Diluted samples were filtered throu

Diluted samples were filtered through a 0.45!lm filter. Sucrose, glucose and fructose concentrations were determined by ion chromatography (IC) using a Dionex (Sunnyvale, CA, USA) BioLC instrument. Carbohydrates were separated on Dionex CarboPac PA-1 guard (25 x 4 mm) and analytical (250 x 4 mm) anion exchange columns, at a flow rate of 1.0 mL/min at ambient temperature (~25 DC). Column eluant conditions were: 16 mM NaOH isocratic (inject; 0.0-2.0 min), a gradient of 16-160 mM NaOH (2.0-3 5.0 min), followed by isocratic 200 mM NaOH (35.1-40.0 min), and return to 16 mM NaOH (40.0-49.0 min) to re-equilibriate the column with the initial mobile phase prior to the next sample injection. Carbohydrates (25J..1.1 injections) were detected using integrated pulsed amperometric detection (IP AD). The detector was equipped with Au working and Ag/ AgCI reference electrodes, operating with the following working electrode pulse potentials and durations: E1=+0.05 V (10=0.00 s), E2=0.05 V (tl=0.42 s), E3=+0.75 V (t3=0.43 s), E4=+0.75 V (t4=0.60 s), E5=-0.60 V (t5=0.61 s), E6=-0.60 V (t6=0.96 s). The duration of the IPAD integration interval was set at 0.2-0.4 s. Using a Spectra-Physics SP8880 autoinjector and Dionex Peaknet chromatography software, runs were accumulated of multiple samples and standards. The standards were myo-inisitol, glucosamine-HCI (internal standard), glucose, fructose, sucrose, raffmose and stachyose. Seven different levels of the standards were run first, and standard curves were generated (sucrose ranged from 1 to 25 ppm) to test linearity in mUltiple runs and generate area response factors. Weight diluted samples were run in duplicate. Glucose and fructose, were quantified in different runs than sucrose, due to the very different concentrations of these carbohydrates inthe samples. There was a much larger dilution for sucrose quantification. Response factors were generated for each of the carbohydrates, using internal standard calibrations and check standards.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตัวอย่างเจือจางถูกกรองผ่าน 0.45 ! กรอง lm ความเข้มข้นของน้ำตาลซูโครส กลูโคส และฟรักโทสถูกกำหนด โดย ion chromatography (IC) โดยใช้เครื่องมือ BioLC Dionex (Sunnyvale, CA, USA) คาร์โบไฮเดรตถูกแยกออกจากยาม Dionex CarboPac PA-1 (25 x 4 มม.) และวิเคราะห์ (250 x 4 มม.) ไอออนที่มีประจุแลกเปลี่ยนคอลัมน์ ที่อัตราการไหล 1.0 มิลลิลิตร/นาทีที่อุณหภูมิ (~ 25 DC) คอลัมน์ eluant สภาพ: isocratic NaOH 16 มม. (ฉีด 0.0-2.0 นาที), การไล่ระดับสี 16-160 มม. NaOH (2.0-3 5.0 นาที ตาม ด้วย isocratic 200 มม. NaOH (35.1-40.0 นาที), และกลับไป 16 มม. NaOH (40.0 49.0 นาที) ถึง re equilibriate คอลัมน์ที่ มีระยะเคลื่อนเริ่มต้นก่อนการฉีดตัวอย่างถัดไป คาร์โบไฮเดรต (25J ... 