The membrane filter (MF) technique

The membrane filter (MF) technique is fully accepted
and approved as a procedure for monitoring drinking water microbial quality in many countries.
This method consists of filtering a water sample on a
sterile filter with a 0.45-mm pore size which retains
bacteria, incubating this filter on a selective medium
and enumerating typical colonies on the filter.
Many media and incubation conditions for the MF
method have been tested for optimal recovery of coliforms
from water samples (Grabow and du Preez,
1979; Rice et al., 1987). Among these, the most widely
used for drinking water analysis are the m-Endo-type
media in North America (APHA et al., 1998) and the
Tergitol-TTC medium in Europe (AFNOR, 1990).
Coliform bacteria form red colonies with a metallic
sheen on an Endo-type medium containing lactose
(incubation 24 h at 35 C for TC) or yellow-orange
colonies on Tergitol-TTC media (incubation 24 and 48
h at 37 and 44 C for TC and FC, respectively). Other
media, such as MacConkey agar and the Teepol
medium, have been used in South Africa and Britain.
However, comparisons among the media have shown
that m-Endo agar yielded higher counts than MacConkey
or Teepol agar (Grabow and du Preez, 1979). To
enumerate FC, the APHA et al. (1998) proposes that
filters be incubated on an enriched lactose medium (m-
FC) at a temperature of 44.5 C for 24 h. Because of the
elevated incubation temperature and the addition of
rosolic acid salt reagent, few nonfecal coliform colonies
develop on the m-FC medium (APHA et al.,
1998).
Enumeration of TC by membrane filtration is not
totally specific. When MF is associated with m-Endo
media containing lactose, atypical colonies which are
dark red, mucoid or nucleated and without a metallic
sheen may occasionally appear. Atypical blue, pink,
white or colorless colonies lacking sheen are not
considered as TC by this technique (APHA et al.,
1998). Furthermore, typical colonies with a sheen may
be produced occasionally by non-coliform bacteria
and, conversely, atypical colonies (dark red or
nucleated colonies without sheen) may sporadically
be coliforms. Coliform verification is therefore recommended
for both types of colonies (APHA et al.,
1998).
With the acceptance of MF as a technique of
choice for drinking water monitoring (APHA et al.,
1998; AFNOR, 1990), questions regarding interference
with coliform detection and the accuracy of the
enumeration have arisen. The presence of high numbers of background heterotrophic bacteria was shown
to decrease coliform recovery by MF (Clark, 1980;
Burlingame et al., 1984). Excessive crowding of
colonies on m-Endo media has been associated with
a reduction in coliform colonies producing the metallic
sheen (Hsu and Williams, 1982; Burlingame et al.,
1984).
The predominant concern about MF is its inability
to recover stressed or injured coliforms. A number of
chemical and physical factors involved in drinking
water treatment, including disinfection, can cause
sublethal injury to coliform bacteria, resulting in a
damaged cell unable to form a colony on a selective
medium. Exposure of bacteria to products like chlorine
may result in injury and increased sensitivity to bile
salts or to the replacement surface-active agents
(sodium desoxycholate or Tergitol 7) contained in
some selective media. Some improvements in the
method have increased detection of injured coliform
bacteria, including the development of m-T7 medium
formulated specifically for the recovery of stressed
coliforms in drinking water (LeChevallier et al., 1983).
Evaluation on routine drinking (LeChevallier et al.,
1983; McFeters et al., 1986) and surface (McFeters et
al., 1986; Freier and Hartman, 1987) water samples
showed higher coliform recovery on the m-T7 medium
as compared with that on the m-Endo medium. However,
m-T7 may not be as efficient when stressing
agents other than chlorine are involved. Rice et al.
(1987) achieved no significant difference in coliform
recovery on m-T7 compared with m-Endo LES from
monochloraminated samples, and Adams et al. (1989)
found that the m-T7 medium performed no better than
the m-Endo medium in enumerating E. coli and C.
freundii cells exposed to ozone.
Other authors have suggested that chlorination
affects various functions of coliform bacteria activity,
such as catalase enzymatic activity (Calabrese and
Bissonnette, 1990; Sartory, 1995). Metabolically active
bacteria produce hydrogen peroxide (H2O2), which is
usually rapidly degraded by the catalase. Injured coliforms
with reduced catalase activity accumulate toxic
hydrogen peroxide, to which they are extremely sensitive.
Calabrese and Bissonnette (1990) reported an
increase in coliform recovery on m-Endo and m-T7
media, as well as an increase in E. coli recovery on anm-
FC medium when these media were supplemented with
catalase, sodium pyruvate or both. Sartory (1995) suggested that sodium pyruvate be added at concentrations
of 0.01–0.1% to any standard coliform detection
medium because this product permits improved
recovery of chlorine-stressed coliforms.
The high number of modified media in use is a
reflection of the fact that no universal medium currently
exists which allows optimal enumeration of various
coliform species originating from different environments
and present in a wide variety of physiological
states.Asignificant advantage of theMFtechnique over
the MTF method is that with MF, the examination of
larger volumes of water is feasible, which leads to
greater sensitivity and reliability. MF also offers a
quantitative enumeration comparatively to the semiquantitative
information given by theMTF method.MF
is a useful technique for the majority of water quality
laboratories as it is a relatively simple method to use.
Many samples can be processed in a day with limited
laboratory equipment by a technician with basic microbiological
training. Nevertheless, since this method is
not sufficiently specific, a confirmation stage is needed,
which could take a further 24 h after the first incubation
period on selective media. This is why improvements to
MF methods based on the enzymatic properties of
coliforms have been proposed (see Section 4.3).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เทคนิคเยื่อกรอง (MF) เป็นที่ยอมรับทั้งหมดและได้รับอนุมัติเป็นขั้นตอนการตรวจสอบคุณภาพจุลินทรีย์น้ำดื่มในหลายประเทศวิธีนี้ประกอบด้วยตัวกรองตัวอย่างน้ำในการใส่กรอง มีขนาดรูพรุน 0.45 มม.ซึ่งยังคงแบคทีเรีย incubating ตัวกรองนี้ในกลางงานและตรวจอาณานิคมทั่วไปในตัวสื่อและบ่มเงื่อนไขสำหรับ MFได้รับการทดสอบวิธีการกู้คืนสูงสุดกำจัดจากตัวอย่างน้ำ (Grabow และ du Preez1979 ข้าวร้อยเอ็ด al., 1987) ในหมู่เหล่านี้ แพร่หลายมากที่สุดใช้สำหรับน้ำดื่มวิเคราะห์เป็น m-Endo-ชนิดสื่อในอเมริกาเหนือ (อาภาและ al., 1998) และทีทีซีจำกัด Tergitol การกลางในยุโรป (AFNOR, 1990)โคลิฟอร์มแบคทีเรียแบบอาณานิคมแดงกับโลหะการชีนบนสื่อชนิดของวงจรการประกอบด้วยแล็กโทส(คณะทันตแพทยศาสตร์ 24 ชมที่ 35 C สำหรับ TC) หรือสีเหลืองอมส้มอาณานิคมบนสื่อทีทีซีจำกัด Tergitol (บ่ม 24 และ 48h ที่ 37 และ 44 C TC และ FC ตามลำดับ) อื่น ๆสื่อ เช่น MacConkey agar และ Teepolปานกลาง มีการใช้ในประเทศแอฟริกาใต้และสหราชอาณาจักรอย่างไรก็ตาม มีแสดงเปรียบเทียบระหว่างสื่อm-Endo agar ที่หาจำนวนสูงกว่า MacConkeyหรือ Teepol agar (Grabow และ du Preez, 1979) ถึงระบุ FC, al. et ของอาภา (1998) เสนอที่ตัวกรองเป็น incubated ในการย่อยแลคโตสอุดมกลาง (m-FC) อุณหภูมิ C เห็น 44.5 ใน 24 ชม เนื่องจากการคณะทันตแพทยศาสตร์ยกระดับอุณหภูมิและการเพิ่มรีเอเจนต์เกลือกรด rosolic อาณานิคมโคลิฟอร์มน้อย nonfecalพัฒนาบนกลาง m-FC (อาภา et al.,1998)ไม่มีการแจงนับของ TC