2.3. Chemical eficacy testsTbe chem

2.3. Chemical eficacy tests
Tbe chemical efficacy study included three treatment regimes. In the first, the
effectiveness of formalin was evaluated at treatment concentrations of 500, 1000, and
1500 I.Ll 1-l. In the second, the efficacy of hydrogen peroxide was evaluated at
treatment concentrations of 100, 250, and 500 ~1 1-l. The third trial compared the
effectiveness of formalin at 1500 ~1 l- ‘, hydrogen peroxide at 1000 ~1 l- ‘, and salt at
3OOOtJ mg 1-l.
Green fertilized rainbow trout eggs of the same lot were obtained within 36 h after
spawning from Trout Lodge, Sumner, WA. Aliquots of 500 eggs were randomly placed
in Heath incubator trays using a modified egg-counting board (Bailey and Jeffrey,
1989). The eggs were confined within a 195 mm diameter acrylic ring 25 mm in height
that was secured to the screen of each incubator tray with silicone. Each treatment
consisted of three replicates of 500 eggs each placed in separate incubator trays. Well
water used for egg incubation had a pH of 8.0, hardness of 138 ppm as CaCO,,
326 TM. Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 323-331
alkalinity of 105 ppm as CaCO,, dissolved oxygen content of 9.0 ppm or greater, and a
temperature of 12 f 2°C. Water flow was approximately 3.8 1 min-’ during incubation
and was increased to 7.6 1 min-’ during treatments and hatch.
To produce infections, egg groups were inoculated with Saprolegnia parasitica by
suspending a teaball containing 12 infected hempseeds in each treatment tray for about 7
d or until the infection rate was 10%. The teaball is a small spherical (diameter of 4 cm)
stainless steel container perforated with holes (1 mm diameter) to allow the movement
of water in and out. The infection rates were determined by counting the number of eggs
with visible fungal growth. During this infection period, water flow was discontinued for
2 h periods twice a day to promote infection of eggs. The uninfected egg groups (0%
infection) were not inoculated with fungus and were allowed to incubate until the
infected egg groups reached a 10% infection level. Prior to chemical treatments,
infection rates per tray were equalized by exchanging eggs among trays with high and
low percent infection to achieve a uniform 10% infection rate. A positive control group
was inoculated with fungus, but not treated with fungicides; a negative control group
was neither inoculated nor treated with fungicide.
Treatment chemicals were delivered with a peristaltic pump (100 ml min-‘) to the
incoming water of a mixing tray positioned directly above a treatment tray. Treatment
concentrations were achieved by delivering calculated amounts of test chemical solutions
to a specific incoming water flow. Treatments were administered for a duration of
15 min every other day until eggs began to hatch (approximately 2 weeks). Mortality
and fungal infection rates were assessed before the first treatment (initial) and after the
last treatment (final>. Percent mortality was determined by counting the number of dead
eggs; those that appear white. Fry hatch was assessed after all viable eggs had hatched.
The percent hatch was corrected by subtracting the initial mortality from 500 eggs
according to the following formula.
number hatched
Percent hatch =
500 eggs - initial morts
x 100
Samples of treatment water were taken to determine concentrations for each test
chemical. Samples were removed from the effluent of each tray 10 min after the
treatment began. Aliquots were collected from one of the replicates for each treatment
group. Concentrations of formalin were determined using the spectrophometric method
mentioned earlier. Concentrations of hydrogen peroxide were determined by a permanganate
titrimetric procedure (Jeffery et al., 1989). Concentrations of sodium chloride
