Patty shelf life was determined by

Patty shelf life was determined by microbiological, sensory and physical–chemical meat spoilage indices.

Analyses were made on days 0, 3, 6 and 9 under retail display conditions.

The microbiological and physical–chemical analyses were made on raw samples.

Five patties per five formulations and four control days were analyzed (N = 100).

The samples used for microbiological analysis were blended using a masticator and diluted in peptone water.

The total viable count (TVC) (CFU/g) was determined (ISO 4833:2003) using an Agar medium Plate Count (tryptone glucose yeast agar)

The total coliform count (TCC) (CFU/g) was determined using a chromogenic E. coli/coliform medium (Oxoid Ltd. CM956, Basingstoke, Hampshire, United Kingdom).

For both counts, plates were incubated for 48 h at 37 °C in a ST 6120 culture incubator

Colour was measured using a CR-200/08 Chroma Meter II making six measurements per patty.

Results were expressed as CIELab values: Lightness (L∗), Chroma (C∗) and Hue angle (H∗); C∗ = (a∗2 + b∗2)1/2. H∗ = tg−1 (b∗/a∗).

The relative metmyoglobin percentage (MM) was determined according to Krzywicki, using a U3200 spectrophotometer .

Thickness (4 cm diameter × 1.5 cm) samples were analysed. Six measurements were made per sample.

An integration sphere was used.

A calcium sulphate tablet was used for calibration.

Samples were illuminated at 90° ± 10° angle.

Light reflection was measured at 45° ± 5° angle.

Samples were scanned for 40 s using a 400–760 nm wavelength.

The metmyoglobin relative percentage was calculated as follows: % MM = [1.395 − (A572 − A730)/(A525 − A730)]100.

Lipid oxidation was expressed as thiobarbituric acid reactive substances (TBARS) (mg malonaldehyde/kg sample), as determined by Botsoglou et al. (1994), using a UV2 spectrophotometer

The pH was measured using a micropH 2001 pHmeter , and a combined electrode Cat. No. 52-22, to remove the possible contribution to microbiological or colour changes caused by to variations in the pH of the patties.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

มีกำหนดโลอายุ โดยดัชนีทางจุลชีววิทยา ประสาทสัมผัส และทางกายภาพ – เคมีเนื้อสัตว์เน่าเสีย วิเคราะห์ที่ทำในวันที่ 0, 3, 6 และ 9 ภายใต้เงื่อนไขการแสดงขายปลีก วิเคราะห์ทางจุลชีววิทยา และทางกายภาพ – เคมีทำบนตัวอย่างวัตถุดิบ เบอร์เกอร์ห้าห้าสูตรและควบคุมสี่วันได้วิเคราะห์ (N = 100) ตัวอย่างที่ใช้สำหรับการวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยามาผสมใช้เป็น masticator และเจือจางในน้ำ peptone นับได้รวม (TVC) (CFU/g) ถูกกำหนด (ISO 4833:2003) โดยใช้จำนวนแผ่นวุ้นตัวปานกลาง (tryptone กลูโคสยีสต์วุ้น) จำนวนโคลิฟอร์มทั้งหมด (TCC) (CFU/g) ที่ถูกกำหนดโดยใช้สื่อ chromogenic E. coli/โค ลิฟอร์ม (Oxoid จำกัด CM956, Basingstoke แฮมไชร์ สหรัฐ สหราชอาณาจักร) สำหรับจำนวนนับทั้งสอง แผ่นได้รับการกก 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 ° C ในตู้อบเป็นวัฒนธรรมเซนต์ 6120 สีถูกวัดโดยมิเตอร์ II โครมา CR-200/08 การวัดหกต่อโล ผลลัพธ์ถูกแสดงเป็นค่า CIELab: ความสว่าง (L∗), Chroma (C∗) และมุมเว้ (H∗); C∗ = (a∗2 + b∗2) 1/2 H∗ = tg−1 (b∗/a∗) Metmyoglobin สัมพัทธ์เปอร์เซ็นต์ (มม.) ที่ถูกกำหนดตาม Krzywicki ใช้เป็นสเปค U3200 ความหนา (× 4 ซม.เส้นผ่าศูนย์กลาง 1.5 ซม.) ได้วิเคราะห์ตัวอย่าง วัดที่หกได้โดยต่อตัวอย่าง ใช้การรวมรูปทรงกลม แคลเซียมซัลเฟตแท็บเล็ตถูกใช้สำหรับการสอบเทียบ ตัวอย่างมีการเรืองแสงที่มุม 90° ± 10° สะท้อนแสงโดยวัดมุม 5° ± 45° ตัวอย่างสแกนสำหรับ 40 มี 400-760 nm ความยาวคลื่นสามารถใช้ คำนวณเปอร์เซ็นต์สัมพัทธ์ metmyoglobin ดัง: % MM = [1.395 − (A572 − A730) /(A525 − A730)] 100 ออกซิเดชันของไขมันได้แสดงออกเป็น thiobarbituric กรดปฏิกิริยาสาร (TBARS) (มก. malonaldehyde กิโลกรัมตัวอย่าง), ตามที่กำหนดโดย Botsoglou et al. (1994), ใช้เครื่องสเปค UV2 ค่า pH ถูกวัดโดยใช้การ micropH 2001 pHmeter และอิเล็กโทรดรวมแมว หมายเลข 52 – 22 ลบการจุลินทรีย์สะสมได้ หรือสีเปลี่ยนแปลงที่เกิดจากการเปลี่ยนแปลงค่า pH ของเบอร์เกอร์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