โดยเยื่อกรองทั้งหมดเฉพาะ เมื่อมีการเชื่อมโยงกับวงจร m MFสื่อประกอบด้วยแล็กโทส อาณานิคมพิเศษได้แก่ดำแดง mucoid หรือ nucleated และไม่ มีโลหะเป็นบางครั้งอาจปรากฏชีน พิเศษสีน้ำเงิน สีชมพูไม่มีสีขาว หรือสีซีดอาณานิคมขาดชีนถือเป็น TC โดยเทคนิคนี้ (อาภา et al.,ปี 1998) ได้นอกจากนี้ อาณานิคมทั่วไปกับชีนอาจผลิตเป็นครั้งคราว โดยไม่โคลิฟอร์มแบคทีเรียและ ในทางกลับ กัน อาณานิคมพิเศษ (สีแดงเข้ม หรือnucleated อาณานิคม โดยชีน) อาจ sporadicallyกำจัดได้ ดังนั้นแนะนำให้ตรวจสอบโคลิฟอร์มสำหรับทั้งสองชนิดของอาณานิคม (อาภา et al.,1998)มีการยอมรับเป็นเทคนิคของ MFทางเลือกสำหรับการตรวจสอบน้ำดื่ม (อาภา et al.,ปี 1998 AFNOR, 1990), คำถามเกี่ยวกับสัญญาณรบกวนด้วยการตรวจหาโคลิฟอร์มและความถูกต้องของการแจงนับได้เกิดขึ้น มีแสดงสถานะของจำนวนแบคทีเรีย heterotrophic พื้นสูงลดกู้โคลิฟอร์ม โดย MF (Clark, 1980เบอร์ลินเกม et al., 1984) กครั้งของมากเกินไปอาณานิคมบน m-วงจรสื่อเชื่อมโยงกับลดเวลาในการผลิตโลหะอาณานิคมโคลิฟอร์มชีน (ซูและวิลเลียมส์ 1982 เบอร์ลินเกม et al.,1984)ไม่สามารถจะกังวล MF กันการกู้คืนกำจัดเครียด หรือบาดเจ็บ จำนวนปัจจัยทางเคมี และกายภาพที่เกี่ยวข้องในการดื่มบำบัดน้ำ ฆ่าเชื้อ รวมทั้งอาจทำให้เกิดบาดเจ็บ sublethal แบคทีเรียโคลิฟอร์ม ในการไม่สามารถสร้างอาณานิคมบนเลือกเซลล์เสียหายสื่อ แสงของแบคทีเรียผลิตภัณฑ์เช่นคลอรีนอาจทำให้เกิดการบาดเจ็บและเพิ่มความไวให้น้ำดีsalts หรือตัวแทน surface-active แทน(desoxycholate โซเดียมหรือ Tergitol 7) อยู่ในสื่อที่เลือกบาง ปรับปรุงในการวิธีได้เพิ่มการตรวจหาโคลิฟอร์มรับบาดเจ็บแบคทีเรีย รวมทั้งการพัฒนาสื่อ m T7สูตรเฉพาะสำหรับการฟื้นตัวของเน้นกำจัดในน้ำดื่ม (LeChevallier และ al., 1983)ประเมินในการดื่มเป็นประจำ (LeChevallier et al.,1983 McFeters et al., 1986) และพื้นผิว (McFeters etal., 1986 Freier และ Hartman, 1987) น้ำตัวอย่างพบโคลิฟอร์มกู้สูงบนกลาง m-T7ตกที่ในกลาง m Endo อย่างไรก็ตามm-T7 อาจไม่มีประสิทธิภาพเป็นเมื่อย้ำตัวแทนไม่ใช่คลอรีนมีส่วนร่วม ข้าว et al(1987) ได้ไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในโคลิฟอร์มกู้คืนบนเมื่อเทียบกับ m-Endo เลสจาก T7 mตัวอย่าง monochloraminated และ al. et Adams (1989)พบว่า สื่อ m T7 ทำไม่ดีกว่าขนาดกลาง m Endo ในตรวจ E. coli และ cfreundii เซลล์ที่สัมผัสกับโอโซนอื่น ๆ ผู้เขียนได้แนะนำว่า คลอรีนมีผลต่อฟังก์ชันต่าง ๆ ของโคลิฟอร์มแบคทีเรียกิจกรรมเช่นกิจกรรมของเอนไซม์ในระบบ catalase (Calabrese และBissonnette, 1990 Sartory, 1995) งาน metabolicallyแบคทีเรียผลิตไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (H2O2), ซึ่งเป็นอย่างรวดเร็วมักจะเสื่อมโทรม โดยการ catalase กำจัดบาดเจ็บcatalase ลดกิจกรรมสะสมสารพิษไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ ซึ่งจะมีความสำคัญมากขึ้นCalabrese และ Bissonnette (1990) รายงานตัวเพิ่มในการกู้คืนโคลิฟอร์ม m Endo และ m-T7สื่อ ตลอดจนการเพิ่มขึ้นในการกู้คืนของ E. coli ใน anm-กลาง FC เมื่อสื่อเหล่านี้ถูกเสริมด้วยcatalase, pyruvate โซเดียม หรือทั้งสองอย่าง Sartory (1995) แนะนำเพิ่มว่า โซเดียม pyruvate ที่ความเข้มข้นของ 0.01 – 0.1% เพื่อการตรวจหาโคลิฟอร์มมาตรฐานปานกลางเนื่องจากผลิตภัณฑ์นี้อนุญาตให้ปรับปรุงการกู้คืนเน้นคลอรีนกำจัดจำนวนสื่อปรับใช้สูงเป็นสะท้อนความจริงที่ไม่สื่อสากลในปัจจุบันอยู่ที่อนุญาตให้การแจงนับที่เหมาะสมของต่าง ๆชนิดโคลิฟอร์มที่เกิดจากสภาพแวดล้อมที่แตกต่างกันและนำเสนอในหลากหลายของสรีรวิทยาอเมริกา ประโยชน์จาก theMFtechnique มากกว่า Asignificantวิธี MTF คือกับ MF การตรวจสอบขนาดใหญ่ปริมาณของน้ำจะเป็นไปได้ ซึ่งนำไปสู่ความไวและความน่าเชื่อถือมากขึ้น MF มีการแจงนับเชิงปริมาณที่ดีอย่างหนึ่งการที่ semiquantitativeข้อมูลที่กำหนด โดยวิธี theMTF MFเป็นเทคนิคที่เป็นประโยชน์สำหรับส่วนใหญ่ของคุณภาพน้ำปฏิบัติตามวิธีการค่อนข้างง่ายที่จะใช้ได้สามารถประมวลผลตัวอย่างหลายวันจำกัดอุปกรณ์ห้องปฏิบัติการ โดยช่างเทคนิคพื้นฐานทางจุลชีววิทยาด้วยฝึกอบรม อย่างไรก็ตาม เนื่องจากวิธีนี้ไม่เพียงพอเฉพาะ ขั้นยืนยันจำเป็นซึ่งอาจใช้เวลาเพิ่มเติม 24 ชมหลังจากฟักตัวแรกรอบระยะเวลาการใช้สื่อ นี่เป็นเหตุผลที่ปรับปรุงวิธี MF ตามคุณสมบัติของเอนไซม์ในระบบกำจัดได้ถูกนำเสนอ (ดูหัวข้อ 4.3)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