were determined with a Hanna portable conductivity meter.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. เคมี eficacy ทดสอบศึกษาเคมีประสิทธิภาพ Tbe รวมสามรักษาระบอบ ในครั้งแรก การเป็นประเมินประสิทธิผลของ formalin ที่รักษาความเข้มข้น 500, 1000 และI.Ll 1500 1 l ในครั้งที่สอง มีประเมินประสิทธิภาพของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่รักษาความเข้มข้น 100, 250 และ 500 1 1 l การทดลองที่สามเมื่อเทียบกับประสิทธิภาพของ formalin 1500 ~ 1 l - ', ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่ 1000 ~ 1 l - ', และเกลือที่3OOOtJ mg 1 lสีเขียวปฏิสนธิไข่ของล็อตเดียวกันได้รับมาภายใน 36 ชม.หลังจากปลาเทราท์สายรุ้งวางไข่จากปลาเทราท์ ซัมเนอร์ WA Aliquots ไข่ 500 ถูกวางแบบสุ่มในถาดตู้ฮีธใช้แก้ไขนับไข่กระดาน (เบลีย์และเจฟฟรีย์1989) . ไข่ถูกจำกัดภายในเส้นผ่าศูนย์กลางแหวนอะคริลิค 195 มม.สูง 25 มม.ที่ที่ปลอดภัยไปยังหน้าจอของแต่ละถาดตู้อบซิลิโคน การรักษาแต่ละประกอบด้วยสามเหมือนกับ 500 ไข่วางไว้ในถาดตู้แยกต่างหาก ดีใช้สำหรับบ่มไข่น้ำมีค่า pH 8.0 ความแข็งของ 138 ppm เป็น CaCO,,326 TM Schreier ร้อยเอ็ด/สัตว์น้ำ 140 (1996) 323-331สภาพด่างของ CaCO ออกซิเจนละลายน้ำเนื้อหาของ 9.0 ppm หรือ มากกว่า 105 ppm และ12 f อุณหภูมิ 2 องศาเซลเซียส การไหลของน้ำได้ประมาณ 3.8 1 นาที-' ในระหว่างการบ่มและขึ้นไป 7.6 1 นาที-' ในระหว่างการรักษาและฟักการติดเชื้อ กลุ่มไข่มี inoculated กับ Saprolegnia parasitica โดยsuspending a teaball containing 12 infected hempseeds in each treatment tray for about 7d or until the infection rate was 10%. The teaball is a small spherical (diameter of 4 cm)stainless steel container perforated with holes (1 mm diameter) to allow the movementof water in and out. The infection rates were determined by counting the number of eggswith visible fungal growth. During this infection period, water flow was discontinued for2 h periods twice a day to promote infection of eggs. The uninfected egg groups (0%infection) were not inoculated with fungus and were allowed to incubate until theinfected egg groups reached a 10% infection level. Prior to chemical treatments,infection rates per tray were equalized by exchanging eggs among trays with high andlow percent infection to achieve a uniform 10% infection rate. A positive control groupwas inoculated with fungus, but not treated with fungicides; a negative control groupwas neither inoculated nor treated with fungicide.Treatment chemicals were delivered with a peristaltic pump (100 ml min-‘) to theincoming water of a mixing tray positioned directly above a treatment tray. Treatmentconcentrations were achieved by delivering calculated amounts of test chemical solutionsto a specific incoming water flow. Treatments were administered for a duration of15 min every other day until eggs began to hatch (approximately 2 weeks). Mortalityand fungal infection rates were assessed before the first treatment (initial) and after thelast treatment (final>. Percent mortality was determined by counting the number of deadeggs; those that appear white. Fry hatch was assessed after all viable eggs had hatched.The percent hatch was corrected by subtracting the initial mortality from 500 eggsaccording to the following formula.number hatchedPercent hatch =500 eggs - initial mortsx 100Samples of treatment water were taken to determine concentrations for each testchemical. Samples were removed from the effluent of each tray 10 min after thetreatment began. Aliquots were collected from one of the replicates for each treatmentgroup. Concentrations of formalin were determined using the spectrophometric methodmentioned earlier. Concentrations of hydrogen peroxide were determined by a permanganatetitrimetric procedure (Jeffery et al., 1989). Concentrations of sodium chloridewere determined with a Hanna portable conductivity meter.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 การทดสอบสารเคมี eficacy
TBE การศึกษาประสิทธิภาพของสารเคมีรวมถึงการรักษาระบอบการปกครองที่สาม ในครั้งแรกที่
มีประสิทธิผลของฟอร์มาลินถูกประเมินที่ระดับความเข้มข้นของการรักษา 500, 1000 และ
1500 I.Ll 1-L ในครั้งที่สองการรับรู้ความสามารถของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ได้รับการประเมินใน
ระดับความเข้มข้นของการรักษา 100, 250, และ 500 ~ 1 1-L การพิจารณาคดีที่สามเมื่อเทียบ
ประสิทธิภาพของฟอร์มาลิน 1500 ~ 1 L- 'ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่ 1000 ~ 1 L-' และเกลือที่
3OOOtJ mg 1 ล.
สีเขียวไข่เรนโบว์เทราท์มากเหมือนกันที่ได้รับภายใน 36 ชั่วโมงหลังจาก
วิ่งพล่านจากปลาเทราท์ Lodge, Sumner, วอชิงตัน aliquots 500 ไข่วางสุ่ม
ในเฮลท์ถาดศูนย์บ่มเพาะโดยใช้คณะกรรมการการแก้ไขไข่นับ (เบลีย์และเจฟฟรีย์,
1989) ไข่ถูกกักขังอยู่ภายในแหวนคริลิคขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 195 มิลลิเมตร 25 มิลลิเมตรความสูง
ที่ได้รับการรักษาความปลอดภัยไปยังหน้าจอของแต่ละถาดศูนย์บ่มเพาะด้วยซิลิโคน การรักษาแต่ละ
ประกอบด้วยสามซ้ำ 500 ไข่แต่ละคนอยู่ในถาดศูนย์บ่มเพาะแยกต่างหาก ดี
น้ำที่ใช้ในการบ่มเพาะไข่มีค่า pH 8.0 ความแข็ง 138 ppm as CaCO ,,
326 TM Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 323-331
ด่างของ 105 ppm as CaCO ,, ปริมาณออกซิเจนที่ละลายในน้ำ 9.0 ppm หรือมากกว่าและ
อุณหภูมิ 12 F 2 องศาเซลเซียส การไหลของน้ำอยู่ที่ประมาณ 3.8 1 min- ในช่วงฟักตัว
และเพิ่มขึ้นเป็น 7.6 1 min- ในระหว่างการรักษาและการฟัก.
