Canola varieties have been developed to produce oil
and meal with lower levels of erucic acid and glucosinolatos,
respectively (Bell, 1993). The oil in canola
must contain less than 2% of erucic acid, and the meal
should contain less than 30 µmol/g of aliphatic glucosinolates
(Leeson and Summers, 2005; Khajali and
Slominski, 2012).
Canola meal is used as a protein source in poultry
diets (Canola Council of Canada, 2009). Its composition
and nutritional value vary substantially depending
on the type of processing, and these characteristics also
reflect differences among cultivars (Bell, 1993). In addition,
these factors affect the content and composition
of glucosinolates in canola meal (Jensen et al., 1995).
Such variation can reduce the performance of the birds
by reducing food intake (Tripathi and Mishra, 2007).
For this reason, the determination of the coefficients ofnutrient digestibility of canola meal in the diet can aid
in the optimization of the use of this protein source in
diets for broilers.
Canola meal can be included in the diet of broilers up
to a level of 10% for chick starter and 20% for broiler
grower without affecting the growth performance of
broilers when diets are formulated based on the level
of digestible amino acids (Canola Council of Canada,
2009). According to this source, canola meal may also
be used as a protein source for turkeys, with a level of
up to 30% considered suitable in the grower phase.
Min et al. (2011) indicated that a 25% level of canola
meal can be used in broiler diets without any negative
effect on growth performance. Payvastagan et al.
(2012) also found that feed intake of broilers was not
affected by canola meal. However, weight gain and feed
conversion ratio were negatively affected by the addition
of 20% of canola meal.
If alternative to SBM protein supplements are proposed
for use in animal diets, it is important to consider
the effects of these feed ingredients on the intestinal
mucosa. Figueiredo et al. (2003) tested various inclusion
levels of canola meal (0, 10, 20, 30, and 40%) in
the diets of broilers at 21 d of age and found no dif-ferences (P < 0.05) among levels for villus height and
the villus:crypt ratio; these authors concluded that the
integrity of the villi was not impaired. Likewise, Chiang
et al. (2010) found no significant differences in villus
height or crypt depth in the duodenum of broilers at 21
and 42 d of age fed with a control diet (without canola
meal) and 2 experimental diets, one with fermented
canola meal (10%) and the other with unfermented
canola meal (10%). However, Xu et al. (2012) tested
the inclusion levels of 0, 5, 10, and 15% of fermented
canola meal in the diets of broilers at up to 42 d of age
and observed a higher villus height with 10% canola
meal with no significant difference observed for crypt
depth.
Antinutritional factors contained in canola meal may
affect the growth performance of broilers. Information
on the effect of canola meal inclusion level on nutrient
digestibility and the intestinal mucosa is lacking.
Therefore, the aim of this study was to evaluate the
effect of the substitution of soybean meal (SBM) for
canola meal in broiler diets on production, nutrient digestibility,
and morphometry of the intestinal mucosadevelopment according to the recommendations of Rostagno
et al. (2011). Starter diets were used at 8 to 21
d of age, and grower and finisher diets were used at 22
to 35 d of age. Five levels of canola meal (0, 10, 20,
30, and 40%) were used to replace SBM (see Table 1).
The canola meal used in the present experiment was
obtained from the feed industry. The calcium level of
the experimental diets is higher than recommended due
to the vitamin mix used, which contains a high level of
this mineral. To balance all the other micro ingredients
in the diets, the amount of Ca became high. However,
it happened in all dietary treatments, and therefore, it
did not interfere in the results herein obtained.
Growth Performance
The following growth performance variables were
evaluated: average bird weight, daily weight gain,
feed intake, and feed conversion ratio. The birds were
weighed on the first day of the experiment, then weighed
weekly throughout the remaining experimental period
(8 to 35 d of age). The feed was provided daily and the
leftover feed were was weighed weekly to calculate the
feed conversion data.
