calculate the electrical conductivity σ [S·m] of the sample under current
application.
σ ¼ ðI·dÞ=ðV·AÞ ð1Þ
2.6. Sterilization test
The sterilization test was conducted in accordance with the
constant-temperature test and the microbacterial test for retort
food stipulated in the Food Sanitation Act. The test was done five
times. The ohmically heated samples, held at 35 °C for 14 days,
were cooled to 20 °C before their morphology was observed. The
samples whose packaging containers were inflated or from which
there was content leakage were considered microorganism-positive.
The samples considered as microorganism-negative were subjected to
the microorganism test. A portion of each sample, 25 ± 0.1 g, was
collected aseptically and placed in a sterilized bag (PYXON-30, Elmex)
with 225 ml of sterilized water. This mixture was then ground in a
homogenizer (Stomacher 400-T, Organo) for 60 s to obtain a sample
extract; 9ml of sterilized water was added to 1ml of the sample extract
to make a 1:100 diluent. One milliliter of the 1:100 diluent was
dispensed in five tubes, each containing thioglycollate medium (Eiken
Chemical) heat-dissolved in distilled water and sterilized (hereinafter
referred to as the TGC liquid medium). Furthermore, one milliliter of
sterilized water was added to the TGC liquid medium as negative
control. Then, the sample and control solutions were incubated at
35 °C for 48 h to check for any microbial growth.
2.7. Temperature changes during retort heating
To monitor sample temperature during retort heating, a temperature
data logger (button-shaped, diameter 8.675mm, height 6.4mm) (Hyper
Thermochron, KN Laboratories) was inserted into the center of each
sample. The monitoring was done five times.
2.8. F0 measurement
F0 value was calculated as the accumulated thermal death effect on
the spores of Clostridium botulinum, one of the most common food
poisoning-causing bacteria. Lethal rate, L, was calculated using the
following equation:
L ¼ 10 ½ðT–121Þ=10 ð2Þ
where T is temperature (C°).
F0 is calculated using Eq. (2) as follows:
F0 ¼
Z
Ldt ¼
Z
10 ½ðT–121Þ=10dt: ð3Þ
Based on temperature history, F0 was calculated using (3) for ohmic
heating and retort heating.
2.9. Water content measurement
Five different samples were used for the measurements. Differences
between groupswere evaluated using a two-sample t test. Five grams of
each sample was placed in an aluminum cup (Toyo Aluminum Ekco
Products) and was leveled using a medicine spoon. Following drying
by heating at 135 °C for 120 min, the water content of each sample
was measured using infrared moisture testers (FD-600, FD-620, Kett
Electric Laboratory).
2.10. Glutamic acid measurement
Five different samples were used for the measurements.
Differences between groups were evaluated using a two-sample t test.
A YAMASA L-Glutamate Assay Kit II (Yamasa Corporation) was used
for this purpose.
2.11. Inosine monophosphate (IMP) measurement
Five different samples were used for the measurements. Differences
between groups were evaluated using a two-sample t test. High-speed
liquid chromatography was used for measuring IMP. We used a Shodex
Asahipak GS-320 HG column (φ7.6mm× 300mm, Showa Denko) at a
temperature of 30 °C. An 875-UV (JASCO) detector was used, and the
detection wavelength was 260 nm. As the mobile phase, we used
200 mM sodium dihydrogen phosphate (pH2.9) filtered through a
membrane filter (pore diameter 0.20 μm); its flow rate was 0.6ml/min.
A portion of each sample, 2.0±0.3 g, was homogenized in 5ml of
chilled 10% perchloric acid. Then, the solution was centrifuged at
16,000 g using a centrifuge (CF15R, Hitachi Koki). The supernatant
was decanted; 5ml of 10% perchloric acidwas then added to the residue
and mixed well. This mixture was centrifuged for collecting the
supernatant. The supernatant and the 10% perchloric acid were mixed
to obtain a 25-ml supernatant diluent. One milliliter of the diluent was
neutralized using 10M KOH and 1M KOH, and the neutralized diluent
was centrifuged at 14,000 g. The supernatant was decanted, and 1 ml
of Milli-Q was added to the residue and mixed well; the mixture was
then centrifuged at 14,000 g, and the supernatant was collected. The
supernatant was centrifuged again and decanted, and then, Milli-Q
was added to the decanted supernatant to prepare 10 ml of test liquid.
