2.1. Pomegranate juice extractionPo

2.1. Pomegranate juice extraction
Pomegranates (P. granatum L., cv. Wonderful) provided by the Unifrutti
Co. (La Serena, Chile), were used for the extraction of the juice.
The pomegranates were washed with tap water and manually separated
into arils. Pomegranate juice was extracted from arils by a juicer
(Phillips, 1.5 l, HR 2000/50, stainless steel). Then, the juice was packed
in 20 ml polyethylene flexible pouches, and stored at 4±1 °C.
2.2. High hydrostatic pressure treatment
Packaged samples were placed in a cylindrical loading container at
4 °C and pressurized at 350, 450 and 550 MPa during 30, 90 and 150 s
and compared to untreated pomegranate juice (control). Water was
employed as pressure-transmitting medium, working at 17 MPa/s
ramp rate; decompression time was less than 5 s. A 2 l processing
unit (Avure Technologies Incorporated, Kent WA, USA) was used to
pressurize the pomegranate juice.
The samples were subsequently stored at 4 °C for 35 days.
Physico-chemical and microbiological analyses were carried out on
days 0, 3, 5, 7, 10, 15, 20, 25, 30 and 35 for each pressure treatment
and for the corresponding control (unpressurized) samples. For all
kinds of samples, three different batches (n= 3) were considered
and analyzed separately.
2.3. Microbiological analysis
2.3.1. Microbial counts
All samples were analyzed for numbers of aerobic mesophilic microorganisms,
molds and yeasts. Ten milliliters of each sample was
obtained aseptically and homogenized with 90 ml of chilled
Maximum Recovery Diluent (Oxoid, Basingstoke, Hampshire,
England). Further decimal dilutions were made with the same diluent,
and duplicates of at least three appropriate dilutions were plated
on appropriate media. In order to enumerate the aerobic mesophilic
microorganisms, 1.0 ml of each dilution was pour-plated in Plate
Count Agar (PCA; Difco, Detroit, USA). After incubation at 30 °C for
72 h, plates with 15–300 colonies were counted. To count molds
and yeasts, 1.0 ml of the initial (10−1
) dilution was spread-plated
on three plates (0.3, 0.3 and 0.4 ml) of Dichloran Rose Bengal Chloramphenicol
agar (DRBC; Difco, Detroit, USA.), and 0.1 ml of each subsequent
dilution was spread on one DRBC plate. Plates were then
incubated at 25 °C for 3–5 days, and plates with 15–300 colonies
were counted. Microbial data were transformed into logarithms of
the number of colony-forming units (log10 CFU ml−1
). Detection
limit was 10 CFU ml−1 (1.0 log10 CFU ml−1
). When no colonies
were detected, an arbitrary value of 0.5 log10 CFU ml−1 was assigned.
2.3.2. Growth curve modeling
In order to estimate growth kinetic parameters and shelf-life,
growth curves of the experimental data obtained were fitted to the
re-parameterized version of the modified Gompertz equation (Corbo,

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.1 สกัดน้ำทับทิม
ทับทิม ( P. granatum L. , CV. ยอดเยี่ยม) ให้โดย Unifrutti
จำกัด (ลาเซเรน่า, ชิลี) ถูกนำมาใช้ในการสกัดน้ำผลไม้.
ลูกทับทิมถูกล้างด้วยน้ำประปาและแยกตนเอง
ออกเป็น arils น้ำทับทิมสกัดจาก arils โดยคั้นน้ำผลไม้
(ฟิลลิป, 1.5 ลิตร, HR 2000/50, สแตนเลส) จากนั้นน้ำผลไม้บรรจุ
20 มล. เอทิลีนถุงที่มีความยืดหยุ่นและเก็บไว้ที่ 4 ± 1 ° C.
2.2 การรักษาความดันสูง
ตัวอย่างบรรจุอยู่ในภาชนะโหลดรูปทรงกระบอกที่
4 องศาเซลเซียสและแรงดันที่ 350, 450 และ 550 MPa ระหว่างวันที่ 30, 90 และ 150 s
และเมื่อเทียบกับน้ำทับทิมได้รับการรักษา (Control) น้ำถูก
ใช้เป็นสื่อกลางในการส่งแรงดันทำงานที่ 17 MPa / S
อัตราลาด; การบีบอัดเวลาน้อยกว่า 5 วินาที 2 L ประมวลผล
หน่วย (Avure เทคโนโลยี Incorporated, Kent WA, USA) ถูกใช้ในการ
อัดน้ำผลไม้ทับทิม.
