด 1d ชนิดและ 2a และแยก 36 1c และ 2b พลาสมิดที่ถูกเก็บรวบรวมในเดือนมีนาคมและเดือนพฤษภาคมของปี2005 ตามลำดับจาก Taichung (ตารางที่ 3) เพียงคนเดียวที่แยก 44 กับประเภทพลาสมิด 1d เก็บก่อนที่ทั้งสามสายพันธุ์ในเดือนมิถุนายนของปี2004 จาก Taichung เหล่านี้ผลการวิจัยแนะนำว่าอาจจะแยก 32 กับจีโนไทป์ A6 และรูปแบบความต้านทาน R6 อาจจะมาจากแยก 44 ที่มีพลาสมิดชนิดที่ 1, จีโนไทป์ A4 และรูปแบบความต้านทาน R6 โดยการแนะนำของชนิดที่ 2 พลาสมิด ที่น่าสนใจชนิดที่ 2 พลาสมิดที่มีพลาสมิด IncI1 ถือ tnpAblaCMY-2-blc-Suge โครงสร้าง (ตารางที่ 3) AmpC lactamases β-มีการกระจายอย่างกว้างขวางในหมู่Enteribacteriaceae และพลาสมิดพึ่งAmpC β-lactamases รวมถึงแม็ก, ACT, CFE, CMY, DHA, FOX, LAT, MIR และ MOX [30] อย่างน้อยสาม transposase เกี่ยวข้องโครงสร้างทางพันธุกรรมสำหรับ blaCMY รวม ISEcp1-blaCMY-2-blc-Suge, ISCR1-blaCMY-9-yqgF-yqgE และ IS26-frdC-frdD-ampR-blaCMY-13-blc-Suge-IS26 [30] . เมื่อเร็ว ๆ นี้ blaCMY ได้รับการแสดงที่จะแพร่กระจายในวงกว้างในSalmonella ทั่วโลก [29,31,32] และจะอยู่ในเอสBraenderup [33] ในไต้หวันตั้งแต่ที่เรารายงาน tnpA

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิธีโมเลกุลที่ได้ถูกพัฒนาขึ้น รวมถึงพิมพ์ [ 25 ]
ฟาและวิเคราะห์พลาสมิดที่ได้กระทำใน
การศึกษา ( ตารางที่ 1 รูปที่ 1 และ 2 ) .
ซึ่งแตกต่างจาก choleraesuis 2547 เอสที่แยกได้จากสุกรและมนุษย์
[ 5 , 6 ] , S และ S . แบร์ไรล์ลี่
braenderup แยกจากสุกร ความรู้สึกไวต่อยาปฏิชีวนะใน 1971 [ 10 ] ใน
นอกจากนี้ในการศึกษาความต้านทานต่อยาปฏิชีวนะสำหรับ Salmonella
11ที่แยกได้จากเต่า , S . แบร์ไรล์ลี่ยังคงอ่อนแอ
ให้ยาปฏิชีวนะ และในทางตรงกันข้าม ไม่กี่วินาที braenderup
ไอโซเลทกันเจนตาไมซิน ( 6 / 15 ) , ซัลฟิซ ซาโซล
( 6 / 15 ) และเทต ( 2 / 15 ) [ 11 ] ในการศึกษาของเรา เกือบทั้งหมดของเชื้อ S . braenderup
กลุ่มหนึ่งถูกลักและที่เกี่ยวข้องกับพลาสมิด
ลักขนาดใหญ่ ( โต๊ะ 3 รูปที่ 1 ) .
แม้ว่าการวิเคราะห์ RFLP แยกประเภท 1 ใน 7
)