and raised in a greenhouse at the U

and raised in a greenhouse at the University of KwaZulu-Natal Botanical
Gardens, Pietermaritzburg, South Africa. Different explants (shoot-tip,
young leaf, petiole of young leaf and stem-cuttings) were collected in
a beaker and washed under running tap water for 2 min followed by
distilled water containing a few drops of liquid soap (Sunlight™).
Explants were surface decontaminated by soaking them in 70% ethanol
for 2 min followed by a 3.5% (m/v) NaOCl solution containing a few
drops of Tween 20 for 5 min. The explants were subsequently rinsed
four times with sterile distilled water. The surface decontaminated
explants were inoculated on full strength Murashige and Skoog (MS)
medium (Murashige and Skoog, 1962) containing 30 g l−1 sucrose
and 0.1 g l−1 myo-inositol with BA (0, 2.5, 5.0, 7.5, and 10.0 μM). The
pH of themedia were adjusted to 5.8with HCl or KOH before solidifying
with 8 g l−1 agar (Bacteriological agar—Oxoid Ltd., Basingstoke, Hampshire,
England) and autoclaving at 121 °C and 103 kPa for 20 min. Decontamination
frequency and shoot regeneration rate were recorded
after 8 weeks of culture. The use of shoot-tips as explants was selected
based on preliminary findings. Plant material was subsequently bulked
up by culturing shoot-tips on MS medium supplemented with 2.5 μM
BA and 0.54 μM α-naphthalene acetic acid (NAA). Cultures were
grown under constant light provided by cool white fluorescent tubes
(30 μmol m−2 s−1 photosynthetic photon flux) at 25 ± 2 °C.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

และในเรือนกระจกที่มหาวิทยาลัย KwaZulu Natal พฤกษสวน เพเตอร์แมริทส์เบิร์ก แอฟริกาใต้ Explants ต่าง ๆ (ยิงคำแนะนำใบอ่อน petiole ของใบอ่อนและก้าน cuttings) ได้รวบรวมไว้ในบีกเกอร์และประปาหินภายใต้การทำงาน 2 นาทีตามด้วยน้ำกลั่นที่ประกอบด้วยหยดสบู่เหลว (ซันไลท์™)Explants ถูกผิว decontaminated โดยชม 70% เอทานอลสำหรับ 2 นาทีตาม ด้วยโซลูชัน NaOCl 3.5% (m/v) ประกอบด้วยกี่หยด Tween 20 สำหรับ 5 นาที ต่อมาถูก rinsed explants ใบสี่เท่ากับน้ำกลั่นฆ่าเชื้อ ผิว decontaminatedexplants ถูก inoculated เต็มแรง Murashige และ Skoog (MS)ปานกลาง (Murashige และ Skoog, 1962) ประกอบด้วยซูโครส l−1 30 g0.1 g l−1 myo-inositol มี BA และ (0, 2.5, 5.0, 7.5 และ 10.0 μM) ที่มีปรับ pH ของ themedia 5.8with HCl หรือเกาะก่อนแข็งตัวมี 8 g l−1 agar (Bacteriological agar — Oxoid จำกัด Basingstoke แฮม เชียร์อังกฤษ) และ autoclaving ที่ 121 ° C และ 103 kPa สำหรับ 20 นาที Decontaminationบันทึกความถี่และอัตราฟื้นฟูยิงหลังจาก 8 สัปดาห์ของวัฒนธรรม เลือกใช้เคล็ดลับยิงเป็น explantsตามผลการวิจัยเบื้องต้น ต่อมาถูก bulked วัสดุโรงงานขึ้น โดย culturing ยิงเคล็ดลับใน MS กลางเสริม ด้วย 2.5 μMBA และ 0.54 μM α-แนฟทาลีนกรดอะซิติก (NAA) มีวัฒนธรรมปลูกภายใต้แสงที่คงที่โดยหลอดเรืองแสงสีขาวเย็น(30 μmol m−2 s−1 โฟตอน photosynthetic ฟลักซ์) ที่ 25 ± 2 องศาเซลเซียส

