shown). This is an indirect indicat

shown). This is an indirect indication that p25 CP expression
could also vary since both transgenes, uidA
and p25 CP, were located at the same T-DNA and
therefore they were inserted at the same site in the
plant genome, and also expression of both transgenes
was under the control of the CaMV 35S promoter.
Influence of developmental stimuli in transgene expression
and consequently in the efficiency of PDR
has been previously reported (Pang et al. 1996). On
the other hand, activation of expression of silenced
marker transgenes after virus inoculation has been
found associated to the expression of viral suppressors
of gene silencing (Voinnet 2001). Interestingly,
in our experiments fluctuation of GUS expression
only occurred in transgenic plants from the SCP.15
line, suggesting that it was related with an specific
integration pattern and/or integration site. Since GUS
expression was stable in all the plants from the rest
of the lines, variable dose of inoculum and/or inoculation
with different viral populations better explained
the characteristics of the protection phenotype for
these transgenic plants.
In all the 42 transgenic lines evaluated at least one
intact copy of the p25 CP expression cassette was detected,
and p25 CP accumulation was confirmed in 38
of these lines. Transgenic lines that showed protection
against virus infection generally accumulated
p25 CP at high or moderate level. Susceptibility was
found in lines that expressed low level or no p25 CP,
except for line SCP.14 that was highly susceptible and
showed high level accumulation of p25 CP. These results
suggest that in most cases protection was conferred
by the accumulation of the p25 CP in the transgenic
plants. Transgenic line SCP.15 was an
exception, since it showed low p25 CP accumulation
and high level of protection. Therefore, we can not
discard a different protection mechanism, as RNAmediated
resistance, for the SCP.15 line.
The protection observed was not affected by the
CTV strain used to prepare the p25 CP transgene nor
by the inoculation system. Transgenic lines MCP.24,
that carried the p25 CP gene from CTV T-317, and
SCP.10, SCP.11, SCP.13, SCP.15 and SCP.16, carrying
the p25 CP gene from CTV T-305, showed similar
protection against CTV T-305 inoculated by grafting,
or CTV T-300 inoculated by aphid feeding,
although the ratio of transgenic lines that showed protection
against T-305 was higher in those carrying the
p25 CP gene from T-305 (5 out of 25) than in those
with the p25 CP gene from T-317 (1 out of 17). Nucleotide
identity between the p25 CP gene of T-305
8
and T-317 is 91.4% whereas amino acid identity is
94.6%, which indicates that homologous protection
seemed to be more efficient in the transgenic plants.
In citrus growing areas where highly virulent CTV
isolates are common, cross protection with mild isolates
has been the only approach to reduce yield
losses in some genotypes (Costa and Müller 1980).
Although only a moderate protection level was
achieved in transgenic lime plants expressing the p25
CP gene in greenhouse experiments under aggressive
challenge conditions, performance of these plants in
field trials has to be determined. However, it should
be stated that even if a 3-year delay is gained, this
would be insufficient to protect the crop against CTV
for the whole productive life of the tree. In summary,
we report here protection against CTV in transgenic
citrus plants expressing its p25 CP gene. This study
demonstrates for the first time that PDR can be extended
to a member of the Closteroviridae family of
plant viruses and to its natural host. Furthermore, in
the future it may provide a possible alternative to
cross protection for the efficient control of the devastating
tristeza disease.
Acknowledgements
The authors wish to thank Dr Antonio Olmos, Carlos
Marroquín, José Antonio Pina and Maria Teresa Gorris
for their technical assistance. This research was
supported by grants from the Instituto Nacional de
Investigaciones Agrarias (SC97-102, SC97-098 and
RTA01-120), from CICYT-European Union (1FD97-
0822) and a fellowship provided by Generalitat Valenciana
to the first author.
References
Agranovsky A.A., Lesemann D.E., Maiss E., Hull R. and Atabekov
J. 1995.
Rattlesnake
structure of a filamentous plant RNA virus
built of two capsid proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. 92:
2470–2473.
Bar-Joseph M., Marcus R. and Lee R.F. 1989. The continuous
challenge of citrus tristeza virus control. Ann. Rev. Phytopathol.
27: 291–316.
Baulcombe D.C. 1996. Mechanisms of pathogen derived resistance
to virus in transgenic plants. Plant Cell 8: 1833–1844.
Beachy R.N. 1997. Mechanisms and applications of pathogen-derived
resistance in transgenic plants. Curr. Opin. Biotechnol. 8:
215–220.
Cambra M., Garnsey S.M., Permar T