กรองเมมเบรน (MF)
เทคนิคที่ได้รับการยอมรับอย่างเต็มที่และได้รับการอนุมัติเป็นขั้นตอนสำหรับการตรวจสอบการดื่มที่มีคุณภาพของจุลินทรีย์น้ำในหลายประเทศ.
วิธีการนี้ประกอบด้วยการกรองตัวอย่างน้ำบนกรองผ่านการฆ่าเชื้อที่มีขนาดรูพรุน 0.45 มิลลิเมตรซึ่งยังคงมีแบคทีเรียฟักนี้กรองสื่อที่เลือกและแจงอาณานิคมทั่วไปเกี่ยวกับตัวกรอง. สื่อหลายและเงื่อนไขการบ่มสำหรับ MF วิธีการได้รับการทดสอบสำหรับการกู้คืนที่ดีที่สุดของโคลิฟอร์มจากตัวอย่างน้ำ (Grabow และดู่ Preez, 1979. ข้าว, et al, 1987) กลุ่มคนเหล่านี้มากที่สุดอย่างกว้างขวางใช้สำหรับการดื่มการวิเคราะห์น้ำเป็นเมตร Endo ประเภทสื่อในทวีปอเมริกาเหนือ(APHA et al., 1998) และขนาดกลางTergitol-TTC ในยุโรป (AFNOR, 1990). แบคทีเรียโคลิฟอร์มในรูปแบบโคโลนีสีแดงที่มี โลหะเงาบนสื่อEndo ชนิดที่มีแลคโตส(การบ่ม 24 ชั่วโมงที่ 35 องศาเซลเซียสสำหรับ TC) หรือสีเหลืองสีส้มอาณานิคมในสื่อTergitol-TTC (การบ่ม 24 และ 48 ชั่วโมงที่ 37 และ 44 องศาเซลเซียสสำหรับ TC และเอฟซีตามลำดับ ) อื่น ๆสื่อเช่น MacConkey agar และ Teepol กลางได้ถูกนำมาใช้ในแอฟริกาใต้และสหราชอาณาจักร. อย่างไรก็ตามเปรียบเทียบระหว่างสื่อได้แสดงให้เห็นว่าม Endo วุ้นให้ผลการนับสูงกว่า MacConkey หรือ Teepol วุ้น (Grabow และดู่ Preez, 1979) . เพื่อระบุเอฟซีที่ APHA et al, (1998) เสนอว่าตัวกรองถูกบ่มในสื่อแลคโตสอุดม(m- ซี) ที่อุณหภูมิ 44.5 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง เพราะอุณหภูมิบ่มสูงและการเพิ่มขึ้นของสารเกลือกรดrosolic ไม่กี่อาณานิคมโคลิฟอร์ม nonfecal พัฒนาบนสื่อมเอฟซี (APHA et al., 1998). การแจงนับของ TC โดยการกรองเมมเบรนที่ไม่เฉพาะเจาะจงโดยสิ้นเชิง เมื่อ MF มีความเกี่ยวข้องกับม Endo สื่อที่มีแลคโตส, โคโลนีที่ผิดปกติซึ่งเป็นสีแดงเข้มหรือmucoid nucleated และไม่มีโลหะเงาบางครั้งอาจปรากฏ ผิดปกติสีฟ้า, สีชมพู, โคโลนีสีขาวหรือสีเงาขาดไม่ได้รับการพิจารณาเป็น TC โดยเทคนิคนี้ (APHA et al., 1998) นอกจากนี้อาณานิคมทั่วไปที่มีเงาอาจจะมีการผลิตเป็นครั้งคราวโดยเชื้อแบคทีเรียที่ไม่ใช่โคลิฟอร์มและตรงกันข้ามอาณานิคมผิดปกติ(สีแดงหรือสีเข้มอาณานิคม nucleated โดยไม่เงา) เป็นระยะ ๆ อาจจะเป็นโคลิฟอร์ม ตรวจสอบโคลิฟอร์มที่แนะนำจึงสำหรับทั้งสองประเภทของอาณานิคม (APHA, et al. 1998). ด้วยการยอมรับของ MF เป็นเทคนิคหนึ่งของทางเลือกสำหรับการดื่มการตรวจสอบน้ำ(APHA, et al. 1998; AFNOR, 1990) คำถามเกี่ยวกับการแทรกแซงด้วยการตรวจสอบความถูกต้องและโคลิฟอร์มของการแจงนับจะเกิดขึ้น การปรากฏตัวของตัวเลขที่สูงของแบคทีเรีย heterotrophic พื้นหลังถูกนำมาแสดงเพื่อลดการกู้คืนโดยโคลิฟอร์มMF (คลาร์ก, 1980;. เบอร์ลิน, et al, 1984) แออัดมากเกินไปของอาณานิคมในสื่อม Endo มีความเกี่ยวข้องกับการลดลงในอาณานิคมโคลิฟอร์มการผลิตโลหะเงา(Hsu และวิลเลียมส์, 1982. เบอร์ลิน, et al, 1984). ความกังวลที่โดดเด่นเกี่ยวกับ MF คือไม่สามารถที่จะกู้คืนเครียดหรือได้รับบาดเจ็บโคลิฟอร์ม จำนวนของสารเคมีและปัจจัยทางกายภาพที่เกี่ยวข้องกับการดื่มบำบัดน้ำเสียรวมทั้งการฆ่าเชื้อโรคสามารถก่อให้เกิดการบาดเจ็บsublethal โคลิฟอร์มแบคทีเรียที่จะส่งผลให้เซลล์ที่เสียหายสามารถที่จะสร้างอาณานิคมบนเลือกขนาดกลาง การเปิดรับข่าวสารของแบคทีเรียให้กับสินค้าเช่นคลอรีนอาจทำให้เกิดการบาดเจ็บและเพิ่มความไวต่อน้ำดีเกลือหรือตัวแทนพื้นผิวที่ใช้งานทดแทน(โซเดียม