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

และเติบโตในเรือนกระจกที่มหาวิทยาลัย KwaZulu-Natal พฤกษศาสตร์
สวน Pietermaritzburg, แอฟริกาใต้ ชิ้นส่วนที่แตกต่างกัน (ยิงปลาย
ใบอ่อนก้านใบของใบอ่อนและลำต้นกิ่ง) ถูกเก็บไว้ใน
บีกเกอร์และล้างภายใต้การใช้น้ำประปาเป็นเวลา 2 นาทีตามด้วย
น้ำกลั่นที่มีไม่กี่หยดของสบู่เหลว (แสงแดด™).
ชิ้น ถูก decontaminated พื้นผิวโดยการแช่ไว้ในเอทานอล 70%
เป็นเวลา 2 นาทีตามด้วย 3.5% (m / v) การแก้ปัญหา NaOCl ที่มีไม่กี่
หยด Tween 20 เป็นเวลา 5 นาที ชิ้นต่อมาได้รับการล้าง
สี่ครั้งด้วยน้ำกลั่นผ่านการฆ่าเชื้อ พื้นผิว decontaminated
ชิ้นถูกเชื้อกับความแรงเต็มอาหารสูตร Murashige และ Skoog (MS)
กลาง (อาหารสูตร Murashige และ Skoog, 1962) ที่มี 30 GL-1 ซูโครส
และ 0.1 GL-1 myo-ทอปริญญาตรี (0, 2.5, 5.0, 7.5 และ 10.0 ไมครอน)
พีเอชของ themedia ถูกปรับให้ 5.8with HCl หรือ KOH ก่อนที่จะแข็งตัว
กับ 8 GL-1 อาหารเลี้ยงเชื้อ (แบคทีเรียวุ้น-Oxoid จำกัด เบซิงนิวแฮมป์เชียร์
อังกฤษ) และนึ่งที่ 121 องศาเซลเซียสและ 103 กิโลปาสคาลเป็นเวลา 20 นาที การปนเปื้อน
ความถี่และอัตราการงอกใหม่ของการถ่ายภาพที่ถูกบันทึกไว้
หลังจาก 8 สัปดาห์ของวัฒนธรรม ใช้เคล็ดลับการถ่ายภาพเป็นชิ้นได้รับการคัดเลือก
จากผลการวิจัยเบื้องต้น วัสดุปลูกก็มีเนื้อมีหนังต่อมา
โดยการเพาะเลี้ยงยิงเคล็ดลับบนอาหารสูตร MS เสริมด้วย 2.5 ไมครอน
ปริญญาตรีและ 0.54 ไมครอนα-เหม็นกรดอะซิติก (NAA) วัฒนธรรมได้รับการ
เติบโตอย่างต่อเนื่องภายใต้แสงให้โดยหลอดเรืองแสงสีขาว
(30 ไมโครโมลของ m-2 s-1 สังเคราะห์แสงโฟตอนฟลักซ์) 25 ± 2 องศาเซลเซียส

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

และเลี้ยงในเรือนกระจกที่มหาวิทยาลัยแห่งควาซูลูนาตาลพฤกษศาสตร์
สวน Pietermaritzburg , แอฟริกาใต้ อาหารที่แตกต่างกัน ( ยิงปลาย
ใบอ่อน ก้านใบของใบอ่อนและก้าน , กิ่ง ) เก็บตัว
บีกเกอร์ และล้างภายใต้น้ำสำหรับ 2 นาทีวิ่งตาม
น้ำกลั่นที่มีไม่กี่หยดของสบู่เหลว ( แสงแดด
™ )เป็นอาหารผิว decontaminated โดยการแช่ไว้ใน 70% เอทานอล
2 นาที ตามด้วย 3.5% ( M / V ) ไม่ระบุโซลูชั่นที่มีไม่กี่หยด Tween 20
5 นาที เลี้ยง จัดการล้าง
4 ครั้งกับการเป็นหมัน น้ำกลั่น พื้นผิว decontaminated
อาหารปลูกเชื้อบนอาหารสูตร Murashige และ Skoog ( MS ) เต็มแรงปานกลาง อาหารสูตร Murashige and Skoog (
,1962 ) ที่มี 30 g L − 1 ซูโครส
และ 0.1 g L − 1 เมียวอลกับ BA ความเข้มข้น 0 , 2.5 , 5.0 , 7.5 และ 10.0 μ M )
pH ของการปรับข้อมูลให้ 5.8with HCl หรือเกาะก่อนที่จะแข็งตัว L − 1
8 G ( แบคทีเรียวุ้น oxoid จำกัด Basingstoke , Hampshire ,
อังกฤษ ) และอัตราส่วนโฟกัสที่ 121 ° C และ 103 กิโลปาสคาลสำหรับ 20 นาทีและอัตราความถี่ในการยิง

ถูกบันทึกหลังจาก 8 สัปดาห์ของวัฒนธรรม ใช้ยิงเคล็ดลับอาหารถูกเลือก
ตามผลวิเคราะห์เบื้องต้น . วัสดุโรงงานและยก
ขึ้นโดยการเพาะเลี้ยงปลายยอดบนอาหารสูตร MS ที่เติม BA 2.5 μ M
M หรือμแนพทาลีน กรดแอลฟา ( NAA ) วัฒนธรรมที่ถูกปลูกภายใต้แสงให้คงที่

เย็นสีขาวเรืองแสง หลอด( 30 μ m mol − 2 s − 1 แสงโฟตอนฟลักซ์ ) ที่ 25 ± 2 องศา