3.2. LGG biofilm microcapsules prepared with resistant starch (Hi-
Maize)
LGG biofilm microcapsules were successfully prepared in the
presence of Hi-Maize. Without Hi-Maize, the high-density biofilm
colonies of LGG were shown in the light microscopy image as darkcolored
globules embedded in the alginate-gum matrix (Fig. 2A).
The presence of Hi-Maize in the microcapsules was evident fromHi-Cap in the microcapsules was not visibly evident from the light
microscopy image. The use of FTIR to verify the presence of Hi-Cap
in the microcapsules was limited by the low composition of Hi-Cap
(up to 0.6% w/v) compared to alginate at 1.5% (w/v). The FTIR
spectra in Fig. 5A showed high similarities between the spectrum of
the native Hi-Cap and that of the alginate-gum microcapsules (with
and without Hi-Cap) as they shared similar chemical functional
groups. A broad band at 3400 cm1 was attributed to the OH group
vibration, a broad symmetrical band at 1610 cm1 and a narrower
symmetrical band at 1424 cm1 were both attributed to the
stretching of the COO- group, whereas bands at 1080 cm1 and
1024 cm1 corresponded to the stretching of COH and CO bonds,
respectively. These identified bands were in agreement with the
previously reported FTIR spectra of alginate microcapsules and
OSA-modified starch (Fontes, Calado, Rossi, & da Rocha-Leao, 2013;
Lawrie et al., 2007).
Thus far, the functional groups that were identified from the
major bands in the FTIR spectra were present in both of the
microcapsules prepared with and without Hi-Cap. As a result, they
could not be used to verify the presence of Hi-Cap in the microcapsules.
In the fingerprint region, however, a band at 992 cm1
was clearly present in the spectrum of the native Hi-Cap, but was
noticeably absent in the spectrum of the microcapsules prepared
without Hi-Cap (Fig. 5A). This band was attributed to the out of
plane bend of the CH bond in the aliphatic tail of Hi-Cap (Coates,
2000). Importantly, a small band appeared at the same position
in the spectrum of the microcapsules prepared with Hi-Cap verifying
its presence in the microcapsules. The small size of the band
caused by the low composition of Hi-Cap in the microcapsules,
however, indicated that a further verification step was needed.
The presence of Hi-Capwas further verified using SEM images of
the freeze-dried LGG biofilm microcapsules. After freeze drying, the
size of the microcapsules (with or without Hi-Cap) was reduced to
approximately 400e500 mm owed to the swelling of the alginategum-
starch matrix in aqueous environment, while remained
roughly spherical in shape (Fig. 5B). SEM imaging of a crosssectional
cut of the dry microcapsules prepared without Hi-Cap
revealed a relatively smooth surface (Fig. 5C). In contrast, the
cross-sectional surface of the dry microcapsules prepared with Hi-Cap was significantly rougher (Fig. 5D). The surface roughness was
thus attributed to a successful addition of Hi-Cap in the microcapsules.
In this regard, cross-sectional cuts of the microcapsules
were used to avoid imaging of the chitosan coating.
3.2 ไมโครแคปซูล LGG ไบโอฟิล์มปรุงด้วยแป้งทน (Hi-
ข้าวโพด)
ไมโครแคปซูล LGG ไบโอฟิล์มได้จัดทำประสบความสำเร็จใน
การปรากฏตัวของ Hi-ข้าวโพด โดยไม่ต้อง Hi-ข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ที่มีความหนาแน่นสูงไบโอฟิล์ม
อาณานิคมของ LGG ที่แสดงในภาพแสงกล้องจุลทรรศน์เป็น darkcolored
ข้นที่ฝังอยู่ในเมทริกซ์อัลจิเนตหมากฝรั่ง (รูป. 2A).