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

แสดง) นี้เป็นข้อบ่งชี้ทางอ้อมที่ p25 CP นิพจน์อาจแตกต่างกันตั้งแต่ทั้ง transgenes, uidAและ p25 CP มีอยู่ที่เดียวกัน T DNA และดังนั้น พวกเขาได้แทรกที่ไซต์เดียวกันในการกลุ่มโรงงาน และค่าของ transgenes ทั้งสองที่อยู่ภายใต้การควบคุมของโปรโมเตอร์ 35S CaMVอิทธิพลของสิ่งเร้าที่พัฒนาในนิพจน์ transgeneและจากนั้นในประสิทธิภาพของลาวได้รายงานไปก่อนหน้านี้ (ปาง et al. 1996) บนมืออื่น ๆ การเปิดใช้งานของ silencedเครื่องหมาย transgenes หลังจากได้รับไวรัส inoculationพบเกี่ยวข้องกับนิพจน์ของไวรัส suppressorsของยีน silencing (Voinnet 2001) เป็นเรื่องน่าสนใจในความผันผวนของนิพจน์ GUS ทดลองของเราเกิดขึ้นเฉพาะ ในพืชถั่วเหลืองจาก SCP.15บรรทัด แนะนำที่เกี่ยวข้องให้กับเฉพาะการรวมรูป/ รวมเว็บไซต์ ตั้งแต่ GUSนิพจน์ที่มีเสถียรภาพในพืชทั้งหมดจากบรรทัด ยาผันแปรของ inoculum / inoculationมีประชากรแตกต่างกันไวรัสดีกว่าอธิบายลักษณะของ phenotype ป้องกันสำหรับพืชเหล่านี้ถั่วเหลืองในทั้งหมด 42 ถั่วเหลืองบรรทัดการประเมินอย่างน้อย 1พบสำเนาเทปนิพจน์ CP p25 เหมือนเดิมและ p25 สะสม CP ได้รับการยืนยันใน 38ของรายการเหล่านี้ ถั่วเหลืองบรรทัดที่แสดงให้เห็นว่าการป้องกันกับติดเชื้อไวรัสทั่วไปสะสมCP p25 ในระดับสูง หรือปานกลาง มีภูมิไวรับในบรรทัดที่แสดงในระดับต่ำหรือไม่ p25 CPเว้นบรรทัด SCP.14 ที่ไวต่อสูง และพบสะสมระดับสูงของ p25 CP ผลลัพธ์เหล่านี้แนะนำว่า ในกรณีส่วนใหญ่ ป้องกันได้รางวัลโดยสะสมของ CP p25 ถั่วเหลืองรดน้ำต้นไม้ ถั่วเหลืองบรรทัด SCP.15 ได้ข้อยกเว้น เนื่องจากพบว่าสะสม CP p25 ต่ำและการป้องกันในระดับสูง ดังนั้น เราไม่สามารถยกเลิกระบบป้องกันต่าง ๆ เป็น RNAmediatedต้านทาน บรรทัด SCP.15ป้องกันการสังเกตไม่ได้รับผลกระทบจากการต้องใช้ CTV ที่ใช้ในการเตรียม p25 CP transgene หรือโดยระบบ inoculation ถั่วเหลืองบรรทัด MCP.24ที่ทำยีน CP p25 จาก CTV T-317 และSCP.10, SCP.11, SCP.13, SCP.15 และ SCP.16 ดำเนินการยีน CP p25 จาก CTV T-305 แสดงให้เห็นคล้ายกันป้องกัน inoculated โดย grafting, 305 CTV Tหรือ CTV T-300 inoculated โดย aphid อาหารแม้ว่าอัตราส่วนของถั่วเหลืองสายที่แสดงให้เห็นว่าการป้องกันกับ T 305 สูงกว่าผู้ดำเนินการยีน CP p25 จาก T-305 (5 จาก 25) กว่าผู้มียีน CP p25 จาก T-317 (1 จาก 17) นิวคลีโอไทด์ตัวระหว่างยีน CP p25 ของ T-3058และ T-317 91.4% ในขณะที่กรดอะมิโนตัวที่เป็น94.6% ซึ่งบ่งชี้ว่า ป้องกัน homologousดูเหมือนจะ มีประสิทธิภาพมากกว่าในพืชถั่วเหลืองในส้มเจริญเติบโตบริเวณสูง virulent CTVแยกใช้กันทั่วไป ข้ามป้องอ่อนแยกมีวิธีเดียวในการลดผลผลิตขาดทุนในการศึกษาจีโนไทป์บาง (คอสและ Müller 1980)แม้เป็นเพียงระดับปานกลางป้องกันประสบความสำเร็จในพืชมะนาวถั่วเหลืองแสดง p25ยีน CP ในเรือนกระจกทดลองภายใต้การก้าวร้าวความท้าทายเงื่อนไข ประสิทธิภาพของพืชเหล่านี้ฟิลด์การทดลองได้ถูกกำหนด อย่างไรก็ตาม ก็ควรสามารถระบุที่แม้ว่าระหว่าง 3 ปีจะได้รับ นี้จะไม่เพียงพอเพื่อป้องกันพืชจาก CTVชีวิตมีประสิทธิภาพทั้งหมดของแผนภูมิ ในสรุปเรารายงานนี่ป้องกัน CTV ในถั่วเหลืองพืชส้มแสดงของยีน CP p25 การศึกษานี้แสดงให้เห็นเป็นครั้งแรกที่ลาวสามารถขยายให้กับสมาชิกในครอบครัว Closteroviridaeไวรัสของพืช และโฮสต์ของธรรมชาติ นอกจากนี้ ในอนาคตอาจให้ทางเลือกเป็นไปได้ข้ามป้องกันการควบคุมมีประสิทธิภาพการทำลายล้างtristeza โรคถาม-ตอบผู้เขียนต้องขอขอบคุณดร. Antonio Olmos, CarlosMarroquín พีนา Antonio José และมาเรียเทเรซ่า Gorrisการความช่วยเหลือทางเทคนิค งานวิจัยนี้ได้สนับสนุนเงินอุดหนุนจากเด Instituto NacionalInvestigaciones Agrarias (SC97-102, SC97 098 และRTA01-120), จากที่สหภาพยุโรป CICYT (1FD97-0822) และการสามัคคีธรรมโดย Valenciana คุ้มค่าถึงผู้เขียนแรกการอ้างอิงอ.ศศ. Agranovsky, Lesemann D.E., E. Maiss ฮัลล์ R. และ Atabekovเจ. 1995 งูหางกระดิ่งโครงสร้างของพืช filamentous อาร์เอ็นเอไวรัสสร้างโปรตีน capsid สอง Proc. Natl. Acad. Sci. 92:2470-2473ม. โจเซฟบาร์ R. มาร์คัส และลี R.F. 1989 การอย่างต่อเนื่องความท้าทายการควบคุมไวรัส tristeza ส้ม ย้อนหลัง ann. Phytopathol27:291-316Baulcombe ดีซีปี 1996 กลไกของการศึกษาได้รับการต้านทานกับไวรัสในพืชถั่วเหลือง พืชเซลล์ 8:1833-1844นอน R.N. 1997 กลไกและการใช้งานของการศึกษามาความต้านทานในพืชถั่วเหลือง สกุลเงิน Opin Biotechnol 8:215-220T Cambra เมตร Garnsey S.M., Permar