Canola varieties have been developed to produce oiland meal with lower levels of erucic acid and glucosinolatos,respectively (Bell, 1993). The oil in canolamust contain less than 2% of erucic acid, and the mealshould contain less than 30 µmol/g of aliphatic glucosinolates(Leeson and Summers, 2005; Khajali andSlominski, 2012). Canola meal is used as a protein source in poultrydiets (Canola Council of Canada, 2009). Its compositionand nutritional value vary substantially dependingon the type of processing, and these characteristics alsoreflect differences among cultivars (Bell, 1993). In addition,these factors affect the content and compositionof glucosinolates in canola meal (Jensen et al., 1995).Such variation can reduce the performance of the birdsby reducing food intake (Tripathi and Mishra, 2007).For this reason, the determination of the coefficients ofnutrient digestibility of canola meal in the diet can aidin the optimization of the use of this protein source indiets for broilers. Canola meal can be included in the diet of broilers upto a level of 10% for chick starter and 20% for broilergrower without affecting the growth performance ofbroilers when diets are formulated based on the levelof digestible amino acids (Canola Council of Canada,2009). According to this source, canola meal may alsobe used as a protein source for turkeys, with a level ofup to 30% considered suitable in the grower phase. Min et al. (2011) indicated that a 25% level of canolameal can be used in broiler diets without any negativeeffect on growth performance. Payvastagan et al.(2012) also found that feed intake of broilers was notaffected by canola meal. However, weight gain and feedconversion ratio were negatively affected by the additionof 20% of canola meal. If alternative to SBM protein supplements are proposedfor use in animal diets, it is important to considerthe effects of these feed ingredients on the intestinalmucosa. Figueiredo et al. (2003) tested various inclusionlevels of canola meal (0, 10, 20, 30, and 40%) inthe diets of broilers at 21 d of age and found no dif-ferences (P < 0.05) among levels for villus height andthe villus:crypt ratio; these authors concluded that theintegrity of the villi was not impaired. Likewise, Chianget al. (2010) found no significant differences in villusheight or crypt depth in the duodenum of broilers at 21and 42 d of age fed with a control diet (without canolameal) and 2 experimental diets, one with fermentedcanola meal (10%) and the other with unfermentedcanola meal (10%). However, Xu et al. (2012) testedthe inclusion levels of 0, 5, 10, and 15% of fermentedcanola meal in the diets of broilers at up to 42 d of ageand observed a higher villus height with 10% canolameal with no significant difference observed for cryptdepth.Antinutritional factors contained in canola meal mayaffect the growth performance of broilers. Informationon the effect of canola meal inclusion level on nutrientdigestibility and the intestinal mucosa is lacking.Therefore, the aim of this study was to evaluate theeffect of the substitution of soybean meal (SBM) forcanola meal in broiler diets on production, nutrient digestibility,and morphometry of the intestinal