1.1 ฉีด) ถูกตรวจพบโดยใช้การตรวจจับแบบพัลเมตริก (IP โฆษณา) จับได้พร้อมกับทำงาน Au และ Ag / อิเล็กโทรดอ้างอิง AgCI กับอิเล็กโทรดทำงานต่อไปนี้พัลส์ศักยภาพและระยะเวลา: E1 = + 0.05 V (10 = 0.00 s), E2 = 0.05 V (tl = 0.42 s), E3 = + 0.75 V (t3 = 0.43 s), E4 = + 0.75 V (t4 = 0.60 s), E5 V = 0.60 (t5 = 0.61 s), V = 0.60 E6 (t6 = 0.96 s) ตั้งค่าระยะเวลาของช่วงการรวม IPAD ที่ 0.2-0.4 s ได้ใช้ autoinjector เป็นสเปกตรัมฟิสิกส์ SP8880 และซอฟต์แวร์ chromatography Dionex Peaknet วิ่งได้สะสมหลายตัวอย่างและมาตรฐาน มาตรฐานถูก myo inisitol กลูโคซาของ HCI (ภายในมาตรฐาน), กลูโคส ฟรักโทส ซูโครส raffmose และ stachyose เจ็ดระดับมาตรฐานถูกเรียกใช้ครั้งแรก และเส้นโค้งมาตรฐานสร้างขึ้น (ซูโครสอยู่ในช่วงตั้งแต่ 1 ถึง 25 ppm) การทดสอบเชิงเส้นในการทำงานหลาย และสร้างพื้นที่ตอบสนองปัจจัย ตัวอย่างน้ำหนักเจือจางถูกเรียกใช้สำเนา กลูโคสและฟรักโทส ถูกวัดในการทำงานแตกต่างกันมากกว่าน้ำตาลซูโครส เนื่องจากความเข้มข้นแตกต่างกันมากของคาร์โบไฮเดรตเหล่านี้ในตัวอย่าง เจือจางที่มีขนาดใหญ่สำหรับซูโครสนับได้ สร้างการตอบสนองปัจจัยของคาร์โบไฮเดรต โดยใช้มาตรฐานการตรวจสอบและปรับเทียบมาตรฐานภายในแต่ละ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตัวอย่างเจือจางถูกกรองผ่าน 0.45! กรอง LM ซูโครสกลูโคสและฟรุกโตสความเข้มข้นได้รับการพิจารณาโดยโครมาโตไอออน (IC) โดยใช้ Dionex (ซันนีเวล, แคลิฟอร์เนีย, สหรัฐอเมริกา) เครื่องดนตรี BioLC คาร์โบไฮเดรตที่ถูกแยกออกใน Dionex CarboPac PA-1 ยาม (25 x 4 มิลลิเมตร) และการวิเคราะห์คอลัมน์ (250 x 4 มิลลิเมตร) การแลกเปลี่ยนไอออนที่อัตราการไหล 1.0 มิลลิลิตร / นาทีที่อุณหภูมิห้อง (~ 25 DC) คอลัมน์เงื่อนไข eluant อยู่: 16 มิลลิ NaOH isocratic (ฉีด; 0.0-2.0 นาที), การไล่ระดับสีของ 16-160 มิลลิ NaOH (2.0-3 5.0 นาที) ตามด้วย isocratic 200 มิลลิ NaOH (35.1-40.0 นาที) และกลับไป 16 มิลลิ NaOH (40.0-49.0 นาที) อีกครั้ง equilibriate คอลัมน์ที่มีเฟสเคลื่อนที่เริ่มต้นก่อนที่จะฉีดตัวอย่างต่อไป คาร์โบไฮเดรต (25J..1.1 ฉีด) ได้รับการตรวจพบการใช้แบบบูรณาการการตรวจสอบ amperometric ชีพจร (IP AD) เครื่องตรวจจับที่ติดตั้งด้วย Au ทำงานและ AG / AGCI ขั้วไฟฟ้าอ้างอิงในการดำเนินงานมีดังต่อไปขั้วไฟฟ้าทำงานศักยภาพการเต้นของชีพจรและระยะเวลา: E1 + = 0.05 V (10 = 0.00 s), E2 = 0.05 V (TL = 0.42 s), E3 = 0.75 V (T3 = 0.43 s), E4 + = 0.75 V (T4 = 0.60 s), E5 = -0.60 V (T5 = 0.61 s), E6 = -0.60 V (T6 = 0.96 s) ระยะเวลาของช่วงการรวม IPAD ถูกกำหนดไว้ที่ 