The test liquid was filtered through a syringe filter unit (pore diameter
0.20 μm), and 20 μl of the test liquid was injected into the sample for
measurement. An autosampler (Model 09, System Instruments) was
used for injection.
2.12. Sensory test
The sensory test was conducted on about thirty men and women. The
ohmically heated and retort-heated samples, each 2.0±0.1g, were placed
on separate trays and the subjects evaluated them in terms of appearance,
flavor, taste, tenderness, flavor in mouth, and comprehensive evaluation
(six items) on a five-point scale (−2 to 2). As for comprehensive
evaluation, a two-sample preference test was also conducted.
2.13. Statistical analysis
The results were expressed as average±standard deviation, and
a t-test was used for determining statistical significance. Microsoft
Excel was used for this analysis.
3. Results and discussion
3.1. Cold point determination
The changes in temperature at locations A–E inside the cell are
shown in Fig. 2. The average time it took each of the five samples to
reach at 121 °C is shown in Fig. 3. The time taken to reach 121 °C was
the shortest at A, the center of the cell; the time taken was the longest
at D, the upper part of the cell near the electrode. The following reasons
were suggested for these results: temperature increase at A was the
fastest because itwas farthest fromthe cell surface andwas less affected
by heat transfer. In comparison, B, C, D, and E were closer to the cell
surface; D and E were closer to the stainless steel cap than B and C,
making D and E more susceptible to the effect of heat transfer. Thus,
the temperatures at these locations were lower. Furthermore, D was
located higher on the cell than E, thus releasing more heat than E. Thisshown in Fig. 6. The F0 values for ohmic heating and retort heatingwere
5.74 and 10.28, respectively (both exceeding 4). Therefore, it was
suggested that in addition to satisfying the requirements of 121 °C and
4 min, ohmic heating reduces the quality deterioration of food caused
by heating.
3.6. Water content
The changes in water content are shown in Fig. 7.
For all storage periods, the ohmically heated samples had higher
water content than the retort-heated samples; however, the differences
were not statistically significant.
3.7. IMP content
The changes in IMP concentration are shown in Fig. 8. ATP-related
compounds the samples stored for 14 days are shown in Fig. 9. During
the storage period between two days and one year, the ohmically
heated samples had significantly higher IMP concentration than the
retort-heated samples (p b 0.01). The x-axis represents the measured
sample, and the y-axis shows the content of ADP, AMP, ATP, and HxR.
ATP changes into ADP, ADP changes into AMP, AMP changes into IMP,
IMP changes into HxR, and HxR changes into Hx. The decreases in
ATP, ADP, and AMP lead to an increase in IMP content. Conversely,
increases in HxR and Hx lead to a decrease in IMP content. IMP
concentration changed to HxR, Hx and so on. IMP concentration in
both the sample types remained nearly constant across storage periods.
This suggests that IMP concentration did not change during storage. IMP
is themain flavor-enhancing component of chicken and is an important
Fig. 6. Evaluation of Lethal rate during ohmic heating and retort. Temperature reached
121 °C.
Fig. 7. Transition of water content rate of chicken processed by various heating methods
for 365 days.
Fig. 8. Transition of IMP concentration of chicken processed by various heating methods
for 365 days.
Fig. 5. Evaluation of temperature during ohmic heating and retort. Temperature reached
121 °C faster by ohmic heating than by retort.
indicator of the quality of chicken products. The above results showthat
the ohmically heated samples contained more IMP than retort-heated
samples, allowing for the preparation of higher-quality samples. This
is ascribed to the higher temperature increase rate under ohmic heating,
which restricts IMP reduction caused by heating.