เพื่อผลิตการติดเชื้อกลุ่มไข่ถูกเชื้อด้วย Saprolegnia parasitica โดย
ระงับ teaball ที่มี 12 hempseeds ติดเชื้อในถาดรักษาแต่ละประมาณ 7
D หรือจนกว่าจะมีอัตราการติดเชื้อเป็น 10% teaball มีขนาดเล็กทรงกลม (เส้นผ่าศูนย์กลาง 4 ซม.)
ภาชนะสแตนเลสที่มีรูพรุน (มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง 1) เพื่อให้การเคลื่อนไหว
ของน้ำในและนอก อัตราการติดเชื้อได้รับการพิจารณาโดยการนับจำนวนของไข่
กับการเจริญเติบโตของเชื้อราที่มองเห็นได้ ในช่วงระยะเวลาการติดเชื้อนี้การไหลของน้ำก็หยุดสำหรับ
2 งวดชั่วโมงวันละสองครั้งเพื่อส่งเสริมการติดเชื้อของไข่ กลุ่มที่ไม่ติดเชื้อไข่ (0% ของ
การติดเชื้อ) ไม่ได้รับเชื้อด้วยเชื้อราและได้รับอนุญาตในการฟักไข่จน
กลุ่มไข่ติดเชื้อถึงระดับการติดเชื้อ 10% ก่อนที่จะมีการรักษาทางเคมี
อัตราการติดเชื้อต่อถาดถูกเสมอภาคกันโดยการแลกเปลี่ยนไข่หมู่ถาดที่มีสูงและ
การติดเชื้อร้อยละต่ำเพื่อให้เกิดอัตราการติดเชื้อเครื่องแบบ 10% กลุ่มควบคุมบวก
ได้รับเชื้อด้วยเชื้อรา แต่ไม่ได้รับการรักษาด้วยสารฆ่าเชื้อรา; กลุ่มควบคุมเชิงลบ
เป็นค่าเชื้อมิได้รับการรักษาด้วยยาฆ่าเชื้อรา.
สารเคมีบำบัดที่ถูกส่งมากับปั๊ม peristaltic (100 มล. min- ') กับ
น้ำที่เข้ามาของถาดผสมในตำแหน่งที่ตรงเหนือถาดรักษา รักษา
ระดับความเข้มข้นที่กำลังประสบความสำเร็จโดยการส่งมอบจำนวนเงินที่คำนวณได้ของการแก้ปัญหาสารเคมีทดสอบ
กับการไหลของน้ำที่เข้ามาที่เฉพาะเจาะจง การรักษาเป็นยาสำหรับระยะเวลาของ
15 นาทีทุกวัน ๆ จนไข่เริ่มฟัก (ประมาณ 2 สัปดาห์) การตาย
และการติดเชื้อเชื้อราอัตราการได้รับการประเมินก่อนการรักษาครั้งแรก (เริ่มต้น) และหลังการ
รักษาครั้งสุดท้าย (ครั้งสุดท้าย> เปอร์เซ็นต์การตายถูกกำหนดโดยการนับจำนวนของคนตาย.
ไข่. ที่ปรากฏสีขาวทอดฟักได้รับการประเมินหลังจากไข่ที่ทำงานทุกคนจะได้ฟัก .
ฟักร้อยละได้รับการแก้ไขโดยการหักตายเริ่มต้นจาก 500 ไข่
ตามสูตรดังต่อไปนี้.
จำนวนฟัก
เปอร์เซ็นต์ฟัก =
500 ไข่ - Morts เริ่มต้น
x 100
ตัวอย่างน้ำการรักษาถูกนำไปตรวจสอบความเข้มข้นสำหรับการทดสอบแต่ละ
เคมีตัวอย่างถูกลบออกจาก. ท่อน้ำทิ้งของแต่ละถาด 10 นาทีหลังจากที่
การรักษาเริ่ม. aliquots ถูกเก็บรวบรวมจากหนึ่งซ้ำสำหรับการรักษาแต่ละ
กลุ่ม. ความเข้มข้นของฟอร์มาลินได้รับการพิจารณาโดยใช้วิธี spectrophometric
กล่าวก่อนหน้านี้. ความเข้มข้นของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่ถูกกำหนดโดยแมง
ขั้นตอนการไตเตรท (เจฟฟรีย์ et al., 1989). ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์
ถูกกำหนดด้วยเครื่องวัดค่าการนำไฟฟ้าแบบพกพาฮันนา