Extraction of PPOEnzyme extraction

Extraction of PPO
Enzyme extraction was carried out according to the
method of Yemenicioglu et al. (1997). Fresh turmeric
pieces (100 g) were cut into small pieces and homogenised
with cold acetone ()20 C). The homogenate was
filtered through a Buchner funnel using Whatman No.1
filter paper. The residue was washed again with acetone
and the colourless solid residue was dried overnight at
room temperature and then stored at )60 C until use.
For polyphenol oxidase (PPO) extraction, 1 g of
acetone powder was suspended in 0.05 m sodium
phosphate buffer (pH 6.8). The suspension was mixed
well for 20 min at 4 C. Then it was centrifuged at
9000 • g for 15 min and the supernatant (crude enzyme
extract) was separated. All the procedures were carried
out in triplicate and at 4 C.

Enzyme thermal stability and enzyme assay
Samples of 1 mL of total enzymatic extracts were
incubated for 30, 40, 50, 60, 70 and 80 C for 30 min.
The residual enzymatic activity was then evaluated as
described below.
The following reaction mixture was employed: 0.02 m
sodium phosphate buffer, 20 mm catechol, 400 lL of
enzyme extract (pH 6.8); total volume 3.0 mL. The
mixture was incubated at 30 C and the enzymatic
activity evaluated by measuring the increase in optical
density (OD) at 410 nm (Serradell et al., 2000). The
enzymatic activity was calculated from the initial slope
of the absorbance vs. time plot activity graph. In all
experiments, control reactions without enzyme wereincluded and no significant oxidation of catechol was
observed during the measurement of PPO activity. The
enzymatic activity unit (U) was defined as the amount of
enzyme required for an increase of 0.01 OD unit min)1
under test conditions.

Heat treatment of fresh turmeric rhizome
Fresh turmeric rhizomes were selected based on their
organoleptic properties and were cleaned before being
used for the heat treatment. The rhizome samples
(250 g • 3) were kept immersed in water in a plastic net
and maintained at 50, 60, 70, 80, 90 and 100 C for
30 min. After heat treatment, samples were cut into small
pieces and ground using a domestic mixer. From this, 5 g
extract was taken in a conical flask and 50 mL of
methanol was added followed by sonication. The remaining
sample was kept open for 1 h at ambient temperature
(25–27 C). After 1 h, 5 g was again extracted with
methanol as described before. The remaining sample was
dried in a hot air oven at 50 C for 4–5 h. After drying it
was powdered in a domestic mixer and 5 g was extracted
with methanol as described before.
In another set of experiments the fresh turmeric
rhizome samples (250 g • 3) were subjected to heat
treatment at 60, 70, 80, 90 and 100 C for 10, 20, 30, 40,
50 and 60 min at each temperature. After heat treatment,
the rhizome samples were ground in a domestic
mixer and kept for 1 h at ambient temperature (25–
27 C). After 1 h, 5 g of sample was taken for methanol
extraction as mentioned before. The remaining sample
was dried in a hot air oven at 50 C for 4–5 h. The dried
sample was powdered in a domestic mixer and 5 g was
extracted using methanol as described before. All the
above experiments were carried out in triplicate.
For control, the fresh rhizome samples (250 g • 3)
were ground, and 5 g sample was taken immediately for
extraction. Samples, after exposure for 1 h and after
drying in the oven, were also extracted using methanol.