mucosadevelopment according to the recommendations of Rostagnoet al. (2011). Starter diets were used at 8 to 21d of age, and grower and finisher diets were used at 22to 35 d of age. Five levels of canola meal (0, 10, 20,30, and 40%) were used to replace SBM (see Table 1).The canola meal used in the present experiment wasobtained from the feed industry. The calcium level ofthe experimental diets is higher than recommended dueto the vitamin mix used, which contains a high level ofthis mineral. To balance all the other micro ingredientsin the diets, the amount of Ca became high. However,it happened in all dietary treatments, and therefore, itdid not interfere in the results herein obtained.Growth PerformanceThe following growth performance variables wereevaluated: average bird weight, daily weight gain,feed intake, and feed conversion ratio. The birds wereweighed on the first day of the experiment, then weighedweekly throughout the remaining experimental period(8 to 35 d of age). The feed was provided daily and theleftover feed were was weighed weekly to calculate theตัวดึงข้อมูลการแปลง
การแปล กรุณารอสักครู่..
พันธุ์คาโนลาได้รับการพัฒนาในการผลิตน้ำมันและอาหารที่มีระดับต่ำของกรด erucic และ glucosinolatos, ตามลำดับ (เบลล์ 1993) น้ำมันคาโนลาจะต้องมีน้อยกว่า 2% ของกรด erucic และอาหารที่ควรจะมีน้อยกว่า30 ไมโครโมล / กรัมของ glucosinolates aliphatic (Leeson และฤดูร้อน 2005 Khajali และSlominski 2012). อาหารคาโนลาที่ใช้เป็นแหล่งที่มาของโปรตีน ในสัตว์ปีกอาหาร(คาโนลาสภาแคนาดา 2009) องค์ประกอบของมันและคุณค่าทางโภชนาการที่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญขึ้นอยู่กับชนิดของการประมวลผลและลักษณะเหล่านี้ยังสะท้อนให้เห็นถึงความแตกต่างระหว่างพันธุ์(เบลล์ 1993) นอกจากนี้ปัจจัยเหล่านี้ส่งผลกระทบต่อเนื้อหาและองค์ประกอบของglucosinolates ในอาหารคาโนลา (เซ่น et al., 1995). รูปแบบดังกล่าวสามารถลดประสิทธิภาพของนกโดยการลดการบริโภคอาหาร (Tripathi และ Mishra, 2007). ด้วยเหตุนี้ การกำหนดค่าสัมประสิทธิ์ ofnutrient การย่อยของอาหารคาโนลาในอาหารสามารถช่วยในการเพิ่มประสิทธิภาพการใช้งานของแหล่งที่มาของโปรตีนในอาหารสำหรับไก่เนื้อ. อาหารคาโนลาสามารถจะรวมอยู่ในอาหารของไก่เนื้อขึ้นมาให้อยู่ในระดับ 10% สำหรับการเริ่มต้นเจี๊ยบและ 20% สำหรับไก่เนื้อปลูกโดยไม่มีผลต่อการเจริญเติบโตของไก่เนื้อเมื่ออาหารที่มีสูตรขึ้นอยู่กับระดับของกรดอะมิโนที่ย่อย(คาโนลาสภาแคนาดา2009) ตามแหล่งที่มานี้อาหารคาโนลานอกจากนี้ยังอาจถูกนำมาใช้เป็นแหล่งโปรตีนสำหรับไก่งวงที่มีระดับของได้ถึง30% ถือว่าอยู่ในขั้นตอนที่เหมาะสมปลูก. มินและอัล (2011) ชี้ให้เห็นว่าในระดับ 25% ของคาโนลาอาหารสามารถนำมาใช้ในอาหารไก่เนื้อโดยไม่เชิงลบใดๆมีผลต่อการเจริญเติบโต Payvastagan et al. (2012) ยังพบว่าปริมาณอาหารที่กินของไก่ที่ไม่ได้รับผลกระทบจากอาหารคาโนลา อย่างไรก็ตามการเพิ่มของน้ำหนักและอาหารอัตราการได้รับผลกระทบทางลบจากการนอกจากนี้20% ของอาหารคาโนลา. หากทางเลือกให้กับผลิตภัณฑ์เสริมอาหารโปรตีน SBM มีการเสนอเพื่อใช้ในอาหารสัตว์ก็เป็นสิ่งสำคัญที่จะต้องพิจารณาผลกระทบของวัตถุดิบอาหารเหล่านี้ในลำไส้เยื่อเมือก. Figueiredo et al, (2003) การทดสอบรวมต่างๆระดับของอาหารคาโนลา(0, 10, 20, 30, และ 40%) ในอาหารไก่เนื้อใน21 วันของอายุและพบว่าไม่มี ferences แตก (p <0.05) ระดับความสูง villus และvillus อัตราส่วนฝังศพใต้ถุนโบสถ์; ผู้เขียนเหล่านี้สรุปได้ว่าความสมบูรณ์ของ villi ที่ไม่ได้มีความบกพร่อง ในทำนองเดียวกันจังหวัดet