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

แสดง) นี้เป็นข้อบ่งชี้ทางอ้อมว่าการแสดงออก CP P25
ยังสามารถแตกต่างกันไปตั้งแต่ transgenes ทั้งสอง uidA
และ P25 ซีพีตั้งอยู่ที่เดียวกัน T-DNA
และดังนั้นพวกเขาจึงถูกแทรกที่เว็บไซต์เดียวกันในจีโนมของพืชและการแสดงออกของ
transgenes
ทั้งเป็นภายใต้การควบคุมของโปรโมเตอร์ CaMV 35S. the อิทธิพลของการกระตุ้นพัฒนาการในการแสดงออกของยีนและส่งผลในประสิทธิภาพของสปปได้รับการรายงานก่อนหน้านี้(ปาง et al. 1996) บนมืออื่น ๆ ที่เปิดใช้งานของการแสดงออกของความเงียบ transgenes เครื่องหมายหลังจากการฉีดวัคซีนไวรัสได้รับการค้นพบที่เกี่ยวข้องกับการแสดงออกของsuppressors ไวรัสของสมรยีน(Voinnet 2001) ที่น่าสนใจในความผันผวนของการทดลองของเราในการแสดงออก GUS เฉพาะที่เกิดขึ้นในพืชดัดแปรพันธุกรรมจาก SCP.15 สายบอกว่ามันเป็นที่ที่เกี่ยวข้องกับเฉพาะรูปแบบบูรณาการและ / หรือเว็บไซต์บูรณาการ ตั้งแต่ GUS แสดงออกมีเสถียรภาพในพืชทั้งหมดจากส่วนที่เหลือของเส้นยาตัวแปรของเชื้อและ / หรือการฉีดวัคซีนกับประชากรของไวรัสที่แตกต่างกันดีกว่าอธิบายลักษณะของฟีโนไทป์การป้องกันสำหรับพืชดัดแปรพันธุกรรมเหล่านี้. ทั้งหมด 42 สายพันธุ์ได้รับการประเมินอย่างน้อย หนึ่งสำเนาเหมือนเดิมของเทปการแสดงออกP25 ซีพีได้รับการตรวจพบและการสะสมP25 ซีพีได้รับการยืนยันใน 38 ของเส้นเหล่านี้ สายการดัดแปรพันธุกรรมที่แสดงให้เห็นการป้องกันการติดเชื้อไวรัสสะสมทั่วไปP25 ซีพีอยู่ในระดับสูงหรือปานกลาง ไวถูกพบในเส้นที่แสดงระดับต่ำหรือไม่มี CP P25, ยกเว้น SCP.14 สายที่เป็นความเสี่ยงที่สูงและแสดงให้เห็นว่าการสะสมระดับสูงของซีพีP25 ผลการศึกษานี้แสดงให้เห็นว่าในการป้องกันกรณีส่วนใหญ่ได้รับการปรึกษาจากการสะสมของP25 ซีพีในยีนของพืช สายการดัดแปรพันธุกรรม SCP.15 เป็นข้อยกเว้นเพราะมันแสดงให้เห็นว่าการสะสมCP P25 ต่ำและระดับสูงของการป้องกัน ดังนั้นเราจึงไม่สามารถยกเลิกการเป็นกลไกการป้องกันที่แตกต่างกันเช่น RNAmediated ต้านทานสำหรับสาย SCP.15 ได้. การป้องกันที่สังเกตไม่ได้รับผลกระทบจากความเครียด CTV ใช้ในการเตรียมยีน P25 ซีพีหรือโดยระบบการฉีดวัคซีน ดัดแปรพันธุกรรมสาย MCP.24, ที่ดำเนิน P25 ยีน CP จาก CTV T-317 และSCP.10, SCP.11, SCP.13, SCP.15 และ SCP.16 ถือP25 ยีน CP จาก CTV T-305, แสดงให้เห็นว่าคล้ายป้องกันCTV T-305 เชื้อโดยการรับสินบนหรือCTV T-300 เชื้อโดยการให้อาหารเพลี้ยแม้ว่าอัตราส่วนของสายพันธุ์ที่แสดงให้เห็นว่าการป้องกันกับT-305 