Quantitative real-time PCR
The expression levels of three newly identified cytochrome
P450 (CYP6A40, CYP6D8 and CYP6G4) in different life stages (egg,
3d-larva, 3d-pupa and 3d-adult) in the two laboratory strains
(TJS and BJD) and the tissue transcription profiles of eight P450
genes (the three novel P450s and five P450s previously reported
to be over-expressed in other pyrethroid resistance house fly populations)
in different population house flies (3d-female adults)
were analyzed by quantitative real-time PCR (qRT-PCR) using a
Mx3000P qPCR System (Stratagene, USA) and RealMasterMix SYBR
Green PCR kit (Tiangen, China). The b-actin gene and RPS3 (ribosomal
protein S3) were used as the reference genes to normalize
expression level of P450 genes among different samples. The ten
specific primers for qRT-PCR were listed in Table 1. The primer
specificity was checked by a melt curve analysis (MxPro 4.0 program,
Stratagene) and by sequencing of the PCR products. Amplification
efficiency was determined by a standard curve based on
10 fold dilution series of cDNA templates, and amplification efficiency
of 100 ± 5% was accepted. Reactions were run in a 25 lL
mixture containing 12.5 lL RealMasterMix/SYBR solution, 0.5 lL
each forward and reverse primer (10 lM), and 3.5 lL cDNA template
with the following reaction conditions: 95 C for 10 min, followed
by 45 cycles of 95 C for 15 s, 58 C for 30 s and 68 C for
15 s. The melting temperatures of amplicons were measured by
taking continuous fluorescence reading whilst increasing temperature
from 58 to 95 C with 0.5 C for 10 s at each step. Each experiment
was repeated with three independent RNA samples as
biological replicates, and each cDNA sample or template-free control
was performed three times as technical replicates. The relative
expression levels of P450 genes were calculated by the 2DDCT
method as described by Livak and Schmittgen [35]. Results were
expressed as mean ± SE of three biological replicates. One-way
analysis of variance (ANOVA) and Student’s t-test were performed
to determine the statistical difference between means (SPSS, version
13). A p-value
เชิงปริมาณแบบ real-time PCR
ระดับการแสดงออกของสาม cytochrome ระบุใหม่
P450 (CYP6A40, CYP6D8 และ CYP6G4) ในช่วงชีวิตที่แตกต่างกัน (ไข่
3d-อ่อน, 3d-ดักแด้และ 3d ผู้ใหญ่) ในสองสายพันธุ์ในห้องปฏิบัติการ
(TJS และ BJD) และรูปแบบการถอดความเนื้อเยื่อแปด P450
ยีน (สามนวนิยาย P450s และห้า P450s
รายงานก่อนหน้านี้ที่จะเป็นมากกว่าการแสดงในบ้านต้านทานอื่นๆ ไพรีทรอยด์ประชากรบิน)
ในแมลงวันบ้านประชากรแตกต่างกัน (ผู้ใหญ่ 3 มิติหญิง)
วิเคราะห์ตามเวลาจริงเชิงปริมาณ PCR (qRT-PCR) โดยใช้
Mx3000P qPCR ระบบ (Stratagene สหรัฐอเมริกา) และ RealMasterMix SYBR
ชุดสีเขียว PCR (Tiangen, จีน) ยีน B-โปรตีนและ RPS3
(ไรโบโซมโปรตีนS3)
ถูกนำมาใช้เป็นยีนอ้างอิงที่จะปรับระดับการแสดงออกของยีนP450 หมู่ตัวอย่างที่แตกต่างกัน สิบไพรเมอร์ที่เฉพาะเจาะจงสำหรับ qRT-PCR มีการระบุไว้ในตารางที่ 1 ไพรเมอร์ที่เฉพาะเจาะจงได้รับการตรวจสอบโดยการวิเคราะห์โค้งละลาย(MxPro 4.0 โปรแกรมStratagene) และลำดับของผลิตภัณฑ์พีซีอาร์ ขยายประสิทธิภาพถูกกำหนดโดยเส้นโค้งมาตรฐานขึ้นอยู่กับ10? พับชุดลดสัดส่วนของแม่ cDNA และประสิทธิภาพการขยาย100 ± 5% ได้รับการยอมรับ ปฏิกิริยาวิ่งใน 25 จะมีส่วนผสมที่มี12.5 จะ RealMasterMix / แก้ปัญหา SYBR, 0.5 LL แต่ละข้างหน้าและไพรเมอร์กลับ (10 LM) และ 3.5 แม่แบบของยีนจะมีเงื่อนไขปฏิกิริยาต่อไปนี้: 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 นาทีตาม45 รอบ 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 วินาที, 58 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 และ 68 องศาเซลเซียสสำหรับ15 วินาที อุณหภูมิหลอมละลายของ amplicons ถูกวัดโดยการอ่านอย่างต่อเนื่องในขณะที่เรืองแสงเพิ่มอุณหภูมิ58-95 องศาเซลเซียส 0.5? C เป็นเวลา 10 วินาทีในแต่ละขั้นตอน แต่ละการทดลองซ้ำกับสามตัวอย่าง RNA อิสระซ้ำทางชีวภาพและแต่ละตัวอย่างยีนหรือการควบคุมแม่แบบฟรีได้ดำเนินการสามครั้งเป็นซ้ำทางเทคนิค เทียบระดับการแสดงออกของยีน P450 ถูกคำนวณโดย 2? DDCT วิธีการตามที่อธิบาย Livak และ Schmittgen [35] ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นค่าเฉลี่ย± SE สามซ้ำทางชีวภาพ วิธีการหนึ่งที่วิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) และนักศึกษา t-test ได้ดำเนินการเพื่อตรวจสอบความแตกต่างทางสถิติระหว่างหมายความว่า(SPSS, รุ่น13) p-value <0.05 ได้รับการพิจารณาอย่างมีนัยสำคัญ
การแปล กรุณารอสักครู่..