อายุการเก็บรักษา Patty ถูกกำหนดโดยทางจุลชีววิทยาทางประสาทสัมผัสและทางกายภาพและทางเคมีดัชนีเนื้อเน่าเสีย. การวิเคราะห์ที่ถูกสร้างขึ้นในวันที่ 0, 3, 6 และ 9 ภายใต้เงื่อนไขการแสดงผลค้าปลีก. การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาและทางกายภาพและทางเคมีที่ถูกสร้างขึ้นในตัวอย่างดิบ. ห้าไส้ต่อ . ห้าสูตรและสี่วันการควบคุมถูกนำมาวิเคราะห์ (N = 100) . กลุ่มตัวอย่างที่ใช้ในการวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาถูกผสมโดยใช้ masticator และเจือจางในน้ำเปปโตนนับทำงานได้รวม (TVC) (CFU / g) ถูกกำหนด (ISO 4833: 2003 ) โดยใช้นับจานเลี้ยงเชื้อกลาง (Tryptone กลูโคสยีสต์วุ้น) โคลิฟอร์มทั้งหมดนับ (TCC) (CFU / g) ถูกกำหนดโดยใช้การแยกเชื้อ E. coli / โคลิฟอร์มกลาง (Oxoid จำกัด CM956 เบซิงนิวแฮมป์เชียร์, สหราชอาณาจักร) สำหรับจำนวนทั้งแผ่นถูกบ่มเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสในศูนย์บ่มเพาะวัฒนธรรม ST 6120 สีถูกวัดโดยใช้ CR-200/08 Chroma Meter II ทำให้หกวัดต่อแพตตี้. ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นค่า CIELAB: สว่าง (L * ) Chroma (C *) และเว้มุม (H *); C = * (ก * 2 + B * 2) 1/2 H * = TG-1 (b * / A *). ร้อยละญาติ metmyoglobin (mm) ถูกกำหนดตาม Krzywicki ใช้ spectrophotometer U3200. ความหนา (4 ซม. เส้นผ่าศูนย์กลาง× 1.5 ซม.) ตัวอย่างที่ได้มาวิเคราะห์ หกวัดได้ทำต่อตัวอย่าง. ทรงกลมบูรณาการถูกนำมาใช้. แท็บเล็ตแคลเซียมซัลเฟตที่ใช้สำหรับการสอบเทียบ. ตัวอย่างสว่างที่ 90 °± 10 °มุม. สะท้อนแสงวัดที่ 45 °± 5 องศา. ตัวอย่างถูกสแกน 40 s ใช้ความยาวคลื่น 400-760 นาโนเมตร. metmyoglobin ญาติร้อยละที่คำนวณได้ดังนี้.% MM = [1.395 - (A572 - A730) / (A525 - A730)] 100 ออกซิเดชันของไขมันถูกแสดงเป็นสารปฏิกิริยา thiobarbituric Acid (TBARS) (mG malonaldehyde / กกตัวอย่าง) ตามที่กำหนดโดย Botsoglou et al, (1994) โดยใช้ spectrophotometer UV2 ค่า pH ได้รับการวัดโดยใช้ Microph 2001 pHmeter และแมวรวมขั้วไฟฟ้า ฉบับที่ 52-22 เพื่อเอาผลงานไปได้ที่จะมีการเปลี่ยนแปลงทางจุลชีววิทยาหรือสีที่เกิดจากการเปลี่ยนแปลงในค่า pH ของไส้ที่