เป็นที่สูงขึ้นในผู้ถือP25 ยีน CP จาก T-305 (5 จาก 25) กว่าในผู้ที่มียีนP25 CP จาก T-317 (1 ใน 17) เบสตัวตนระหว่าง P25 ยีน CP T-305 8 และ T-317 เป็น 91.4% ในขณะที่ตัวตนของกรดอะมิโนเป็น94.6% ซึ่งบ่งชี้ว่าการป้องกันคล้ายคลึงกันดูเหมือนจะมีประสิทธิภาพมากขึ้นในพืชดัดแปรพันธุกรรม. ในส้มพื้นที่ปลูกที่รุนแรงสูง CTV สายพันธุ์ที่มีการร่วมกันป้องกันข้ามกับสายพันธุ์ที่ไม่รุนแรงได้รับวิธีการเดียวที่จะลดอัตราผลตอบแทนจากการสูญเสียในบางสายพันธุ์(Costa Müllerและ 1980). แม้ว่าจะมีเพียงระดับการป้องกันในระดับปานกลางได้รับการประสบความสำเร็จในพืชมะนาวพันธุ์แสดง P25 ยีน CP ในการทดลองเรือนกระจกภายใต้ก้าวร้าวเงื่อนไขท้าทายประสิทธิภาพของพืชเหล่านี้ในการทดลองภาคสนามจะต้องมีการกำหนด แต่ก็ควรจะระบุว่าแม้ว่าความล่าช้า 3 ปีจะได้รับนี้จะไม่เพียงพอที่จะปกป้องพืชกับCTV สำหรับชีวิตของการผลิตทั้งหมดของต้นไม้ โดยสรุปเรารายงานที่นี่การป้องกัน CTV ในพันธุ์พืชส้มแสดงยีนP25 ซีพี การศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นเป็นครั้งแรกที่สปปสามารถขยายไปยังสมาชิกของครอบครัวClosteroviridae ของไวรัสพืชและเป็นเจ้าภาพตามธรรมชาติของมัน นอกจากนี้ในอนาคตก็อาจจะให้เป็นทางเลือกที่เป็นไปได้ที่จะข้ามการป้องกันสำหรับการควบคุมที่มีประสิทธิภาพของการทำลายล้างโรคtristeza. คำนิยมผู้เขียนขอขอบคุณดร Olmos อันโตนิโอคาร์ลอMarroquín, Jose Antonio Pina และมาเรียเทเรซา Gorris สำหรับความช่วยเหลือด้านเทคนิคของพวกเขา งานวิจัยนี้ได้รับการสนับสนุนโดยทุนจาก Instituto Nacional de Investigaciones Agrarias (SC97-102, SC97-098 และRTA01-120) จากสหภาพยุโรป CICYT (1FD97- 0822) และมิตรภาพให้โดย Generalitat Valenciana ที่ผู้เขียนเป็นครั้งแรก. อ้างอิงAgranovsky AA, Lesemann DE, Maiss อีฮัลล์อาร์และ Atabekov เจ 1995? งูกะปะ? โครงสร้างของไวรัส RNA พืชเส้นใยที่สร้างขึ้นจากสองโปรตีนcapsid พร Natl Acad วิทย์ 92: 2470-2473. บาร์โจเซฟเมตรมาร์คัสอาร์และลี RF ปี 1989 อย่างต่อเนื่องกับความท้าทายของการควบคุมส้มtristeza ไวรัส แอน รายได้ Phytopathol. 27: 291-316. Baulcombe DC 1996 กลไกของเชื้อโรคที่ได้รับความต้านทานต่อเชื้อไวรัสในพืชดัดแปรพันธุกรรม เซลล์พืชที่ 8: 1833-1844. Beachy RN 1997 กลไกและการใช้งานของเชื้อโรคที่ได้มาจากความต้านทานในพืชดัดแปรพันธุกรรม ฟี้ Opin Biotechnol 8: 215-220. Cambra เมตร Garnsey เอสเอ็ม Permar T

