This study aimed to reduce post-har

This study aimed to reduce post-harvest losses of pineapple local variety egbenana by the transformation of juice into vinegar through biotechnological process. VINEGAR WAS PRODUCED THROUGH TWO SUCCESSIVE FERMENTATIONS: alcoholic and acetic fermentations. The alcohol fermentation was carried out at 30 degrees C using yeast. Biomass, pH and Brix were evaluated daily during the fermentation. Acetic fermentation was carried out at 30 degrees C using an acetic bacteria strain isolated from pineapple wine previously exposed to ambient temperature (28 degrees C) for 5 days. Biomass, pH and acid levels were monitored each 2 days. The performance of acetic bacteria isolated was also assessed by studying their Glucose and Ethanol tolerance. The study allowed the isolation of yeast coded Saccharomyces cerevisiae (LAS01) and an acetic bacteria coded Acetobacter sp. (ASV03) both occurring in the pineapple juice. The monitoring of successive fermentations indicated that the pineapple juice with Sugar concentration of 20 Brix, seeded with 10(6) cells of Saccharomyces cerevisiae (LAS01) for alcoholic fermentation for 4 days and afterwards seeded with 10(6) cells of Acetobacter sp. resulted in 4.5 acetic degree Vinegar at Brix 5.3% and pH 2.8 for 23 to 25 days. The study of Glucose tolerance of the strain of Acetobacter sp. showed that the growth of acetic bacteria was important in a juice with high concentration of Sugar. However, the concentration of ethanol did not effect on the acetic bacteria growth. These results enabled on one hand to improve the manufacturing technology of vinegar from fruits and on the other hand to produce a starter of yeast and acetic bacteria strains for this production.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อลดความสูญเสียหลังการเก็บเกี่ยวของสับปะรดหลากหลายภายใน egbenana โดยการเปลี่ยนแปลงของน้ำเป็นน้ำส้มสายชู biotechnological ผ่านกระบวนการ น้ำส้มสายชู WAS PRODUCED THROUGH สองต่อหมักแหนม: อะซิติก และแอลกอฮอล์หมักแหนม หมักแอลกอฮอล์ได้ดำเนินที่ 30 องศา C ใช้ยีสต์ ชีวมวล ค่า pH และ Brix ประเมินได้ทุกวันระหว่างการหมัก การหมักอะซิติกได้ดำเนินที่ 30 องศา C ใช้ต้องใช้แบคทีเรียอะซิติกแยกต่างหากจากไวน์สับปะรดที่เคย สัมผัสกับอุณหภูมิ (28 องศา C) 5 วัน ชีวมวล pH และกรดระดับถูกตรวจสอบทุก 2 วัน ยังมีประเมินประสิทธิภาพของเชื้อแบคทีเรียอะซิติกที่แยกต่างหาก โดยศึกษาการเผื่อน้ำตาลกลูโคสและเอทานอล การศึกษาได้แยกยีสต์ Saccharomyces cerevisiae (LAS01) ที่มีโค้ด และมีแบคทีเรียอะซิติกรหัส Acetobacter sp. (ASV03) ทั้งสองเกิดขึ้นในน้ำสับปะรด การตรวจสอบต่อเนื่องหมักแหนมระบุว่า น้ำสับปะรดเข้มข้นน้ำตาล 20 Brix, seeded 10(6) เซลล์ของ Saccharomyces cerevisiae (LAS01) สำหรับการหมักแอลกอฮอล์ 4 วัน และหลัง seeded 10(6) เซลล์ของ Acetobacter sp.ทำให้เกิด 4.5 องศาอะซิติกน้ำส้มสายชูที่ Brix 5.3% และค่า pH 2.8 วัน 23-25 การศึกษาการยอมรับกลูโคสของสายพันธุ์ของ Acetobacter sp.