desoxycholate หรือ Tergitol 7) ที่มีอยู่ในบางสื่อที่เลือก การปรับปรุงบางอย่างในวิธีการที่ได้เพิ่มการตรวจสอบของโคลิฟอร์มที่ได้รับบาดเจ็บแบคทีเรียรวมทั้งการพัฒนาของm-T7 กลางสูตรเฉพาะสำหรับการกู้คืนของเน้นโคลิฟอร์มในน้ำดื่ม(LeChevallier et al., 1983). การประเมินผลการดื่มประจำ (LeChevallier et al, , 1983; McFeters, et al, 1986) และพื้นผิว (McFeters et. al, 1986;. Freier และฮาร์ทแมน, 1987) ตัวอย่างน้ำแสดงให้เห็นว่าการฟื้นตัวของโคลิฟอร์มที่สูงขึ้นในกลางของm-T7 เมื่อเทียบกับในสื่อม Endo อย่างไรก็ตามม-T7 อาจจะไม่เป็นที่มีประสิทธิภาพเมื่อเน้นหนักตัวแทนอื่นๆ กว่าคลอรีนที่มีส่วนเกี่ยวข้อง ข้าว et al. (1987) ประสบความสำเร็จไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญในโคลิฟอร์มการกู้คืนบนของm-T7 เมื่อเทียบกับม Endo LES จากตัวอย่างmonochloraminated และอดัมส์และอัล (1989) พบว่าสื่อของ m-T7 ดำเนินการไม่ดีกว่าM-Endo กลางแจงเชื้อ E. coli และ C เซลล์ freundii สัมผัสกับโอโซน. เขียนคนอื่น ๆ ต้องบอกว่าคลอรีนส่งผลกระทบต่อการทำงานต่างๆของกิจกรรมโคลิฟอร์มแบคทีเรีย, เช่น catalase เอนไซม์ (แปลกปลอมและBissonnette, 1990; Sartory, 1995) ใช้งานเมตาบอลิแบคทีเรียผลิตไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (H2O2) ซึ่งมักจะสลายตัวได้อย่างรวดเร็วโดยcatalase โคลิฟอร์มที่ได้รับบาดเจ็บไปด้วยกิจกรรม catalase ลดการสะสมสารพิษไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่พวกเขามีความสำคัญมาก. แปลกปลอมและ Bissonnette (1990) รายงานการเพิ่มขึ้นในการกู้คืนโคลิฟอร์มในมEndo และ m-T7 สื่อเช่นเดียวกับการเพิ่มขึ้นของการกู้คืนอีโคไล ใน anm- กลางเอฟซีเมื่อสื่อเหล่านี้ได้รับการเสริมด้วยcatalase ไพรูโซเดียมหรือทั้งสองอย่าง Sartory (1995) ชี้ให้เห็นว่ามีการเพิ่มไพรูโซเดียมที่ระดับความเข้มข้นของ0.01-0.1% การตรวจสอบใด ๆ โคลิฟอร์มมาตรฐานกลางเพราะใบอนุญาตผลิตภัณฑ์นี้ดีขึ้นการฟื้นตัวของโคลิฟอร์มคลอรีนเน้น. จำนวนสูงของสื่อมีการปรับเปลี่ยนในการใช้งานเป็นภาพสะท้อนของความจริงที่ว่าไม่มีสื่อสากลในปัจจุบันมีอยู่ซึ่งจะช่วยให้การแจงนับที่ดีที่สุดของต่างๆชนิดโคลิฟอร์มที่มาจากสภาพแวดล้อมที่แตกต่างกันและอยู่ในความหลากหลายของทางสรีรวิทยาประโยชน์states.Asignificant ของ theMFtechnique มากกว่าวิธีMTF คือ MF กับการตรวจสอบของปริมาณขนาดใหญ่ของน้ำเป็นไปได้ซึ่งนำไปสู่ความไวมากขึ้นและความน่าเชื่อถือ MF ยังมีการนับปริมาณเปรียบเทียบกับเชิงกึ่งปริมาณข้อมูลที่ได้รับจากtheMTF method.MF เป็นเทคนิคที่มีประโยชน์ส่วนใหญ่ของน้ำที่มีคุณภาพห้องปฏิบัติการตามที่มันเป็นวิธีที่ค่อนข้างง่ายที่จะใช้. ตัวอย่างจำนวนมากสามารถประมวลผลในวันที่มี จำกัดอุปกรณ์ห้องปฏิบัติการ โดยช่างที่มีจุลชีววิทยาพื้นฐานการฝึกอบรม แต่เนื่องจากวิธีนี้ไม่ได้เฉพาะเจาะจงพอขั้นตอนการยืนยันเป็นสิ่งจำเป็นซึ่งอาจใช้เวลาอีก24 ชั่วโมงหลังจากที่บ่มแรกระยะเวลาในสื่อที่เลือก นี่คือเหตุผลที่การปรับปรุงวิธีการ MF ขึ้นอยู่กับคุณสมบัติของเอนไซม์โคลิฟอร์มได้รับการเสนอ(ดูมาตรา 4.3)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ไส้กรองเมมเบรน ( MF ) เทคนิคที่ได้รับการยอมรับอย่างเต็มที่
และอนุมัติเป็นขั้นตอนสำหรับการตรวจสอบคุณภาพน้ำดื่มของจุลินทรีย์ในหลายประเทศ
วิธีนี้ประกอบด้วยการกรองตัวอย่างน้ำในกรอง ฆ่าเชื้อ ด้วย 0.45-mm