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

แสดง ) นี้เป็นข้อบ่งชี้ทางอ้อมที่ p25 CP การแสดงออกอาจแตกต่างกันไปตั้งแต่ transgenes
,
p25 uida และซีพี ตั้งอยู่ที่ t-dna เดียวกันและ
จึงแทรกอยู่ในพื้นที่เดียวกันใน
พืชจีโนม และการแสดงออกของทั้งคู่ transgenes
อยู่ภายใต้การควบคุมของ 35S CaMV promoter .
อิทธิพล กระตุ้นพัฒนาการในการแสดงออกของยีน
และจากนั้นในประสิทธิภาพของ สปป.ลาว
ได้รับรายงานก่อนหน้านี้ ( ปาง et al . 1996 ) บน
มืออื่น ๆ , การกระตุ้นการแสดงออกของเงียบ
transgenes เครื่องหมายหลังจากได้รับเชื้อ ไวรัส
พบเกี่ยวข้องกับการแสดงออกของยีนไซเลนซิงไวรัส suppressors
( voinnet 2001 ) ทั้งนี้ ในการทดลองการเปลี่ยนแปลงของเรา

กัส การแสดงออกที่เกิดขึ้นเฉพาะในต้นพืชจาก SCP . 15
บรรทัดว่ามันเกี่ยวข้องกับเฉพาะ
รวมรูปแบบและ / หรือเว็บไซต์รวม เนื่องจากการแสดงออกกัส
มีเสถียรภาพในพืชทั้งหมดจากส่วนที่เหลือ
ของเส้นตัวแปรปริมาณของเชื้อ และ / หรือ การฉีดวัคซีน
ที่มีไวรัสประชากรดีกว่าอธิบาย
ลักษณะของการคุ้มครองสำหรับ
พืชข้ามพันธุ์เหล่านี้
ในทั้งหมด 42 ต้นสายประเมินอย่างน้อยหนึ่ง
เหมือนเดิมคัดลอกของ p25 CP การแสดงออกตลับตรวจพบ
p25 CP และสะสมได้รับการยืนยันใน 38
ของเส้นเหล่านี้ ต้นสายที่แสดงการต่อต้านการติดเชื้อไวรัสโดยทั่วไปสะสม

p25 CP ในระดับสูง หรือปานกลาง ความไวคือ
พบในบรรทัดที่แสดงระดับต่ำหรือไม่ p25 CP
ยกเว้นสายระบบ .นั่นคือความเสี่ยงต่อการสะสมและแสดงระดับสูงของ p25

. ผลลัพธ์เหล่านี้ชี้ให้เห็นว่าในกรณีส่วนใหญ่ป้องกันแอนด์
โดยการสะสมของ p25 CP ในพืชต้น

scp.15 สายพันธุกรรมเป็น
ข้อยกเว้นเนื่องจากพบน้อย p25 CP สะสม
และระดับสูงของการคุ้มครอง ดังนั้นเราจึงไม่สามารถ
ยกเลิกกลไกการป้องกันที่แตกต่างกัน เช่น rnamediated
ความต้านทาน สำหรับ scp.15 บรรทัด การสังเกต

ทีวีสี ได้รับผลกระทบ โดยสายพันธุ์ที่ใช้ในการเตรียม p25 CP ยีนหรือ
โดยระบบการฉีดวัคซีน MCP สายพันธุกรรม . 24
ที่แบก p25 CP ( CTV t-317 และ
scp.10 scp.11 scp.13 , , , และ scp.15 scp.16 ถือ
p25 CP ( CTV t-305 พบการป้องกันที่คล้ายกันกับการปลูกโดย CTV t-305