al, (2010) พบว่าไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญใน villus ความสูงหรือความลึกใต้ดินในลำไส้เล็กส่วนต้นของไก่วันที่ 21 และ 42 d อายุเลี้ยงด้วยอาหารสูตรควบคุม (โดยคาโนลาอาหาร) และ 2 อาหารทดลองหนึ่งที่มีการหมักอาหารคาโนลา(10%) และ อื่น ๆ ที่มี unfermented อาหารคาโนลา (10%) อย่างไรก็ตาม Xu et al, (2012) ที่ผ่านการทดสอบระดับรวมของ0, 5, 10, และ 15% ของการหมักอาหารคาโนลาในอาหารของไก่ที่ได้ถึง42 d อายุและสังเกตความสูงvillus ที่สูงขึ้นกับคาโนลา 10% อาหารที่มีไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญสังเกต ห้องใต้ดินลึก. ปัจจัย Antinutritional ที่มีอยู่ในอาหารคาโนลาอาจส่งผลกระทบต่อการเจริญเติบโตของไก่เนื้อ ข้อมูลเกี่ยวกับผลกระทบของคาโนลาระดับรวมอาหารในสารอาหารที่ย่อยและเยื่อบุลำไส้ขาด. ดังนั้นจุดมุ่งหมายของการศึกษาครั้งนี้เพื่อประเมินผลกระทบของการทดแทนกากถั่วเหลือง (SBM) สำหรับอาหารคาโนลาในอาหารไก่เนื้อในการผลิตสารอาหารการย่อย, และ morphometry ของ mucosadevelopment ลำไส้ตามคำแนะนำของ Rostagno et al, (2011) อาหารเริ่มต้นถูกนำมาใช้ใน 8-21 วันของอายุและผู้ปลูกและอาหารถูกนำมาใช้หมัดเด็ดวันที่ 22 ที่จะ 35 D อายุ ห้าระดับของอาหารคาโนลา (0, 10, 20, 30, และ 40%) ถูกนำมาใช้เพื่อแทนที่ SBM (ดูตารางที่ 1). อาหารคาโนลาใช้ในการทดลองในปัจจุบันได้รับการได้รับจากอุตสาหกรรมอาหาร ระดับแคลเซียมอาหารทดลองสูงกว่าที่แนะนำเนื่องจากการผสมวิตามินที่ใช้ซึ่งมีระดับสูงของแร่ธาตุนี้ เพื่อความสมดุลของส่วนผสมทั้งหมดไมโครอื่น ๆในอาหารจำนวน Ca กลายเป็นสูง แต่มันเกิดขึ้นในการรักษาอาหารทั้งหมดและดังนั้นจึงไม่ได้เข้าไปยุ่งในผลที่ได้รับในที่นี้. สมรรถภาพการเจริญเติบโตตัวแปรการเจริญเติบโตต่อไปนี้ถูกประเมินน้ำหนักนกเฉลี่ยน้ำหนักที่เพิ่มขึ้นทุกวันปริมาณอาหารที่กินและอัตราการเปลี่ยนอาหาร นกถูกชั่งน้ำหนักในวันแรกของการทดลองแล้วชั่งน้ำหนักทุกสัปดาห์ตลอดระยะเวลาการทดลองที่เหลืออยู่(8-35 d อายุ) ฟีดถูกจัดให้ในชีวิตประจำวันและอาหารที่เหลือได้รับการได้รับการชั่งน้ำหนักทุกสัปดาห์ในการคำนวณข้อมูลการเปลี่ยนอาหาร
การแปล กรุณารอสักครู่..
พันธุ์คาโนล่าได้ถูกพัฒนาขึ้นเพื่อผลิตน้ำมัน
และอาหาร ระดับของกรด eruca glucosinolatos
และ , ตามลำดับ ( ระฆัง , 1993 ) น้ำมันคาโนล่า
ต้องประกอบด้วยน้อยกว่าร้อยละ 2 ของ eruca กรดและอาหาร
ควรประกอบด้วยน้อยกว่า 30 µ mol / g ของอะลิฟาติกกลูโคซิโนเลต
( ที่ผู้ค้าและฤดูร้อน , 2005 ; khajali และ
คาโนลา slominski 2012 ) อาหารที่ใช้เป็นแหล่งโปรตีนในสัตว์ปีก
อาหาร ( สภาคาโนล่าของแคนาดา , 2009 ) องค์ประกอบและคุณค่าทางโภชนาการของ
ที่แตกต่างกันอย่างมากขึ้นอยู่กับชนิดของการประมวลผล และลักษณะเหล่านี้ยังสะท้อนให้เห็นถึงความแตกต่างระหว่างพันธุ์
( ระฆัง , 1993 ) นอกจากนี้
ปัจจัยเหล่านี้ส่งผลกระทบต่อเนื้อหาและองค์ประกอบของอาหารในคาโนล่า
กลูโคซิโนเลต ( เจนเซ่น et al . , 1995 ) .
รูปแบบดังกล่าวสามารถลดประสิทธิภาพของนก
โดยการลดการบริโภคอาหาร ( ทริปาธิ และ Mishra , 2007 ) .
ด้วยเหตุนี้การหาสัมประสิทธิ์การย่อยได้ของคาโนลา ofnutrient อาหารในอาหารสามารถช่วยในการเพิ่มประสิทธิภาพของการใช้
จากแหล่งโปรตีนในอาหารไก่กระทง .
คาโนลาอาหารสามารถรวมอยู่ในอาหารไก่กระทงขึ้น
ไปที่ระดับ 10% และ 20% สำหรับ starter เจี๊ยบไก่
ปลูกโดยไม่มีผลกระทบต่อการเจริญเติบโตของไก่เนื้อ เมื่ออาหารเป็นสูตร
ตามระดับของการย่อยกรดอะมิโน ( สภาคาโนล่าของแคนาดา
2009 ) ตามแหล่งที่มา , คาโนลาอาหารอาจ
ถูกใช้เป็นแหล่งโปรตีนสำหรับไก่งวงกับระดับของ
ถึง 30% ถือว่าเหมาะสมในการปลูกระยะ .
มิน et al . ( 2011 ) พบว่า ร้อยละ 25 ระดับของคาโนลา
อาหารสามารถใช้เป็นอาหารไก่เนื้อได้โดยไม่มีผลกระทบเชิงลบใด ๆ
ต่อสมรรถนะการเจริญเติบโต payvastagan et al .