ตัวอย่างถูกเก็บไว้ในเวลาต่อมา 4 ° C เป็นเวลา 35 วัน.
กายภาพและทางเคมีและการวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาได้ดำเนินการใน
วันที่ 0, 3 , 5, 7, 10, 15, 20, 25, 30 และ 35 สำหรับแต่ละการรักษาความดัน
และการควบคุมที่เกี่ยวข้อง (unpressurized) ตัวอย่าง สำหรับทุก
ชนิดของตัวอย่างที่สามสำหรับกระบวนการที่แตกต่างกัน (n = 3) ได้รับการพิจารณา
และวิเคราะห์แยกต่างหาก.
2.3 การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยา
2.3.1 นับจุลินทรีย์
กลุ่มตัวอย่างทั้งหมดถูกนำมาวิเคราะห์สำหรับตัวเลขของจุลินทรีย์ mesophilic แอโรบิก,
เชื้อราและยีสต์ สิบมิลลิลิตรของแต่ละกลุ่มตัวอย่าง
ได้รับการปลอดเชื้อและหดหาย 90 มิลลิลิตรแช่เย็น
สูงสุดกู้คืนเจือจาง (Oxoid เบซิง, Hampshire,
อังกฤษ) นอกจากเจือจางทศนิยมที่ทำกับเจือจางเดียวกัน
และซ้ำกันอย่างน้อยสามเจือจางที่เหมาะสมถูกชุบ
บนสื่อที่เหมาะสม เพื่อที่จะแจกแจง mesophilic แอโรบิก
จุลินทรีย์ 1.0 มล. ของแต่ละเจือจางเป็นเทชุบจาน
นับวุ้น (PCA; Difco, ดีทรอยต์, สหรัฐอเมริกา) หลังจากการบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา
72 ชั่วโมง, จานกับ 15-300 อาณานิคมนับ การนับแม่พิมพ์
และยีสต์ 1.0 มิลลิลิตรเริ่มต้น (10-1
) เจือจางกระจายชุบ
สามแผ่น (0.3, 0.3 และ 0.4 มิลลิลิตร) Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol
วุ้น (DRBC. Difco, ดีทรอยต์, USA) และ 0.1 มล. ของแต่ละที่ตามมา
เจือจางกระจายบนจาน DRBC หนึ่ง แผ่นถูกแล้ว
บ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3-5 วันและแผ่นกับ 15-300 อาณานิคม
นับ ข้อมูลจุลินทรีย์ถูกเปลี่ยนเป็นลอการิทึมของ
จำนวนหน่วยอาณานิคมขึ้นรูป (log10 CFU ML-1
) การตรวจสอบ
วงเงิน 10 CFU ML-1 (1.0 log10 CFU ML-1
) เมื่อไม่มีอาณานิคม
ถูกตรวจพบค่าโดยพลการของ 0.5 log10 CFU ML-1 ได้รับมอบหมาย.