3.8. Glutamic acid content
The changes in glutamic acid concentration are shown in Fig. 10. For
all storage periods, the ohmically heated samples had higher glutamic
acid concentration than the retort-heated samples. However, significant
differences were found only in the samples stored for 14, 84, 168, and
280 days (p b 0.05). Glutamic acid did not fluctuate greatly in both
sample types. Based on these findings, it was suggested that the
glutamic acid concentration did not change during storage.
3.9. Sensory test
The results of the sensory test are shown in Fig. 11. On average,
between the two sample types, the ohmically heated samples received
higher points in terms of appearance, taste, tenderness, flavor in mouth,
and comprehensive evaluation; the retort-heated samples received
higher points in terms of flavor. However, significant differences were
not found in all of the items. Therefore, it was suggested that there
were no marked differences in sensory quality between the two sample
types.
4. Conclusion
In this study, we ohmically heated chicken breast samples and
conducted various tests on the heated samples. Our findings are as
follows:
1) Temperature changes during current application were monitored at
several locations inside the heating cell. Temperature increase was
the slowest in the upper part of the cell near the electrode. Therefore,
this locationwas selected as the temperaturemeasurement location.
2) There was a high correlation between electrical conductivity
during current application and measured temperature (y = 4E-
05x2 + 0.0010x + 0.3690 with a contribution rate of R2 = 0.98).w
คำนวณการนำไฟฟ้าσ [S · m]
ของกลุ่มตัวอย่างในปัจจุบันภายใต้การประยุกต์ใช้.
σ¼ di · DTH = DV · Ath ð1Þ
2.6 การทดสอบการฆ่าเชื้อทดสอบการฆ่าเชื้อได้ดำเนินการให้สอดคล้องกับการทดสอบที่อุณหภูมิคงที่และการทดสอบmicrobacterial โต้สำหรับอาหารตามที่กำหนดไว้ในพระราชบัญญัติการสุขาภิบาลอาหาร การทดสอบได้ทำห้าครั้ง กลุ่มตัวอย่างอุ่น ohmically จัดขึ้นที่ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 14 วันได้รับการระบายความร้อนถึง20 องศาเซลเซียสก่อนที่จะสัณฐานของพวกเขาถูกตั้งข้อสังเกต