ขนาดรูพรุน ซึ่งมีแบคทีเรีย การแช่ตัวกรองนี้ในสื่อโดยทั่วไป
enumerating อาณานิคมบน
ตัวกรองสื่อหลายและเงื่อนไขการบ่มสำหรับ MF
วิธีการได้รับการทดสอบสำหรับการกู้คืนที่ดีที่สุดของเข้มข้นจากตัวอย่างน้ำ ( grabow

preez และ Du , 1979 ; ข้าว et al . , 1987 ) ระหว่างนี้ ส่วนใหญ่ใช้กันอย่างแพร่หลาย
การวิเคราะห์น้ำดื่มเป็น m-endo-type
สื่อในอเมริกาเหนือ ( apha et al . , 1998 ) และ
tergitol ttc ขนาดกลางในยุโรป ( afnor
, 2533 )โคลิฟอร์มแบคทีเรียสร้างโคโลนีสีแดงกับเงาโลหะ
บน Endo ประเภทอาหารที่มีแลคโตส
( บ่ม 24 ชั่วโมง 35  C TC ) หรือสีเหลืองส้ม
อาณานิคมบน tergitol ttc สื่อ ( บ่ม 24 และ 48
H ที่ 37 44  C TC และเอฟซี ตามลำดับ ) สื่ออื่น ๆเช่นวุ้น