Conventional drying (sun-drying) of fresh turmeric rhizome
Fresh turmeric samples (1000 g • 3) were cleaned and
boiled at 100 C for 1 h. The samples were drained off
water and dried in sunlight for 15 days. The conventional
primary processing used by the farmers in the
region was simulated here. After drying, the samples
were ground in a domestic mixer and 5 g was extracted
with methanol as described earlier.
Estimation of moisture
The moisture content in the ground turmeric sample was
determined by co-distilling 10 g of the sample with
toluene in a Dean stark apparatus (Louli et al., 2004).
The sample was transferred quantitatively to the distillation
flask with toluene. The flask, along with the
contents, was heated under reflux for 2–3 h. At the end
of cooling, the distillate was collected in a graduated
tube in the Dean stark apparatus.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สกัด PPOเอนไซม์สกัดถูกดำเนินการตามวิธีของ Yemenicioglu et al. (1997) ขมิ้นสดตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ และ homogenised ชิ้น (100 กรัม)ด้วยอะซิโตนเย็น() 20 C) Homogenate ถูกกรองผ่านปล่อง Buchner ใช้ Whatman No.1กระดาษกรอง สารตกค้างถูกล้างอีกครั้ง ด้วยอะซิโตนและสารตกค้างที่เป็นของแข็งสีใสไม่แห้งค้างคืนที่อุณหภูมิห้อง และเก็บบันทึกไว้ใน) C 60 จนถึงใช้สำหรับสกัด polyphenol oxidase (PPO) g 1 ของผงอะซีโตนถูกระงับใน 0.05 m โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.8) ระบบกันสะเทือนถูกผสมสำหรับ 20 นาทีที่ 4 ซีดี แล้ว มันถูก centrifuged ที่g • 9000 supernatant (เอนไซม์ดิบและ 15 นาทีมีแยกสกัด) ได้ดำเนินการขั้นตอนทั้งหมดออก ใน triplicate และค. 4ความมั่นคงความร้อนเอ็นไซม์และทดสอบเอนไซม์ตัวอย่าง 1 mL สารสกัดจากเอนไซม์ในระบบทั้งหมดได้incubated สำหรับ 30, 40, 50, 60, 70 และ 80 C สำหรับ 30 นาทีกิจกรรมเอนไซม์ในระบบที่เหลือที่ประเมินแล้วว่าอธิบายได้ดังนี้ส่วนผสมของปฏิกิริยาต่อไปนี้ถูกว่าจ้าง: 0.02 mโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ catechol 20 มม. 400 จะของสารสกัดจากเอนไซม์ (pH 6.8); รวมปริมาณ 3.0 mL ที่ส่วนผสมคือ incubated 30 C และที่เอนไซม์ในระบบกิจกรรมที่ประเมิน โดยวัดแสงเพิ่มความหนาแน่น (OD) ที่ 410 nm (Serradell et al., 2000) ที่กิจกรรมของเอนไซม์ในระบบคำนวณความชันเริ่มต้นของ absorbance เทียบกับกราฟเวลาแผนกิจกรรม ในทั้งหมดถูกควบคุมปฏิกิริยา โดยเอนไซม์ wereincluded และออกซิเดชันไม่สำคัญของ catechol