ตัวอย่างที่มีภาชนะบรรจุภัณฑ์ที่ได้รับสูงขึ้นหรือจากการที่มีการรั่วไหลของเนื้อหาได้รับการพิจารณาจุลินทรีย์บวก. กลุ่มตัวอย่างที่ถือได้ว่าเป็นจุลินทรีย์ที่ลบได้ภายใต้การทดสอบจุลินทรีย์ เป็นส่วนหนึ่งของแต่ละตัวอย่าง 25 ± 0.1 กรัมถูกเก็บรวบรวมปลอดเชื้อและวางไว้ในถุงฆ่าเชื้อ(PYXON-30, Elmex) 225 ml ของน้ำผ่านการฆ่าเชื้อ ส่วนผสมนี้แล้วพื้นดินในโฮโมจีไน (Stomacher 400-T, ออกาโน่) เป็นเวลา 60 วินาทีที่จะได้รับตัวอย่างสารสกัด; 9ml น้ำฆ่าเชื้อถูกบันทึกอยู่ใน 1ml ของสารสกัดจากตัวอย่างที่จะทำให้1: 100 เจือจาง หนึ่งมิลลิลิตร 1: 100 เจือจางได้รับการยกเว้นในห้าหลอดแต่ละที่มีthioglycollate ปานกลาง (Eiken เคมี) ความร้อนละลายในน้ำกลั่นและการฆ่าเชื้อ (ต่อไปนี้จะเรียกว่าเป็นอาหารเหลวTGC) นอกจากนี้หนึ่งมิลลิลิตรของน้ำฆ่าเชื้อถูกเพิ่มลงในอาหารเหลว TGC เป็นเชิงลบการควบคุม จากนั้นกลุ่มตัวอย่างและการแก้ปัญหาการควบคุมถูกบ่มที่35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมงเพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ใด ๆ . 2.7 การเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิความร้อนในช่วงโต้เพื่อตรวจสอบอุณหภูมิความร้อนในช่วงตัวอย่างโต้, อุณหภูมิเครื่องบันทึกข้อมูล(ปุ่มรูป 8.675mm เส้นผ่าศูนย์กลาง 6.4 มมความสูง) (ไฮเปอร์Thermochron, KN ห้องปฏิบัติการ) ถูกใส่เข้าไปในศูนย์กลางของแต่ละตัวอย่าง การตรวจสอบก็ทำห้าครั้ง. 2.8 F0 วัดค่าF0 ที่คำนวณได้เป็นผลตายความร้อนสะสมในสปอร์ของเชื้อClostridium botulinum ซึ่งเป็นหนึ่งในอาหารที่พบมากที่สุดเป็นพิษที่ก่อให้เกิดเชื้อแบคทีเรีย อัตราการตาย, L, ที่คำนวณโดยใช้สมการดังต่อไปนี้: L 10 ¼? ½ðT-121Þ = 10? ð2Þที่ T คืออุณหภูมิ (° C). F0 คำนวณโดยใช้สมการ (2) เป็นดังนี้: F0 ¼ Z Ldt ¼ Z 10 ½ðT-121Þ = 10 dt: ð3Þจากประวัติศาสตร์อุณหภูมิF0 ที่คำนวณโดยใช้ (3) สำหรับ ohmic. ความร้อนและความร้อนโต้2.9 ปริมาณน้ำวัดห้าตัวอย่างที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับการวัด ความแตกต่างระหว่าง groupswere การประเมินโดยใช้สองตัวอย่างการทดสอบที ห้ากรัมของแต่ละตัวอย่างถูกวางไว้ในถ้วยอลูมิเนียม (Toyo อลูมิเนียม Ekco ผลิตภัณฑ์) และได้รับการปรับระดับการใช้ช้อนยา ต่อไปนี้การอบแห้งด้วยความร้อนที่ 135 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 120 นาทีปริมาณน้ำของแต่ละตัวอย่างถูกวัดโดยใช้การทดสอบความชื้นอินฟราเรด(FD-600, FD-620, Kett ไฟฟ้าในห้องปฏิบัติการ). 2.10 วัดกรดกลูตามิห้าตัวอย่างที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับการวัด. ความแตกต่างระหว่างกลุ่มที่ได้รับการประเมินโดยใช้สองตัวอย่างการทดสอบ t. Yamasa L-กลูตาเมต Assay Kit II (Yamasa คอร์ปอเรชั่น) ถูกนำมาใช้เพื่อการนี้. 