0.2-0.4 s ใช้ autoinjector Spectra-SP8880 ฟิสิกส์และซอฟแวร์โค Dionex Peaknet วิ่งสะสมของกลุ่มตัวอย่างและมาตรฐานหลาย มาตรฐานเป็น Myo-inisitol, กลูโคซา-HCI (มาตรฐานภายใน) กลูโคสฟรุกโตสซูโครสและ raffmose stachyose เจ็ดระดับที่แตกต่างกันของมาตรฐานที่ถูกเรียกใช้ครั้งแรกและเส้นโค้งมาตรฐานถูกสร้างขึ้น (ซูโครสตั้งแต่ 1-25 ppm) เพื่อทดสอบเส้นตรงในการทำงานและสร้างการตอบสนองต่อปัจจัยพื้นที่ น้ำหนักตัวอย่างเจือจางวิ่งในที่ซ้ำกัน กลูโคสและฟรุกโตสถูกวัดในการทำงานที่แตกต่างกันกว่าน้ำตาลซูโครสเนื่องจากความเข้มข้นแตกต่างกันมากของคาร์โบไฮเดรตเหล่านี้ inthe ตัวอย่าง มีการลดสัดส่วนขนาดใหญ่มากสำหรับปริมาณน้ำตาลซูโครสเป็น ปัจจัยการตอบสนองที่ถูกสร้างขึ้นสำหรับแต่ละของคาร์โบไฮเดรตที่ใช้การสอบเทียบมาตรฐานภายในและการตรวจสอบมาตรฐาน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เจือจางตัวอย่างถูกกรองผ่าน 0.45 ! กรองอิม ซูโครสกลูโคสและฟรักโทส ) ถูกกำหนดโดยเทคนิคไอออนโครมาโตกราฟี ( IC ) ที่ใช้ DIONEX ( Sunnyvale , CA , USA ) biolc เครื่องดนตรี คาร์โบไฮเดรต เป็นแยกที่ DIONEX carbopac pa-1 ยาม ( 25 x 4 มม. ) และวิเคราะห์ ( 250 x 4 มม. ) คอลัมน์แลกเปลี่ยนประจุลบ ที่อัตราการไหล 1.0 มล. / นาทีที่อุณหภูมิปกติ ( ~ 25 DC ) คอลัมน์ : 16 มม. สภาพ eluant NaOH Isocratic ( ฉีด ; 0.0-2.0 มิน ) , ความลาดชันของ 16-160 มม. NaOH ( 2.0-3 5.0 นาที ) ตามด้วย NaOH ( 35.1-40.0 Isocratic 200 มิลลิเมตรต่อนาที ) และกลับไป 16 มม. NaOH ( 40.0-49.0 มิน ) Re equilibriate คอลัมน์ที่มีเริ่มต้นเฟสเคลื่อนที่ก่อนการฉีดตัวอย่าง ต่อไป คาร์โบไฮเดรต ( 25j . . 1.1 การฉีด ) ถูกตรวจพบโดยใช้การตรวจสอบแบบบูรณาการสำคัญ IP ( โฆษณา ) เครื่องตรวจจับอุปกรณ์หรือการทำงานและ Ag / agci ขั้วไฟฟ้าอ้างอิงปฏิบัติการต่อไปนี้ด้วยการทำงานขั้วชีพจรศักยภาพและระยะเวลา : E1 = + 0.05 V ( 10 = 0.00 ) E2 = 0.05 V ( TL = 0.42 ) E3 = + 0.75 V ( T3 = 0.43 ) e4 = + 0.75 V ( T4 = 0.60 ) E5 V = -0.60 ( T5 = 0.61 ) E6 = -0.60 v ( T6 = 0.96 วินาที ) ระยะเวลาของ iPad รวมช่วงเวลาไว้ที่เอสใช้ spectra , ฟิสิกส์และ sp8880 autoinjector DIONEX ซอฟต์แวร์โครมาโทกราฟี peaknet วิ่งสะสมของหลายตัวอย่างและมาตรฐาน มาตรฐานเป็นเมียว inisitol กลูยามาตรฐาน ( ภายใน ) , กลูโคส , ฟรุกโตส ซูโครส และ raffmose stachyose . เจ็ดระดับของมาตรฐานถูกเรียกครั้งแรก และเส้นโค้งมาตรฐานถูกสร้างขึ้น ( โดยมีค่าตั้งแต่ 1 ถึง 25 ppm ) เพื่อทดสอบถึงวิ่งและสร้างปัจจัยการตอบสนองในหลายพื้นที่ น้ำหนักลดจำนวนวิ่งในที่ซ้ำกัน กลูโคสและฟรักโทสมี quantified ในวิ่งที่แตกต่างกว่าน้ำตาลซูโครส เนื่องจากความเข้มข้นที่แตกต่างกันมากของคาร์โบไฮเดรตเหล่านี้ ในตัวอย่าง มีขนาดใหญ่มากสำหรับการใช้ปริมาณ . ปัจจัยการตอบสนองถูกสร้างขึ้นสำหรับแต่ละของคาร์โบไฮเดรต การสอบเทียบมาตรฐานภายในและตรวจสอบมาตรฐาน