ทดลองสังเกตในระหว่างการวัดกิจกรรม PPO ที่หน่วยกิจกรรมที่เอนไซม์ในระบบ (U) ถูกกำหนดเป็นจำนวนเอนไซม์ที่จำเป็นสำหรับการเพิ่มขึ้นของ 0.01 OD หน่วยนาที) 1ภายใต้เงื่อนไขการทดสอบรักษาความร้อนของเหง้าขมิ้นสดเหง้าขมิ้นสดได้เลือกตามความคุณสมบัติ organoleptic และได้ทำความสะอาดก่อนการใช้สำหรับการรักษาความร้อน ตัวอย่างของเหง้า(250 g • 3) พระราชวงศ์ immersed น้ำสุทธิพลาสติกและยังคงอยู่ที่ 50, 60, 70, 80, 90 และ 100 C สำหรับ30 นาที หลังจากที่รักษาความร้อน ตัวอย่างถูกตัดเป็นขนาดเล็กชิ้นส่วนและพื้นดินที่ใช้ผสมในประเทศ จากนี้ 5 กรัมสารสกัดจากกระทรงกรวยหนาวและ 50 mL ของเมทานอลถูกเพิ่มเข้าไปมาแล้ว โดย sonication เหลือตัวอย่างถูกเก็บเปิดสำหรับ 1 h ที่อุณหภูมิ(25-27 C) หลังจาก 1 h, 5 กรัมมีอีกสกัดด้วยเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อน ตัวอย่างที่เหลือถูกอบแห้งในเตาอบอากาศร้อนที่ 50 C สำหรับ 4 – 5 h หลังจากอบได้มีผงในเครื่องผสมภายในประเทศ และถูกสกัด 5 กรัมด้วยเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อนอีกชุดทดลองขมิ้นสดตัวอย่างเหง้า (250 g • 3) ถูกต้องความร้อนรักษาที่ 60, 70, 80, 90 และ 100 C 10, 20, 30, 4050 และ 60 นาทีที่อุณหภูมิแต่ละ หลังจากชุบแข็งตัวอย่างเหง้ามีพื้นในการภายในประเทศผสม และเก็บไว้ที่อุณหภูมิ (25-1 h27 C) หลังจาก 1 h, 5 กรัมของตัวอย่างถูกถ่ายในเมทานอลแยกดังกล่าวก่อน ตัวอย่างที่เหลือถูกอบแห้งในเตาอบอากาศร้อนที่ 50 C สำหรับ 4 – 5 h ที่แห้งตัวอย่างคือผงในเครื่องผสมภายในประเทศ และ 5 กรัมได้สกัดโดยใช้เมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อน ทั้งหมดนี้ข้างต้นทดลองได้ดำเนินการใน triplicateควบคุม ตัวอย่างเหง้าสด (250 g • 3)ได้พื้นดิน และตัวอย่าง 5 กรัมได้ทันทีสำหรับสกัด ตัวอย่าง หลังสัมผัส สำหรับ 1 h และหลังจากแห้งในเตาอบ ยังดึงข้อมูลโดยใช้เมทานอลแบบแห้ง (แดดแห้ง) ของเหง้าขมิ้นสดมีการทำความสะอาดขมิ้นสดตัวอย่าง (1000 กรัม• 3) และต้มที่ 100 C สำหรับ 1 h ตัวอย่างระบายออกจากน้ำและแสงแดดแห้งใน 15 วัน การทั่วไปประมวลผลหลักที่ใช้ โดยเกษตรกรในการภูมิภาคที่จำลองที่นี่ หลังจากแห้ง ตัวอย่างมีพื้นดินในเครื่องผสมภายในประเทศ และถูกสกัด 5 กรัมด้วยเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้การประเมินความชื้นเนื้อหาความชื้นในตัวอย่างดินขมิ้นกำหนด โดยร่วม distilling 10 กรัมของตัวอย่างด้วยโทลูอีนในคณบดีอุปกรณ์สิ้นเชิง (Louli et al., 2004)ตัวอย่างถูกถ่ายโอน quantitatively ไปกลั่นที่หนาวกับโทลูอีน หนาว มีการเนื้อหา มีความร้อนภายใต้ป้องกันกรดไหลย้อนใน h 2 – 3 ในตอนท้ายทำความเย็น การกลั่นรวบรวมในการจบการศึกษาหลอดในเครื่องสิ้นเชิงคณบดี