ทีโพล macconkey และขนาดกลาง ได้ถูกใช้ในแอฟริกาใต้และสหราชอาณาจักร .
อย่างไรก็ตามการเปรียบเทียบระหว่างสื่อแสดง
ที่ m-endo วุ้นเมื่อนับสูงกว่า macconkey
หรือทีโพล ( grabow และ Du preez , 1979 )

แจกแจง เอฟซี , apha et al . ( 1998 ) ได้เสนอว่า จะบ่มในอุดม
กรองนมขนาดกลาง ( M -
FC ) ที่อุณหภูมิเฉลี่ย  C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงเนื่องจาก
อุณหภูมิการบ่มและนอกเหนือจาก
กรดโรโซลิกเกลือรีเอเจนต์ไม่กี่ nonfecal โคลิฟอร์มอาณานิคม
พัฒนาบน ม เ ซี มีเดีย ( apha et al . ,
2541 ) .
แจง TC โดยการกรองเมมเบรน
ทั้งหมดไม่เฉพาะเจาะจง เมื่อ m-endo
MF จะเกี่ยวข้องกับสื่อที่มีแลคโตส ซึ่งเป็นอาณานิคมพิเศษ
สีแดงเข้มน้ำลายหรือแบบไม่มีเงาโลหะ
บางครั้งอาจปรากฏขึ้น ผิดปรกติ สีฟ้า , สีชมพู , สีขาวหรือสีเงาอาณานิคม

จะไม่ขาดถือว่าเป็น TC โดยเทคนิคนี้ (
apha et al . , 1998 ) นอกจากนี้ อาณานิคมทั่วไปกับเงาอาจจะผลิตเป็นครั้งคราวด้วย

ไม่แบคทีเรียโคลิฟอร์ม และในทางกลับกัน ระเบียงห้องนอนอาณานิคม ( แดงเข้มหรือ
แบบอาณานิคมโดย ชีน ) อาจเป็นระยะ
เป็นโคลิฟอร์ม . การตรวจสอบเชื้อโคลิฟอร์ม จึงแนะนำ
สำหรับทั้งสองประเภทของอาณานิคม ( apha et al . , 1998

)กับการยอมรับของ MF เป็นเทคนิคของทางเลือกสำหรับการดื่มน้ำ (

apha et al . , 1998 ; afnor 1990 ) คำถามเกี่ยวกับการรบกวน
ด้วยการตรวจหาโคลิฟอร์มและความถูกต้องของ
แจงมีขึ้น มีตัวเลขของแบคทีเรียสูงพื้นหลังแบบแสดง
ลดการกู้คืนฟอร์มโดย MF ( Clark , 1980 ;
Burlingame et al . , 1984 ) การเบียดเสียดของ
อาณานิคมบน m-endo สื่อมีความสัมพันธ์กับปริมาณโคลิฟอร์มอาณานิคมในการผลิต

เงาโลหะ ( ต่อมา วิลเลี่ยม , 1982 ; Burlingame et al . ,
1984 )

โดดความกังวลเกี่ยวกับ MF คือไม่สามารถหายเครียด หรือบาดเจ็บอย่างมีนัยสำคัญ . หมายเลขของ
ทางกายภาพและเคมี ปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับการดื่ม
น้ำ รวมถึงฆ่าเชื้อโรค สามารถก่อให้เกิด
การประเมินการบาดเจ็บโคลิฟอร์มแบคทีเรีย เป็นผลใน
เซลล์เสียหายไม่สามารถสร้างอาณานิคมบนสื่อเลือก