2.11 inosine โมโน (IMP) วัดห้าตัวอย่างที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับการวัด ความแตกต่างระหว่างกลุ่มที่ได้รับการประเมินโดยใช้สองตัวอย่างการทดสอบที ความเร็วสูงของเหลว chromatography ถูกนำมาใช้สำหรับการวัดภูตผีปีศาจ เราใช้ Shodex Asahipak GS-320 HG คอลัมน์ (φ7.6mm× 300 มม, Showa Denko) ที่อุณหภูมิ30 องศาเซลเซียส รังสียูวี 875 (JASCO) ถูกนำมาใช้ตรวจจับและความยาวคลื่นการตรวจสอบ260 นาโนเมตร ในฐานะที่เป็นเฟสเคลื่อนที่เราใช้โซเดียม 200 มิลลิฟอสเฟต dihydrogen (pH2.9) กรองผ่านตัวกรองเมมเบรน(เส้นผ่าศูนย์กลางรูพรุน 0.20 ไมครอน); อัตราการไหลของมันคือ 0.6ml / นาที. ส่วนหนึ่งของแต่ละตัวอย่าง 2.0 ± 0.3 กรัมถูกปั่นใน 5ml ของแช่เย็น10% กรดเปอร์คลอริก แล้ววิธีการแก้ปัญหาที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่16,000 กรัมใช้หมุนเหวี่ยง (CF15R ฮิตาชิกิ) ใสถูก decanted; 5ml 10% acidwas เปอร์คลอริกแล้วเพิ่มไปยังตกค้างและผสมกัน ส่วนผสมนี้ได้รับการหมุนเหวี่ยงในการเก็บรวบรวมใส สารละลายและ 10% กรดเปอร์คลอริกถูกผสมเพื่อให้ได้เจือจางใส25 มล. หนึ่งมิลลิลิตรเจือจางถูกลบล้างโดยใช้ 10M เกาะและเกาะ 1M และเจือจางเป็นกลางถูกหมุนเหวี่ยงที่14,000 กรัม ใสถูก decanted และ 1 มิลลิลิตรของMilli-Q ถูกบันทึกอยู่ในสารตกค้างและผสมกัน ส่วนผสมที่ถูกปั่นแล้วที่ 14,000 กรัมและใสถูกเก็บรวบรวม ใสได้รับการหมุนเหวี่ยงอีกครั้งและ decanted แล้ว Milli-Q ถูกเพิ่มลงในสารละลาย decanted เพื่อเตรียมความพร้อม 10 มล. ของของเหลวการทดสอบ. ของเหลวทดสอบถูกกรองผ่านเข็มฉีดยาหน่วยกรอง (เส้นผ่าศูนย์กลางรูพรุน0.20 ไมครอน) และ 20 ไมโครลิตรของ ของเหลวทดสอบฉีดเข้าไปในตัวอย่างสำหรับการวัด ฉีดตัวอย่างอัตโนมัติ (รุ่น 09 ระบบ Instruments) ถูกใช้สำหรับการฉีด. 2.12 การทดสอบทางประสาทสัมผัสการทดสอบทางประสาทสัมผัสได้ดำเนินการในประมาณสามสิบชายและหญิง ตัวอย่าง ohmically ร้อนและโต้ร้อนแต่ละ 2.0 ± 0.1g, ถูกวางไว้บนถาดแยกต่างหากและวิชาที่ประเมินพวกเขาในแง่ของลักษณะรสชาติรสนุ่มรสชาติในปากและการประเมินผลที่ครอบคลุม(หกรายการ) ในวันที่ห้า -point ขนาด (-2 ถึง 2) ในฐานะที่เป็นที่ครอบคลุมการประเมินผลการทดสอบความพึงพอใจของกลุ่มตัวอย่างทั้งสองยังได้ดำเนินการ. 2.13 การวิเคราะห์ทางสถิติผลการวิจัยแสดงเป็นค่าเฉลี่ย±ค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานและเสื้อทดสอบที่ใช้สำหรับการกำหนดนัยสำคัญทางสถิติ Microsoft Excel ที่ใช้สำหรับการวิเคราะห์นี้. 