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การสกัด PPO
สกัดเอนไซม์ได้ดำเนินการตามวิธีการของ Yemenicioglu et al,
(1997) ขมิ้นสดชิ้น (100 กรัม) ถูกตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ และ homogenised ด้วยอะซิโตนเย็น () 20 C) homogenate ถูกกรองผ่านช่องทางที่1 Buchner ใช้เบอร์กระดาษกรอง ที่เหลือถูกล้างอีกครั้งด้วยอะซิโตนและสารตกค้างที่เป็นของแข็งไม่มีสีแห้งค้างคืนที่อุณหภูมิห้องและเก็บไว้แล้ว) 60 C จนถึงการใช้งาน. สำหรับเอนไซม์โพลีฟีน (PPO) สกัด 1 กรัมผงอะซีโตนถูกระงับใน 0.05 เมตรโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์( ค่า pH 6.8) ระงับผสมกันเป็นเวลา 20 นาทีที่ 4 องศาเซลเซียสจากนั้นก็จะถูกหมุนเหวี่ยงที่ 9000 •กรัมเป็นเวลา 15 นาทีและใส (เอนไซม์สารสกัด) ถูกแยกออก ขั้นตอนทั้งหมดได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่าและใน 4 ซีเสถียรภาพความร้อนและเอนไซม์เอนไซม์ทดสอบตัวอย่าง1 มิลลิลิตรของสารสกัดเอนไซม์รวมถูกบ่มเป็นเวลา30, 40, 50, 60, 70 และ 80 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที. กิจกรรมของเอนไซม์ที่เหลือ ถูกประเมินแล้วเป็นอธิบายไว้ด้านล่าง. ผสมปฏิกิริยาต่อไปนี้ถูกจ้าง: 0.02 เมตรโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์20 มม catechol 400 LL ของสารสกัดจากเอนไซม์(pH 6.8); ปริมาณรวม 3.0 มิลลิลิตร ส่วนผสมที่ถูกบ่มที่ 30 องศาเซลเซียสและเอนไซม์กิจกรรมการประเมินโดยการวัดการเพิ่มขึ้นของแสงความหนาแน่น(OD) ที่ 410 นาโนเมตร (Serradell et al., 2000) เอนไซม์ที่คำนวณได้จากลาดชันเริ่มต้นของการดูดกลืนแสงเทียบกับเวลาที่พล็อตกราฟกิจกรรม ในทุกการทดลองปฏิกิริยาการควบคุมโดยไม่ต้องเอนไซม์ wereincluded และไม่มีการเกิดออกซิเดชันที่สำคัญของ catechol ถูกตั้งข้อสังเกตในระหว่างการวัดของกิจกรรมPPO หน่วยเอนไซม์ (U) ถูกกำหนดเป็นปริมาณของเอนไซม์ที่จำเป็นสำหรับการเพิ่มขึ้น0.01 OD นาทีหน่วย) 1 ภายใต้เงื่อนไขการทดสอบ. รักษาความร้อนของเหง้าขมิ้นสดเหง้าขมิ้นสดที่ถูกเลือกขึ้นอยู่กับพวกเขาคุณสมบัติทางประสาทสัมผัสและได้รับการทำความสะอาดก่อนที่จะถูกใช้สำหรับการรักษาความร้อน กลุ่มตัวอย่างที่ใช้เหง้า(250 กรัม• 3) ถูกเก็บแช่อยู่ในน้ำในสุทธิพลาสติกและการบำรุงรักษาที่50, 60, 70, 80, 90 และ 100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา30 นาที หลังจากการรักษาความร้อนตัวอย่างที่ถูกตัดเป็นขนาดเล็กชิ้นและพื้นดินที่ใช้ผสมในประเทศ จากนี้ 5 กรัมสารสกัดถูกนำมาในขวดรูปกรวยและ50 มลของเมทานอลได้รับการเพิ่มตามด้วยsonication ส่วนที่เหลืออีกตัวอย่างก็ยังคงเปิดให้บริการเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง (25-27 C) หลังจาก 1 ชั่วโมง, 5 กรัมถูกสกัดอีกครั้งกับเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อน กลุ่มตัวอย่างที่เหลือได้รับการอบแห้งในเตาอบลมร้อนที่อุณหภูมิ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 4-5 ชั่วโมง หลังจากการอบแห้งมันถูกผงในเครื่องผสมในประเทศและ 5 กรัมถูกสกัดด้วยเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อน. ในชุดของการทดลองขมิ้นสดอีกตัวอย่างเหง้า (250 กรัม• 3) ถูกยัดเยียดให้ความร้อนรักษาที่60, 70, 80, 90 และ 100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10, 20, 30, 40, 50 และ 60 นาทีที่อุณหภูมิแต่ละ หลังจากการรักษาความร้อนตัวอย่างเหง้ามาบดในประเทศผสมและเก็บไว้เป็นเวลา1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง (25 27 C) หลังจาก 1 ชั่วโมง, 5 กรัมของกลุ่มตัวอย่างถูกนำเมทานอลสำหรับการสกัดดังกล่าวก่อน กลุ่มตัวอย่างที่เหลือแห้งในเตาอบลมร้อนที่อุณหภูมิ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 4-5 ชั่วโมง แห้งตัวอย่างผงผสมในประเทศและ 5 กรัมถูกสกัดโดยใช้เมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อน ทุกการทดลองดังกล่าวข้างต้นได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า. สำหรับการควบคุมตัวอย่างเหง้าสด (250 กรัม• 3) เป็นพื้นดินและ 5 กรัมตัวอย่างถูกนำทันทีสำหรับการสกัด ตัวอย่างหลังจากการสัมผัสเป็นเวลา 1 ชั่วโมงและหลังการอบแห้งในเตาอบถูกสกัดยังมีการใช้เมทานอล. อบแห้งธรรมดา (อาทิตย์แห้ง) ของเหง้าขมิ้นสดตัวอย่างขมิ้นสด(1000 กรัม• 3) ได้รับการทำความสะอาดและต้มที่100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 ชั่วโมง . กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการระบายน้ำออกจากน้ำและแห้งในแสงแดดเป็นเวลา 15 วัน ธรรมดาการประมวลผลหลักที่ใช้โดยเกษตรกรในภูมิภาคจำลองที่นี่ หลังจากการอบแห้งตัวอย่างเป็นพื้นดินในเครื่องผสมในประเทศและ 5 กรัมถูกสกัดด้วยเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้. ประมาณความชื้นความชื้นในตัวอย่างขมิ้นพื้นดินที่ถูกกำหนดโดยผู้ร่วมกลั่น10 กรัมของกลุ่มตัวอย่างที่มีโทลูอีนในคณบดีสิ้นเชิงเครื่องมือ (Louli et al., 2004). ตัวอย่างที่ได้รับการโอนปริมาณการกลั่นขวดกับโทลูอีน ขวดพร้อมกับเนื้อหาถูกความร้อนภายใต้การไหลย้อน 2-3 ชั่วโมง ในตอนท้ายของการทำความเย็น, กลั่นที่ถูกรวบรวมไว้ในที่จบการศึกษาในหลอดในเครื่องสิ้นเชิงคณบดี