การเปิดรับของแบคทีเรียในผลิตภัณฑ์เช่นคลอรีน
อาจทำให้เกิดการบาดเจ็บ และเพิ่มความไวต่อเกลือน้ำดี
หรือผิวแทนใช้งานตัวแทน
( โซเดียม desoxycholate หรือ tergitol 7 ) ที่มีอยู่ใน
บางเลือกสื่อ การปรับปรุง
วิธีการเพิ่มการตรวจหาโคลิฟอร์มแบคทีเรีย
บาดเจ็บ รวมถึงการพัฒนา m-t7 ขนาดกลาง
สูตรเฉพาะสำหรับการกู้คืนของตรึงเครียด
โคลิฟอร์มในน้ำ ( lechevallier et al . , 1983 ) .
ประเมินผลดื่มตามปกติ ( lechevallier et al . ,
1983 ; mcfeters et al . , 1986 ) และพื้นผิว ( mcfeters และ
al . , 1986 ; freier และฮาร์ทแมน , 1987 ) ตัวอย่างน้ำ
สูงกว่าฟอร์มการกู้คืนใน m-t7 ขนาดกลาง
เมื่อเทียบกับที่ m-endo ปานกลาง อย่างไรก็ตาม ,
m-t7 อาจไม่มีประสิทธิภาพเมื่อเครียด
ตัวแทนมากกว่าคลอรีนด้วย ข้าว et al .
( 1987 ) ความไม่มีความแตกต่างในคุณภาพ
การกู้คืนบน m-t7 เมื่อเทียบกับ m-endo เลสจาก
monochloraminated ตัวอย่างและ Adams et al . ( 1989 )
พบว่า m-t7 กลางแสดงดีกว่า
m-endo ขนาดกลางใน enumerating E . coli และ C .
freundii เซลล์สัมผัสกับโอโซน
กรุงเทพฯ พบว่า มีคลอรีน
มีผลต่อฟังก์ชันต่าง ๆของโคลิฟอร์มแบคทีเรียกิจกรรม
เช่นเอนไซม์คะตะเลส ( Calabrese และ
bissonnette 1990 ; sartory , 1995 ) metabolically ปราดเปรียว
แบคทีเรียผลิตไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ ( H2O2 ) ซึ่งเป็น
ปกติอย่างรวดเร็ว โดยสามารถย่อยสลาย . บาดเจ็บอย่างมีนัยสำคัญ
กับกิจกรรมที่ลดลงสามารถสะสมไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์เป็นพิษ
, ซึ่งพวกเขาจะอ่อนไหว .
Calabrese และ bissonnette ( 1990 ) รายงานการเพิ่มฟอร์มการกู้คืนบน m-endo

m-t7 และสื่อ ตลอดจนเพิ่มใน E . coli การกู้คืนบน anm -
@ กลาง เมื่อสื่อเหล่านี้ถูกเสริมด้วย
คาทาเลส ,โซเดียมไพรูเวท หรือทั้งสองอย่าง sartory ( 2538 ) พบว่าโซเดียมไพรูเวทเพิ่มความเข้มข้น 0.01 และ 0.1%

กับสื่อใด ๆ การตรวจหาโคลิฟอร์มมาตรฐาน เนื่องจากผลิตภัณฑ์นี้ช่วยปรับปรุงการกู้คืนของคลอรีนเข้มข้นเน้น
.
จำนวนของการใช้เป็นสื่อในการสะท้อนความจริง

ไม่มีสื่อกลางสากลในปัจจุบันที่มีอยู่ซึ่งจะช่วยให้การ ที่เหมาะสม
ของต่าง ๆโคลิฟอร์มชนิดที่มาจาก
สภาพแวดล้อมที่แตกต่างกันและนำเสนอในหลากหลายของสรีรวิทยา
states.asignificant ประโยชน์มากกว่า
themftechnique MTF เป็นวิธีที่กับ MF , การตรวจสอบ
ไดรฟ์ข้อมูลขนาดใหญ่ของน้ำไปได้ซึ่งนำไปสู่
ความไวมากขึ้นและความน่าเชื่อถือ ปัจจุบันยังมีการเปรียบเทียบกับปริมาณบริโภค

ข้อมูลที่ให้โดยวิธี themtf . MF
เป็นเทคนิคที่มีประโยชน์สำหรับส่วนใหญ่ของห้องปฏิบัติการคุณภาพ
น้ำเป็นวิธีที่ค่อนข้างง่ายที่จะใช้
ตัวอย่างหลายสามารถประมวลผลในวันกับอุปกรณ์
ห้องปฏิบัติการจำกัดโดยช่างที่มีการฝึกพื้นฐานทางจุลชีววิทยา

อย่างไรก็ตาม เนื่องจากวิธีนี้
ไม่เฉพาะเจาะจงเพียงพอ ขั้นตอนการยืนยันต้องการ
ซึ่งอาจใช้เวลาอีก 24 ชั่วโมงหลังจากระยะฟักตัว
ครั้งแรกในสื่อที่เลือก นี่คือเหตุผลที่ปรับปรุง

วิธี MF ขึ้นอยู่กับคุณสมบัติดั้งเดิมของ
อย่างมีนัยสำคัญได้รับการเสนอ ( ดูหมวด 4.3 )