3 และการอภิปรายผล3.1 การกำหนดจุดเย็นการเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิในสถานที่ A-E ภายในเซลล์ที่มีการแสดงในรูป 2. เวลาเฉลี่ยจะเอาแต่ละห้าตัวอย่างที่จะถึง121 ° C แสดงในรูป 3. เวลาที่จะไปให้ถึง 121 องศาเซลเซียสเป็นระยะเวลาที่สั้นที่A, ศูนย์ของเซลล์; เวลาที่เป็นที่ยาวที่สุดที่ D, ส่วนบนของเซลล์ที่อยู่ใกล้อิเล็กโทรดที่ เหตุผลดังต่อไปนี้ได้รับการแนะนำเพื่อให้ได้ผลลัพธ์เหล่านี้: การเพิ่มขึ้นของอุณหภูมิที่ A เป็นที่เร็วที่สุดเพราะitwas ไกลเซลล์ผิว fromthe andwas รับผลกระทบน้อยจากการถ่ายเทความร้อน ในการเปรียบเทียบ, B, C, D, E และอยู่ใกล้กับเซลล์ผิว D และ E อยู่ใกล้กับฝาสแตนเลสกว่า B และ C, ทำให้ D และ E อ่อนแอมากขึ้นเพื่อผลของการถ่ายเทความร้อน ดังนั้นอุณหภูมิในสถานที่เหล่านี้ลดลง นอกจาก D ถูกตั้งอยู่ที่สูงขึ้นในเซลล์กว่าE จึงปล่อยความร้อนมากขึ้นกว่าอี Thisshown ในรูป 6. ค่า F0 เพื่อให้ความร้อน ohmic และย้อน heatingwere 5.74 และ 10.28 ตามลำดับ (ทั้งเกิน 4) ดังนั้นมันก็ชี้ให้เห็นว่านอกเหนือไปจากความพึงพอใจความต้องการของ 121 ° C และ 4 นาทีจะช่วยลดความร้อน ohmic เสื่อมสภาพคุณภาพของอาหารที่เกิดจากความร้อน. 3.6 ปริมาณน้ำที่เปลี่ยนแปลงในปริมาณน้ำที่มีการแสดงในรูป 7. สำหรับระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูลทั้งหมดตัวอย่างอุ่น ohmically สูงมีปริมาณน้ำกว่าตัวอย่างโต้ร้อน; แต่ความแตกต่างอย่างไม่มีนัยสำคัญทางสถิติ. 3.7 เนื้อหา IMP การเปลี่ยนแปลงในความเข้มข้นของภูตผีปีศาจจะแสดงในรูป 8. เอทีพีที่เกี่ยวข้องกับสารตัวอย่างที่เก็บไว้เป็นเวลา14 วันจะมีการแสดงในรูป 9. ในช่วงระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูลระหว่างสองวันและในปีหนึ่งohmically ตัวอย่างอุ่นมีความเข้มข้นสูง IMP กว่าตัวอย่างโต้ร้อน(Pb 0.01) แกน x แสดงให้เห็นถึงการวัดตัวอย่างและแกนy แสดงให้เห็นเนื้อหาของ ADP ที่แอมป์, เอทีพีและ HXR. การเปลี่ยนแปลงเอทีพีเข้า ADP เปลี่ยนแปลง ADP เข้าแอมป์, แอมป์เปลี่ยนเป็นภูตผีปีศาจ, การเปลี่ยนแปลง IMP เข้า HXR และการเปลี่ยนแปลง HXR เข้า Hx ลดลงในเอทีพี ADP และนำแอมป์ที่จะเพิ่มขึ้นในเนื้อหา IMP ในทางกลับกันการเพิ่มขึ้นของ HXR Hx และนำไปสู่การลดลงในเนื้อหาของภูตผีปีศาจ IMP เข้มข้นเปลี่ยนไป HXR, Hx และอื่น ๆ ความเข้มข้นของภูตผีปีศาจในทั้งสองชนิดตัวอย่างยังคงอยู่อย่างต่อเนื่องเกือบตลอดช่วงเวลาการเก็บรักษา. นี้แสดงให้เห็นว่ามีความเข้มข้นภูตผีปีศาจไม่ได้เปลี่ยนแปลงระหว่างการเก็บรักษา