protrusion and opening (Fig. 2c). Some researchers have speculated
that a similar “tail” region observed in some clostridia spores,
although different in morphology, may allow the release of the
newly formed cell (Mackey and Morris, 1972a; Panessa-Warren
et al., 1994). Furthermore, a “bottlecap” at the end of spores of B.
anthracis has been proposed (Steichen et al., 2007). This aperture
and sporiduct were observed in dormant (ungerminated) spores as
well as in germinating spores of C. sporogenes, although previously
Panessa-Warren et al. (1994) observed that the dormant spores
were surrounded by a continuous exosporium with a blunt tail
region, with the exosporial opening only visible once germination
had commenced. The difference between these two studies may
reflect strain variability.
Having ascertained that ungerminated spores of C. sporogenes
possess an aperture or sporiduct at the terminal of the exosporium,
we tested the hypothesis that the newly formed cell would
emerge through this structure. C. sporogenes spores were incubated
in anaerobic TY medium plus L-alanine and L-lactate which
had previously been shown to be effective conditions for germination
and outgrowth of C. sporogenes spores (Brunt et al., 2014).
Samples were taken periodically for scanning electron microscopy.
However, emergence and outgrowth were not synchronous
and samples contained spores and cells at various stages of
morphological development. Emergence of the newly formed cell
occurred through the preformed aperture or sporiduct of the
spore (Fig. 3) forcing the aperture to distend and the sporiduct to
stretch (Fig. 3a and c). As the cell continued to elongate, emerging
cells had remnants of presumably the spore cell wall or cortical
elements attached (Fig. 3b). In general the cells continued to grow
and elongate from within the exosporium case (Fig. 3d and e).
Moreover, a large proportion of these emerging cells were already
showing septum formation (Fig. 3d and e). A comparable study
with B. anthracis had previously shown that the outgrowing
expanding single cell bursts from its coat and exosporium case
protrusion and opening (Fig. 2c). Some researchers have speculatedthat a similar “tail” region observed in some clostridia spores,although different in morphology, may allow the release of thenewly formed cell (Mackey and Morris, 1972a; Panessa-Warrenet al., 1994). Furthermore, a “bottlecap” at the end of spores of B.anthracis has been proposed (Steichen et al., 2007). This apertureand sporiduct were observed in dormant (ungerminated) spores aswell as in germinating spores of C. sporogenes, although previouslyPanessa-Warren et al. (1994) observed that the dormant sporeswere surrounded by a continuous exosporium with a blunt tailregion, with the exosporial opening only visible once germinationhad commenced. The difference between these two studies mayreflect strain variability.Having ascertained that ungerminated spores of C. sporogenespossess an aperture or sporiduct at the terminal of the exosporium,we tested the hypothesis that the newly formed cell wouldemerge through this structure. C. sporogenes spores were incubatedin anaerobic TY medium plus L-alanine and L-lactate whichhad previously been shown to be effective conditions for germinationand outgrowth of C. sporogenes spores (Brunt et al., 2014).Samples were taken periodically for scanning electron microscopy.However, emergence and outgrowth were not synchronousand samples contained spores and cells at various stages ofmorphological development. Emergence of the newly formed celloccurred through the preformed aperture or sporiduct of thespore (Fig. 3) forcing the aperture to distend and the sporiduct tostretch (Fig. 3a and c). As the cell continued to elongate, emergingcells had remnants of presumably the spore cell wall or corticalelements attached (Fig. 3b). In general the cells continued to growand elongate from within the exosporium case (Fig. 3d and e).Moreover, a large proportion of these emerging cells were alreadyshowing septum formation (Fig. 3d and e). A comparable studywith B. anthracis had previously shown that the outgrowingexpanding single cell bursts from its coat and exosporium case
การแปล กรุณารอสักครู่..
ยื่นออกมาและการเปิด (รูป. 2c) นักวิจัยบางคนสันนิษฐานว่าคล้ายกัน "หาง" ภูมิภาคสังเกตในบางปอร์ clostridia, ถึงแม้จะแตกต่างกันในสัณฐานอาจช่วยให้การเปิดตัวของเซลล์ที่จัดตั้งขึ้นใหม่ (แมกกีและมอร์ริส, 1972a; Panessa-วอร์เรน., et al, 1994) นอกจากนี้ "bottlecap" ในตอนท้ายของสปอร์ของบีanthracis ได้รับการเสนอ (Steichen et al., 2007) รูรับแสงนี้และ sporiduct ถูกตั้งข้อสังเกตในการอยู่เฉยๆ (ตัวอย่างควบคุม) สปอร์ในฐานะเดียวกับในการงอกของสปอร์sporogenes ซีแม้ว่าก่อนหน้านี้Panessa-et al, วอร์เรน (1994) พบว่าสปอร์อยู่เฉยๆถูกล้อมรอบด้วยexosporium อย่างต่อเนื่องกับหางทื่อภูมิภาคด้วยการเปิด exosporial มองเห็นเพียงครั้งเดียวงอกได้เริ่ม ความแตกต่างระหว่างทั้งสองการศึกษาอาจจะสะท้อนให้เห็นถึงความแปรปรวนของสายพันธุ์. มีการตรวจสอบว่าสปอร์ของตัวอย่างควบคุม sporogenes ซีมีช่องรับแสงหรือsporiduct ที่สถานีของ exosporium ที่เราทดสอบสมมติฐานที่ว่าเซลล์ที่จัดตั้งขึ้นใหม่จะโผล่ออกมาผ่านโครงสร้างนี้ ซีสปอร์ sporogenes ถูกบ่มในแบบไม่ใช้ออกซิเจนขนาดกลางTY บวก L-อะลานีนและ L-แลคเตทที่ได้รับก่อนหน้านี้แสดงให้เห็นว่าเงื่อนไขที่มีประสิทธิภาพสำหรับการงอกและการเจริญเติบโตของซีสปอร์sporogenes (รุนแรง et al., 2014). ตัวอย่างที่ถูกนำมาเป็นระยะ ๆ สแกนกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน. แต่เกิดและเจริญเติบโตไม่ซิงโครและตัวอย่างที่มีสปอร์และเซลล์ที่ขั้นตอนต่างๆของการพัฒนาทางสัณฐานวิทยา การเกิดขึ้นของเซลล์ที่จัดตั้งขึ้นใหม่ที่เกิดขึ้นผ่านรูรับแสงหรือ preformed sporiduct ของสปอร์(รูปที่. 3) บังคับให้รูรับแสงไปที่พองและ sporiduct ไปยืด(รูป. 3a และค) ในฐานะที่เป็นมือถือยังคงยาวที่เกิดขึ้นใหม่เซลล์มีเศษของเซลล์อย่างน่าสปอร์ผนังหรือเยื่อหุ้มสมององค์ประกอบที่แนบมา(รูป. 3b) โดยทั่วไปเซลล์ยังคงเติบโตและยาวจากภายในกรณี exosporium (รูปที่. 3 มิติและจ). นอกจากนี้ยังเป็นสัดส่วนใหญ่ของเซลล์ที่เกิดขึ้นใหม่เหล่านี้มีอยู่แล้วแสดงให้เห็นการก่อกะบัง (รูปที่. 3 มิติและจ) การศึกษาเทียบเคียงกับ B. anthracis ได้แสดงให้เห็นก่อนหน้านี้ว่า OUTGROWING ขยายระเบิดเซลล์เดียวจากเสื้อและกรณีของ exosporium
การแปล กรุณารอสักครู่..