พบว่า การเติบโตของเชื้อแบคทีเรียอะซิติกสำคัญในน้ำเข้มข้นน้ำตาลสูง อย่างไรก็ตาม ความเข้มข้นของเอทานอลได้ไม่มีผลในการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียอะซิติก ผลลัพธ์เหล่านี้เปิดใช้งานบนมือหนึ่งในการปรับปรุงเทคโนโลยีการผลิตน้ำส้มสายชู จากผลไม้ และ ในทางกลับกันการเริ่มต้นของยีสต์และแบคทีเรียอะซิติกสายพันธุ์สำหรับการผลิตนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อลดการสูญเสียหลังการเก็บเกี่ยวของความหลากหลายสับปะรดท้องถิ่น egbenana โดยการเปลี่ยนแปลงของน้ำผลไม้ลงในน้ำส้มสายชูผ่านกระบวนการทางเทคโนโลยีชีวภาพ น้ำส้มสายชูที่ผลิตผ่านสองต่อเนื่องหมัก: หมักแอลกอฮอล์และอะซิติก การหมักแอลกอฮอล์ได้ดำเนินการที่ 30 องศาเซลเซียสโดยใช้ยีสต์ ชีวมวล, ค่าพีเอชและบริกซ์ได้รับการประเมินในชีวิตประจำวันในระหว่างการหมัก การหมักอะซิติกได้รับการดำเนินการวันที่ 30 องศาเซลเซียสโดยใช้แบคทีเรียอะซิติกสายพันธุ์ที่แยกได้จากไวน์สับปะรดสัมผัสก่อนหน้านี้ที่อุณหภูมิห้อง (28 องศาเซลเซียส) เป็นเวลา 5 วัน ชีวมวล, ค่าพีเอชและระดับกรดถูกตรวจสอบแต่ละ 2 วัน ประสิทธิภาพการทำงานของแบคทีเรียอะซิติกที่แยกได้ยังได้รับการประเมินโดยการศึกษากลูโคสและความอดทนเอทานอลของพวกเขา การศึกษาที่ได้รับอนุญาตแยกยีสต์รหัส Saccharomyces cerevisiae (LAS01) และแบคทีเรียอะซิติกรหัส Acetobacter SP (ASV03) ทั้งที่เกิดขึ้นในน้ำสับปะรด การตรวจสอบของหมักต่อเนื่องแสดงให้เห็นว่าน้ำสับปะรดที่มีความเข้มข้น 20 Brix น้ำตาลเมล็ดกับ 10 (6) เซลล์ Saccharomyces cerevisiae (LAS01) สำหรับการหมักแอลกอฮอล์เป็นเวลา 4 วันและหลังจากนั้นเมล็ดกับ 10 (6) เซลล์ของเชื้อ Acetobacter SP ส่งผลให้ในน้ำส้มสายชู 4.5 องศาบริกซ์อะซิติกที่ 5.3% และมีค่า pH 2.8 สำหรับ 23-25​​ วัน การศึกษาของความอดทนกลูโคสของสายพันธุ์ของเชื้อ Acetobacter SP แสดงให้เห็นว่าการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียอะซิติกเป็นสิ่งที่สำคัญในน้ำผลไม้ที่มีความเข้มข้นสูงของน้ำตาล แต่ความเข้มข้นของเอทานอลไม่ได้มีผลกระทบต่อการเจริญเติบโตของแบคทีเรียอะซิติก ผลลัพธ์เหล่านี้เปิดใช้งานบนมือข้างหนึ่งในการปรับปรุงเทคโนโลยีการผลิตน้ำส้มสายชูจากผลไม้และในทางกลับกันในการผลิตเริ่มต้นของยีสต์และแบคทีเรียอะซิติกสำหรับการผลิตนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อลดการสูญเสียหลังการเก็บเกี่ยวของความหลากหลายในท้องถิ่น egbenana สับปะรด โดยการเปลี่ยนแปลงของน้ำเข้าสู่ส้มผ่านกระบวนการทางเทคโนโลยี . น้ำส้มสายชูที่ผลิตผ่านสอง fermentations ต่อเนื่อง : แอลกอฮอล์และกรดอะซิติก fermentations . เครื่องดื่มแอลกอฮอล์หมักถูกหามออก 30 องศา C โดยใช้ยีสต์ ชีวมวล , pH และปริมาณวิเคราะห์ทุกวัน ในระหว่างการหมักเมื่อทำการหมักที่อุณหภูมิ 30 องศา C โดยใช้แบคทีเรียอะซิติกสายพันธุ์ที่แยกได้จาก ไวน์สับปะรด ไวน์เคยสัมผัสอุณหภูมิ ( 28 องศา C ) เป็นเวลา 5 วัน ชีวมวล , pH และระดับกรดได้ตรวจสอบทุก 2 วัน ประสิทธิภาพของกรดแบคทีเรียยังประเมินโดยการศึกษาของความอดทนกลูโคสและเอธานอลการอนุญาตการแยกยีสต์ Saccharomyces cerevisiae ( รหัส las01 ) และกรดแบคทีเรีย Acetobacter sp . ( รหัส asv03 ) ที่เกิดขึ้นในสับปะรดน้ำผลไม้ การติดตามต่อเนื่อง fermentations พบว่าสับปะรดที่มีน้ำตาลเข้มข้น 20 บริกซ์เมล็ด 10 ( 6 ) เซลล์ของ Saccharomyces cerevisiae ( las01 ) สำหรับการหมักแอลกอฮอล์เป็นเวลา 4 วัน และหลังจากนั้นเมล็ด 10 ( 6 ) เซลล์ของ Acetobacter sp . มีผลในการใช้น้ำส้มสายชูในระดับ 4.5 เพิ่มขึ้น 5.3% และ pH 2.8 23 ถึง 25 วัน การศึกษาความทนทานต่อกลูโคสของสายพันธุ์ของ Acetobacter sp .พบว่าสารสำคัญในการเจริญเติบโตของแบคทีเรียน้ำที่มีความเข้มข้นสูงของน้ำตาล อย่างไรก็ตาม ความเข้มข้นของเอทานอลไม่มีผลต่อการเจริญเติบโตของแบคทีเรียกรดอะซิติก . ผลลัพธ์เหล่านี้เปิดใช้งานบนมือข้างหนึ่งเพื่อปรับปรุงเทคโนโลยีการผลิตน้ำส้มสายชูจากผลไม้ และในมืออื่น ๆที่จะผลิตหัวเชื้อยีสต์และแบคทีเรียสายพันธุ์ที่ใช้ในการผลิตนี้