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การสกัดเอนไซม์ PPO
สกัดออกมาตาม
วิธี yemenicioglu et al . ( 1997 ) ขมิ้นสดชิ้น
( 100 กรัม ) หั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆ homogenised
เย็นอะซิโตน ( 20 C ) การแยกกรองผ่านกรวยบุคเนอร์ถูก

whatman 1 ใช้กรองกระดาษ ตกค้างล้างอีกทีด้วยอะซิโตน
และกากของแข็งสีก็ค้างคืนที่
แห้งแล้วเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 60 องศาเซลเซียส ) จนใช้ .
สำหรับ polyphenol oxidase ( PPO ) สกัด 1 กรัม
) ผงแขวนลอยใน 0.05 M
โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 6.8 ) การผสม
อืม 20 นาทีที่ 4 องศาเซลเซียส แล้วมันเป็นระดับที่
9 G - 15 นาทีและนำ ( crude enzyme
Extract ) ถูกแยกจากกัน ขั้นตอนทั้งหมดถูกกวาดหมดทั้งสามใบและ

4 Cเสถียรภาพต่อความร้อนและเอนไซม์เอนไซม์ (
1 มิลลิลิตร จำนวนรวมสารสกัดเอนไซม์ได้
บ่ม 30 , 40 , 50 , 60 , 70 และ 80 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที ปริมาณเอนไซม์

แล้วประเมินตามที่อธิบายไว้ด้านล่าง .
ต่อไปนี้ปฏิกิริยาผสมที่ใช้ : 0.02 M
โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ แคติคอล 20 อืม , 400 จะ
เอนไซม์สกัด ( พีเอช 6.8 ) ; ปริมาณรวม 3.0 มล.
ส่วนผสมจะถูกบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส และ เอนไซม์
ประเมินโดยการวัดการเพิ่มความหนาแน่นของแสง
( OD ) ที่ 410 nm ( serradell et al . , 2000 )
เอนไซม์คำนวณได้จากความชันเริ่มต้นของการดูดกลืนแสงและเวลา
กิจกรรมพล็อตกราฟ ในการทดลองปฏิกิริยาโดยเอนไซม์
, การควบคุมโดยไม่สําคัญของแคติคอลคือ
ออกซิเดชันพบว่าในการวัดกิจกรรมของเอนไซม์ PPO .
หน่วยเอนไซม์ ( U ) หมายถึงปริมาณของเอนไซม์ที่จำเป็นสำหรับ
เพิ่มขึ้น 0.01 ( หน่วยนาที ) 1
ภายใต้เงื่อนไขการทดสอบ