2.3.2 การสร้างแบบจำลองอัตราการเจริญเติบโต
ในการประมาณค่าพารามิเตอร์การเจริญเติบโตของการเคลื่อนไหวและอายุการเก็บรักษา
เส้นโค้งการเจริญเติบโตของข้อมูลการทดลองที่ได้มาติดตั้งกับ
รุ่นใหม่แปรของสมการแก้ไข Gompertz (Corbo,

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.1 . การสกัดน้ำผลไม้ทับทิมทับทิม ( หน้า granatum L . cv . ยอดเยี่ยม ) โดย UNIFRUTTIจำกัด ( La Serena ชิลี ) , ถูกใช้ในการสกัดน้ำผลไม้ผลทับทิมคือล้างด้วยน้ำประปาและตนเองแยกเป็น arils . น้ําทับทิม สกัดจาก arils โดยคั้น( ฟิลิปส์ , 1.5 ลิตรชั่วโมง 2000 / 50 , สแตนเลส ) แล้วน้ำที่ถูกบรรจุกระเป๋าพลาสติกมีความยืดหยุ่นใน 20 มิลลิลิตร และเก็บไว้ที่ 4 ± 1 ° C2.2 . รักษาความดันสูงบรรจุตัวอย่างถูกวางไว้ในภาชนะทรงกระบอกที่โหลด4 ° C และแรงดันที่ 350 , 450 และ 550 MPa ระหว่าง 30 , 90 และ 150 วินาทีและเมื่อเทียบกับน้ำผลไม้ทับทิมดิบ ( ควบคุม ) น้ำคือการใช้ความดันปานกลาง ทำงาน 17 เมก / วินาทีอัตราการบีบอัดทางลาด ; เวลาไม่ถึง 5 วินาที 2 ชั้นการประมวลผลหน่วย ( avure Technologies Incorporated , Kent WA , USA ) ใช้แรงดันจากน้ำทับทิม .จำนวนและเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C เป็นเวลา 35 วันการวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาและเคมี physico ทดลองบนวันที่ 0 , 3 , 5 , 7 , 10 , 15 , 20 , 25 , 30 และ 35 สำหรับแต่ละการรักษาความดันและการควบคุมที่เกี่ยวข้อง ( n ที่ไม่มีอากาศ ) ตัวอย่าง สำหรับทั้งหมดชนิดของตัวอย่าง สามรุ่นที่แตกต่างกัน ( n = 3 ) พิจารณาและวิเคราะห์แยกต่างหาก2.3 การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยา2.3.1 . นับจากจุลินทรีย์ตัวอย่างวิเคราะห์ตัวเลขของแอโรบิก มีจุลินทรีย์ราและยีสต์ 10 มิลลิลิตร ในแต่ละตัวอย่างและได้ aseptically บดกับ 90 ml แช่เย็นเตรียมกู้สูงสุด ( oxoid Basingstoke Hampshire , ,อังกฤษ ) เพิ่มเติมวิธีการทศนิยมได้ด้วยเตรียมเหมือนกันและข้อมูลที่ซ้ำกันของวิธีการที่เหมาะสมอย่างน้อยสามคนชุบในสื่อที่เหมาะสม เพื่อที่จะระบุมีแอโรบิกจุลินทรีย์ , 1.0 มิลลิลิตรของแต่ละ dilution คือเทชุบในจานนับ ( PCA ; difco ดีทรอยต์ สหรัฐอเมริกา ) หลังจากบ่มที่ 30 ° C สำหรับ72 ชั่วโมง แผ่น 15 – 300 โคโลนีเป็นนับ นับแม่พิมพ์และยีสต์ , 1.0 มิลลิลิตร ( 10 − 1 เริ่มต้น) เจือจางแพร่ไปชุบ3 แผ่น ( 0.3 0.3 และ 0.4 มล. ) ของไดคลอแรนโรสเบงกอล คลอแรมเฟนิคอล( drbc ; difco ดีทรอยต์ , USA ) และ 0.1 ml ของแต่ละที่ตามมาการเป็นหนึ่ง drbc กระจายบนจาน แผ่น ) แล้วอุณหภูมิ 25 ° C เป็นเวลา 3 - 5 วัน และแผ่น 15 – 300 โคโลนีเคยนับ ข้อมูลที่ถูกแปลงเป็นลอการิทึมของจุลินทรีย์จํานวนหน่วยสร้างอาณานิคม ( LN CFU ml − 1) การตรวจจับจำกัด 10 CFU ml − 1 ( LN CFU ml − 1 สำหรับ) เมื่อไม่มีอาณานิคมถูกตรวจพบค่าโดยพลการของ 0.5 LN CFU ml − 1 ที่ได้รับมอบหมาย2.3.2 . โมเดลโค้งพัฒนาการเพื่อใช้ในการประมาณค่าพารามิเตอร์จลน์และอายุการเก็บรักษาของ ,เส้นโค้งการเติบโตของข้อมูลที่ได้ถูกติดตั้งเพื่อทดลองอีกรุ่นของพารามิเตอร์การสมการ ( corbo ๆ ,