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ชีวิตชั้น แพตตี้ วิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาและกายภาพเคมีและประสาทสัมผัสเนื้อเน่าเสียดัชนีการศึกษาทำในวันที่ 0 , 3 , 6 และ 9 ภายใต้เงื่อนไขแสดงขายปลีกทางด้านจุลชีววิทยาและกายภาพเคมีและวิเคราะห์ได้ในตัวอย่างวัตถุดิบห้าต่อห้าสูตรควบคุมและสูตร 4 วัน วิเคราะห์ ( n = 100 )กลุ่มตัวอย่างที่ใช้ในการวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาและการเคี้ยวผสมเจือจางในเปปโตนน้ำนับได้รวม ( TVC ) ( cfu / g ) กำหนด ( ISO 4833:2003 ) ใช้อาหารวุ้น ( agar plate นับยีสต์ทริพโทนน้ำตาล )จำนวนโคลิฟอร์มทั้งหมด ( TCC ) ( cfu / g ) กำหนดโดยใช้การสนทนาผ่านข้อความโต้ตอบแบบทันที E . coli / ฟอร์มขนาดกลาง ( oxoid จำกัด cm956 Basingstoke Hampshire , สหราชอาณาจักร )ทั้งนับจานถูกบ่ม 48 ชั่วโมง ที่ 37 ° C ในวัฒนธรรมเอ 0 เซนต์สีถูกวัดโดยใช้เครื่องวัด 2 / 08 cr-200 Chroma ทำหกวัดต่อแพ็ตตี้ผลแสดงเป็นแถบค่าความสว่าง ( L ∗ ) , Chroma ( C ∗ ) และมุมเว้ ( H ∗ ) ; C ∗ = ( ∗ 2 + B ∗ 2 ) 1 / 2 H ∗ = − 1 ( B ∗ TG / ∗ )เปอร์เมทไมโอโกลบินญาติ ( มม. ) ถูกกำหนดตาม krzywicki โดยใช้ u3200 วัสดุความหนา 4 ซม. × 1.5 ซม. ) วิเคราะห์ . 6 วัดได้ / ตัวอย่างการบูรณาการทรงกลมที่ถูกใช้แคลเซียม ซัลเฟต แท็บเล็ตที่ใช้สำหรับการสอบเทียบจำนวน 90 องศา±ส่องสว่างใน 10 องศา มุมของการสะท้อนแสงเป็นวัดที่± 5 องศา 45 องศา มุมของทำการสแกน 40 S ใช้ 400 – 760 nm ความยาวคลื่นร้อยละญาติเมทไมโอโกลบินคือคำนวณได้ดังนี้ : อืม = [ − ( − a572 1.393 a730 ) / ( a525 − a730 ) 100การออกซิเดชันของไขมันจะแสดงเป็นเท่ากับกรดปฏิกิริยาสาร ( ปกติ ) ( มิลลิกรัมมาโลนัลดีไฮด์ต่อกิโลกรัมตัวอย่าง ) , ตามที่กำหนดโดย botsoglou et al . ( 1994 ) , ใช้ uv2 เตอร์ค่า pH คือการวัดโดยใช้ microph 2001 พีเ มิเตอร์ไฟฟ้า และแมวรวม ไม่ 52-22 เพื่อเอาผลงานที่เป็นไปได้ทางจุลชีววิทยาหรือสี การเปลี่ยนแปลงที่เกิดจากการเปลี่ยนแปลง pH ของ patties