,หรือ CTV t-300 เชื้ออ่อนนม
ถึงแม้ว่าอัตราส่วนของต้นสายที่พบการป้องกัน
กับ t-305 สูงกว่าผู้ถือ
p25 CP ยีนจาก t-305 ( 5 จาก 25 ) กว่าใน
กับ p25 CP ยีนจาก t-317 ( 1 ใน 17 ) นิวคลีโอไทด์
ตัวตนระหว่าง p25 CP ของยีน t-305
8
t-317 เป็นร้อยละ 72% และกรดอะมิโนเอกลักษณ์
94.6 %ซึ่งบ่งชี้ว่า โฮโมโลกัส คุ้มครอง
ดูเหมือนจะมีประสิทธิภาพมากขึ้นในพืชดัดแปรพันธุกรรม .
ในพื้นที่ปลูกส้มที่รุนแรงสูง CTV
สายพันธุ์ทั่วไปข้ามการป้องกันกับอ่อนสายพันธุ์
มีวิธีการเฉพาะเพื่อลดการสูญเสียผลผลิต
ในบางพันธุ์ ( Costa และ M ü ller 1980 ) .
แต่เพียงการป้องกันระดับ ปานกลาง พบได้ในพันธุ์มะนาว

p25 พืชได้แก่บริษัท ซีพี ออลล์ ยีนในโรงเรือนทดลองภายใต้เงื่อนไขที่ท้าทายก้าวร้าว
, ประสิทธิภาพของพืชเหล่านี้ใน
การทดลองสนามจะต้องมีการกําหนด . อย่างไรก็ตามมันควรจะ
) แม้ว่าความล่าช้า 3 ปีจะได้รับนี้
จะไม่เพียงพอที่จะปกป้องพืชกับ CTV
สำหรับชีวิตการผลิตทั้งหมดของต้นไม้ ในการสรุป ,
เรารายงานที่นี่ป้องกัน CTV ในพันธุกรรม
ส้มพืชแสดง p25 CP ของยีน การศึกษานี้แสดงให้เห็นเป็นครั้งแรกว่า

) สามารถขยายไปยังสมาชิกของครอบครัวของ closteroviridae
ไวรัสพืชและโฮสต์ของธรรมชาติ นอกจากนี้ ในอนาคตมันอาจให้

การป้องกันข้ามทางเลือกที่เป็นไปได้สำหรับการควบคุมโรคที่มีประสิทธิภาพของความเศร้า
ขอบคุณ

ผู้เขียนขอขอบคุณ ดร. อันโตนิโอ โอโมสคาร์ลอส
marroqu í n , โฮเซ อันโตนิโอ ปินะ และ มาเรีย เทเรซา gorris
สำหรับความช่วยเหลือด้านเทคนิคของพวกเขา งานวิจัยนี้ได้รับการสนับสนุนโดยการอนุญาตจาก

investigaciones Instituto Nacional de agrarias ( sc97-102 sc97-098
, และ rta01-120 ) จากสหภาพยุโรป cicyt ( 1fd97 -
0822 ) และมิตรภาพให้กับผู้เขียนโดยเจเนรัลลิตัต valenciana


อ้างอิงก่อนagranovsky ศิลปศาสตร์ lesemann d.e. maiss E , , , และเรืออาร์ atabekov
J 1995
งูกะปะ
โครงสร้างของเส้นใยพืช RNA ไวรัส
สร้างสองแคปซิดโปรตีน proc . NATL . ราช . สภาวะโลกร้อน 92 :
2470 –พ.ศ. .
บาร์โจเซฟเมตร มาคัส อาร์ และ ลี r.f. 1989 ความท้าทายอย่างต่อเนื่อง
ส้มเศร้าไวรัสควบคุม แอน บาทหลวง phytopathol .
ที่ 27 : 291 – 316 .
baulcombe DC 1996กลไกการต่อต้านเชื้อโรคและไวรัสในพืชดัดแปรพันธุกรรม
. เซลล์พืช 8 : 1833 – 1844 .
ชี่ร.น. 1997 กลไกและการใช้ยีนต้านทานเชื้อโรคในพืช
. curr . ระดม . biotechnol . 8 :

cambra 215 – 220 เมตร garnsey s.m. permar T

,