การรักษาความร้อนของเหง้าขมิ้นชัน เหง้าขมิ้นสด
สดถูกเลือกตามคุณสมบัติทางประสาทสัมผัสและทำความสะอาด

ก่อนจะถูกใช้เพื่อรักษาความร้อน เหง้าตัวอย่าง
( 250 กรัม - 3 ) ถูกแช่อยู่ในน้ำด้วยตาข่ายพลาสติก
และรักษาอุณหภูมิ 50 , 60 , 70 , 80 , 90 และ 100 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 30 นาที หลังจากการรักษาความร้อน
ตัวอย่าง หั่นเป็นชิ้นเล็กๆ
และพื้นดินที่ใช้ผสมในประเทศ จาก 5 g
แยกถ่ายในขวดรูปกรวยและ 50 มล.
เมทานอลเพิ่มตามด้วย sonication . ตัวอย่างที่เหลือ
ถูกเปิดเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิห้อง ( 25 – 27
c )หลังจาก 1 ชั่วโมง 5 กรัมสกัดด้วยเมทานอลอีกครั้ง
ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ตัวอย่างที่เหลือคือ
แห้งในตู้อบลมร้อนที่ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 4 - 5 ชั่วโมง หลังจากการอบแห้งมัน
คือผงในเครื่องผสมภายในประเทศและ 5 กรัมสกัดด้วยเมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อน
.
ในอีกชุดของการทดลองสดเหง้าขมิ้นชัน
ตัวอย่าง ( 250 g -
3 ) ถูกความร้อน การรักษาที่ 60 , 70 , 80 , 90 และ 100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 , 20 ,30 , 40 , 50 และ 60 นาที
ในแต่ละอุณหภูมิ หลังจากการรักษาความร้อน ,
เหง้าจำนวนพื้นดินผสมภายในประเทศ
และเก็บไว้เป็นเวลา 1 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิห้อง ( 25 )
27 C ) หลังจาก 1 ชั่วโมง , 5 กรัมตัวอย่างถ่ายเมทานอล
การสกัดดังกล่าวมาก่อน อีกตัวอย่าง
อบแห้งในตู้อบลมร้อนที่ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 4 - 5 ชั่วโมง แห้งใช้ในเครื่องผสมผง
5 g
ภายในประเทศและสกัดโดยใช้เมทานอลตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้
ข้างบนทั้งหมด นำมาวิเคราะห์หาปริมาณแคดเมียม
ควบคุม ตัวอย่างเหง้าสด ( 250 g -
( 3 ) พื้นและ 5 กรัมตัวอย่างถ่ายทันที
การสกัด ตัวอย่าง หลังจากเปิดรับแสงเป็นเวลา 1 ชั่วโมง และหลังจาก
การอบแห้งในเตา ยังสกัดโดยใช้เมทานอล


แบบแห้ง ( ตากแดด )
เหง้าขมิ้นสดตัวอย่าง ขมิ้นสด ( 1000 กรัม - 3 ) สะอาด
ต้มที่ 100 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 1 ชั่วโมง จำนวนเนื้อออกจากน้ำและแห้งในแสงแดด
เป็นเวลา 15 วัน ปกติใช้
การประมวลผลหลักของเกษตรกรในเขต
) ที่นี่ หลังจากการอบแห้ง , ตัวอย่าง
ถูกพื้นดินในประเทศและ 5 กรัม ผสมกับเมทานอลสกัด
ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้

ค่าความชื้นความชื้นในดินตัวอย่างขมิ้น
กำหนดโดย Co กลั่น 10 กรัมของตัวอย่าง
โทลูอีนในดีน สตาร์ค อุปกรณ์ ( louli et al . , 2004 ) .
จำนวนโอนในเชิงปริมาณเพื่อการกลั่น
ขวดด้วยอะ . ขวด พร้อมกับ
เนื้อหา ให้ความร้อนภายใต้ย้อน 2 – 3 ชั่วโมง ในที่สุด
ความเย็น กลั่นในจบ
รวบรวมหลอดในดีน สตาร์ค

อุปกรณ์