IMP เป็นรสชาติเพิ่ม themain ส่วนประกอบของไก่และเป็นสิ่งสำคัญที่รูป 6. การประเมินอัตราการตายในช่วงร้อน ohmic และโต้ อุณหภูมิถึง121 ° C. รูป 7. การเปลี่ยนอัตราปริมาณน้ำของไก่แปรรูปโดยวิธีการให้ความร้อนต่างๆสำหรับ365 วัน. รูป 8. การเปลี่ยนความเข้มข้นของภูตผีปีศาจของไก่แปรรูปโดยวิธีการให้ความร้อนต่างๆสำหรับ365 วัน. รูป 5. การประเมินผลในช่วงอุณหภูมิความร้อน ohmic และโต้ อุณหภูมิถึง121 องศาเซลเซียสด้วยความร้อนได้เร็วกว่าโดยการ ohmic โต้. ตัวบ่งชี้คุณภาพของผลิตภัณฑ์ไก่ ผลดังกล่าวข้างต้น showthat ตัวอย่างอุ่น ohmically มีภูตผีปีศาจมากกว่าโต้อุ่นตัวอย่างเพื่อให้สามารถเตรียมความพร้อมของกลุ่มตัวอย่างที่มีคุณภาพสูงขึ้น นี้คือกำหนดอัตราการเพิ่มขึ้นของอุณหภูมิที่สูงขึ้นภายใต้ความร้อน ohmic, ที่ จำกัด การลดภูตผีปีศาจที่เกิดจากความร้อน. 3.8 ปริมาณกรดกลูตามิกการเปลี่ยนแปลงในความเข้มข้นของกรดกลูตามิกที่มีการแสดงในรูป 10 สำหรับรอบระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูลทั้งหมดตัวอย่างอุ่นohmically มีกลูตามิกสูงกว่าความเข้มข้นของกรดกว่าตัวอย่างโต้ร้อน แต่ที่สำคัญความแตกต่างที่พบเฉพาะในกลุ่มตัวอย่างที่เก็บไว้เป็นเวลา 14, 84, 168 และ 280 วัน (Pb 0.05) กรดกลูตามิไม่ได้มีความผันผวนอย่างมากทั้งในประเภทตัวอย่าง จากผลการวิจัยเหล่านี้มันก็ชี้ให้เห็นว่าความเข้มข้นของกรดกลูตามิกไม่ได้เปลี่ยนแปลงระหว่างการเก็บรักษา. 3.9 การทดสอบทางประสาทสัมผัสผลการประสาทการทดสอบแสดงให้เห็นในรูป 11. โดยเฉลี่ยระหว่างสองประเภทตัวอย่างตัวอย่างอุ่นohmically ได้รับคะแนนที่สูงขึ้นในแง่ของลักษณะรสนุ่มรสชาติในปากและการประเมินผลที่ครอบคลุม; ตัวอย่างโต้ร้อนที่ได้รับคะแนนสูงในแง่ของรสชาติ แต่ความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญที่ไม่พบในรายการทั้งหมด ดังนั้นมันก็บอกว่ามีไม่แตกต่างกันการทำเครื่องหมายในคุณภาพทางประสาทสัมผัสระหว่างสองตัวอย่างชนิด. 4 สรุปในการศึกษาครั้งนี้เรา ohmically ร้อนไก่ตัวอย่างเต้านมและดำเนินการทดสอบต่างๆในตัวอย่างน้ำอุ่น ผลการวิจัยของเรามีดังนี้1) การเปลี่ยนแปลงอุณหภูมิระหว่างการทำงานในปัจจุบันถูกตรวจสอบในหลายสถานที่ภายในเซลล์ร้อน การเพิ่มขึ้นของอุณหภูมิที่ช้าที่สุดในส่วนบนของเซลล์ที่อยู่ใกล้อิเล็กโทรดที่ ดังนั้นนี้ locationwas เลือกให้เป็นสถานที่ตั้ง temperaturemeasurement. 2) มีความสัมพันธ์สูงระหว่างการนำไฟฟ้าระหว่างการทำงานในปัจจุบันและวัดอุณหภูมิ(y = 4E- 05x2 + 0.0010x + 0.3690 มีอัตราการมีส่วนร่วมของ R2 = 0.98) .w
การแปล กรุณารอสักครู่..