( 2012 ) นอกจากนี้ยังพบว่า ปริมาณอาหารที่กินของไก่ไม่ได้
ผลกระทบจากคาโนล่าอาหาร อย่างไรก็ตาม น้ำหนักและอัตราการเปลี่ยนอาหาร
ถูกกระทบ โดยเพิ่ม 20% ของคาโนลา
ถ้าทางเลือกให้กากอาหาร โปรตีนอาหารเสริมเสนอ
สำหรับใช้ในอาหารสัตว์มันเป็นสิ่งสำคัญที่จะต้องพิจารณา
ผลของส่วนผสมอาหารเหล่านี้ในเซลล์เยื่อบุลำไส้
ฟิเกรีโด et al . ( 2003 ) ทดสอบต่าง ๆรวม
ระดับของคาโนล่าอาหาร ( 0 , 10 , 20 , 30 และ 40 เปอร์เซ็นต์ในอาหารไก่กระทง
ที่ 21 D อายุ ไม่พบ ferences ดิฟ ( P < 0.05 ) ในระดับสูงและวิลลัส
วิลลัส : อัตราส่วนฝังศพใต้ถุนโบสถ์ ; ผู้เขียนเหล่านี้สรุปได้ว่า
ความสมบูรณ์ของวิลไลไม่บกพร่องอนึ่ง มหาวิทยาลัยเชียงใหม่
et al . ( 2010 ) พบว่าไม่มีความแตกต่างในความสูงหรือความลึกวิลลัส
ใต้ดินในลำไส้เล็กส่วนต้นของไก่ที่ 21
และ 42 D อายุเลี้ยงด้วยอาหารควบคุม ( ไม่มีคาโนลา
อาหาร ) และ 2 กลุ่มทดลอง หนึ่งกับอาหารหมัก
คาโนลา ( 10% ) และอื่น ๆที่มี unfermented
คาโนล่าอาหาร ( 10% ) อย่างไรก็ตาม , Xu et al . ( 2012 ) ทดสอบ
รวมระดับ 0 , 5 , 10 และ 15 เปอร์เซ็นต์ ของหมัก
คาโนล่าป่นในอาหารไก่กระทงที่ได้ถึงอายุ 42 D
และสังเกตความสูง วิลลัสสูงกว่า 10% คาโนลา
อาหารไม่มีความแตกต่าง สังเกตความลึกใต้ดิน
.
ปัจจัยมะกิ้งที่มีอยู่ในคาโนล่าอาหาร
ส่งผลกระทบต่อการเจริญเติบโตของไก่เนื้อ ข้อมูล
ผลของคาโนลาอาหารรวมระดับในการย่อยได้ และเยื่อบุลำไส้
จึงขาดจุดมุ่งหมายของการศึกษานี้คือ เพื่อศึกษาผลของการใช้กากถั่วเหลือง ( SBM )
คาโนล่าอาหารในไก่อาหารต่อการผลิตและการย่อยได้ของ mucosadevelopment
, morphometry ลำไส้ ตามข้อเสนอแนะของ rostagno
et al . ( 2011 ) เริ่มต้นที่อาหารที่ใช้ 8 21
D อายุ และผู้ปลูกและทำให้อาหารมีการใช้ ใน 22
1 D อายุห้าระดับของคาโนล่าอาหาร ( 0 , 10 , 20 , 30 และ 40 %
, ) ถูกใช้เพื่อแทนที่ SBM ( ดูตารางที่ 1 )
คาโนลาอาหารที่ใช้ในการทดลองได้จากปัจจุบัน
อุตสาหกรรมอาหารสัตว์ ระดับของแคลเซียมในอาหารทดลองสูงกว่า
แนะนำเนื่องจากการใช้วิตามินผสมซึ่งประกอบด้วยระดับสูงของ
แร่นี้ เพื่อความสมดุลของส่วนผสมทั้งหมดไมโครอื่น
ในอาหารปริมาณของ CA ก็สูง อย่างไรก็ตาม ,
มันเกิดขึ้นในการรักษาทั้งหมด อาหาร และดังนั้นจึงไม่ยุ่ง
ในผลลัพธ์นี้ได้
ต่อไปนี้การเจริญเติบโตการเจริญเติบโตตัวแปร
ประเมินน้ำหนักนกเฉลี่ย น้ำหนักขึ้นทุกวัน
การกินอาหาร และอัตราส่วนการแปลงอาหาร นกถูก
ชั่งในวันแรกของการทดลอง แล้วชั่งน้ำหนัก
ทุกสัปดาห์ตลอดระยะเวลาที่เหลือ 2
8 D อายุ 35 ) อาหารให้ทุกวัน และอาหารที่เหลืออยู่ 1 สัปดาห์
เลี้ยงเพื่อคำนวณการแปลงข้อมูล
การแปล กรุณารอสักครู่..