การปรากฏตัวของ Hi-ข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ในไมโครแคปซูลที่เห็นได้ชัด fromHi-Cap ในไมโครแคปซูลที่ไม่ได้อย่างเห็นได้ชัดเห็นได้ชัดจากแสง
ภาพกล้องจุลทรรศน์ การใช้ FTIR เพื่อตรวจสอบสถานะของ Hi-หมวก
ในไมโครแคปซูลถูก จำกัด ด้วยองค์ประกอบต่ำของ Hi-Cap
(ไม่เกิน 0.6% w / v) เมื่อเทียบกับอัลจิเนตที่ 1.5% (w / v) FTIR
สเปกตรัมในรูป 5A แสดงให้เห็นความคล้ายคลึงกันสูงระหว่างสเปกตรัมของ
พื้นเมือง Hi-Cap และของไมโครแคปซูลอัลจิเนตหมากฝรั่ง (ที่มี
และไม่มี Hi-Cap) ขณะที่พวกเขาร่วมกันทางเคมีคล้ายการทำงาน
กลุ่ม วงดนตรีในวงกว้างที่ 3400 ซม. 1 ถูกนำมาประกอบกับกลุ่ม OH
สั่นสะเทือนเป็นวงกว้างสมมาตรที่ 1610 ซม. 1 และแคบ
วงสมมาตรที่ 1424 ซม. 1 ทั้งสองมาประกอบกับ
การยืดของกลุ่ม COO- ขณะที่วงดนตรี 1080 ซม. 1 และ
1024 ซม. 1 ตรงกับยืดของ COH และ CO พันธบัตร
ตามลำดับ วงดนตรีที่ระบุเหล่านี้อยู่ในข้อตกลงกับ
รายงานก่อนหน้านี้สเปกตรัม FTIR ของไมโครแคปซูลอัลจิเนตและ
แป้ง OSA แก้ไข (Fontes, Calado รอสซีและ Da Rocha-Leao, 2013;
. ลอว์, et al, 2007).
ป่านนี้กลุ่มการทำงานที่ ถูกระบุจาก
วงดนตรีที่สำคัญในสเปกตรัม FTIR มีอยู่ในทั้งสองด้านของ
ไมโครแคปซูลที่เตรียมไว้มีและไม่มี Hi-Cap เป็นผลให้พวกเขา
ไม่สามารถใช้เพื่อตรวจสอบสถานะของ Hi-Cap ในไมโครแคปซูลได้.
ในภูมิภาคลายนิ้วมือ แต่วงที่ 992 ซม. 1
ได้อย่างชัดเจนอยู่ในสเปกตรัมของพื้นเมือง Hi-Cap แต่ก็
อย่างเห็นได้ชัดอยู่ในสเปกตรัมของไมโครแคปซูลที่เตรียมไว้
โดยไม่ต้อง Hi-Cap (รูป. 5A) วงนี้เป็นผลมาจากการออกจาก
โค้งระนาบของพันธบัตร CH ในหาง aliphatic ของ Hi-Cap (โคทส์,
2000) ที่สำคัญเป็นวงดนตรีขนาดเล็กปรากฏอยู่ที่ตำแหน่งเดียวกัน
ในสเปกตรัมของไมโครแคปซูลที่เตรียม Hi-Cap ตรวจสอบ
การแสดงตนในไมโครแคปซูล ขนาดที่เล็กของวงดนตรี
ที่เกิดจากองค์ประกอบต่ำของ Hi-Cap ในไมโครแคปซูล,
แต่ชี้ให้เห็นว่าขั้นตอนการตรวจสอบต่อไปเป็นสิ่งที่จำเป็น.
การปรากฏตัวของ Hi-Capwas ต่อการตรวจสอบการใช้ภาพ SEM ของ
แช่แข็งแห้ง LGG ไมโครไบโอฟิล์ม หลังจากการอบแห้งแช่แข็งที่
ขนาดของไมโครแคปซูล (มีหรือไม่มี Hi-Cap) ลดลงเหลือ
ประมาณ 400e500 มมที่ค้างชำระให้อาการบวมของ alginategum-
เมทริกซ์แป้งในสภาพแวดล้อมของน้ำในขณะที่ยังคง
รูปทรงกลมในรูป (รูป. 5B) การถ่ายภาพ SEM ของ crosssectional
ตัดของไมโครแคปซูลแห้งโดยไม่ต้องเตรียม Hi-Cap
เผยให้เห็นพื้นผิวค่อนข้างเรียบ (รูป. 5C) ในทางตรงกันข้าม
ผิวหน้าตัดของไมโครแคปซูลแห้งปรุงด้วย Hi-Cap หยาบอย่างมีนัยสำคัญ (รูป. 5D) พื้นผิวที่ขรุขระได้รับ
จึงนำมาประกอบกับนอกจากนี้ที่ประสบความสำเร็จของ Hi-Cap ในไมโครแคปซูล.
ในเรื่องนี้ตัดตัดของไมโครแคปซูล
ถูกนำมาใช้เพื่อหลีกเลี่ยงการถ่ายภาพของสารเคลือบผิวไคโตซาน
การแปล กรุณารอสักครู่..
