In the present study, we determine

In the present study, we determine the toxicity of the aqueous extract of neem leaves on the survival and healthy status of Nile tilapia (Oreochromis niloticus), African cat fish (Clarias gariepinus) and its ecological impacts on zooplankton community.
MATERIALS AND METHODS
Preparation of aqueous neem leaf extract
Azadirachta indica (A. indica) leaves were obtained from the surrounding area of Abbassa laboratory, dried and finely chopped, then dissolved in tap water, at a concentration of 500 g of dried leaves per liter of water, for 24 h at room temperature (as described by Cruz et al., 2004). The mixture was filtered and the extract (500 g/l) was used immediately in the experiments, in different dilutions.
Experimental Fish and zooplanktons
Apparently healthy Nile tilapia; Oreochromis niloticus and African cat fish; Clarias gariepinus weighed 50.2 ± 2.5 and 100 ± 4.5 g, respectively were collected from the Fish Farm of Central Laboratory for Aquaculture Research, Abbassa, Abo-Hammad, Sharkia, Egypt and acclimated in indoor tanks supplied with dechlorinated tap-water and continuous aeration for 2 weeks. In addition, zooplankton samples were collected from the same site. Total volumes of the composite samples were approximately 30 L. Water was filtered through a 40 umm mesh collection net, sub samples were removed from this volume during mixing with a large-bore, Hensen–Stemple pipette. Sub- sample volumes ranged from 1 to 10 ml and enumerated at 25x magnification. Determination of 24-h LC100 and 96-h LC50
Static toxicity tests were run to determine lethal and sublethal concentrations (24-h LC100 and 96-h LC50) of neem leaf extract to Oreochromis niloticus and Clarias gariepinus as well as cladocera and copepods. For fish, tests were conducted in 30 L glass aquaria, 6 fish per aquarium, containing neem leaf extract diluted in tap water to the following concentrations: 0 (control group), 1, 5, 10, 15, 20, 25 and 30 g /l. For zooplankton, tests were conducted in 1 L glass beakers, with abundance of 20 individual of cladocera (Daphnia sp.) or 20 individual of copepods (Cyclops sp.) per beaker, containing neem leaf extract diluted in tap water to the following concentrations, 0 (control group), 0.05, 0.10, 0.15, 0.20, 0.25, 0.30, 0.35, 0.40 and 0.45 g /l. Each treatment had 3 replicates. The test containers were examined and counted every 3 days. Once the test individuals began to reproduce, the neonates were discarded. All laboratory conditions were maintained constant. Deaths and abnormal behavior fish as well as cladocera and copepoda (Daphnia sp. & Cyclops sp.) were recorded every 2 h for the 1st day, then every day for other 3 days. The value of 24 h-LC100 and the 96-h LC50 were estimated. The survival rate for cladocera and

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในการศึกษาปัจจุบัน เราตรวจสอบความเป็นพิษของสารสกัดน้ำจากสะเดาใบรอดตายและสถานะสุขภาพของนิล (Oreochromis niloticus), ปลาดุกแอฟริกัน (ปลาดุกแอฟริกา) และเป็นผลกระทบต่อระบบนิเวศชุมชนแพลงตอนสัตว์วัสดุและวิธีการการเตรียมสารละลายน้ำสะเดาใบแยกสะเดา (A. indica) ใบที่ได้จากบริเวณโดยรอบของห้องปฏิบัติการ Abbassa แห้ง และสับละเอียด แล้วละลายในน้ำ ที่ความเข้มข้น 500 กรัมใบแห้งต่อลิตรของน้ำ สำหรับ 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง (ตามที่อธิบายไว้โดยครูซ et al. 2004) ส่วนผสมที่ถูกกรอง และใช้สารสกัดจาก (500 กรัม/ลิตร) ในการทดลอง ในการเจือจางต่าง ๆ ทันทีปลาทดลองและ zooplanktonsเห็นได้ชัดว่ามีสุขภาพดีนิล ปลานิลและปลาดุกแอฟริกา ปลาดุกแอฟริกาน้ำหนัก 50.2 ± 2.5 และ 100 ± 4.5 กรัม ลำดับถูกรวบรวมไว้จากฟาร์มปลาของกลางห้องปฏิบัติการ วิจัยเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำ Abo Hammad, Abbassa, Sharkia อียิปต์ และเหมือนเขามั้ยวะในร่มถังมาพร้อมกับ dechlorinated น้ำและเติมอากาศต่อเนื่อง 2 สัปดาห์ นอกจากนี้ ตัวอย่างแพลงตอนสัตว์ถูกรวบรวมจากไซต์เดียวกัน ปริมาณตัวอย่างคอมโพสิตโดยรวมประมาณ 30 ลิตรน้ำถูกกรองผ่าน a 40 um ตาข่ายเก็บสุทธิ ตัวอย่างย่อยที่ถูกลบออกจากไดรฟ์ข้อมูลนี้ในระหว่างผสมด้วยท่อขนาดใหญ่- เปต Hensen – Stemple ตัวอย่างย่อยปริมาณอยู่ในช่วงจาก 1 ถึง 10 ml และระบุที่กำลังขยาย 25 เท่า กำหนด 96-h LC50 และ LC100 24 ชมการทดสอบความเป็นพิษคงถูกเรียกใช้เพื่อกำหนดยุทธภัณฑ์ และ sublethal ความเข้มข้น (LC100 24 ชม.และ 96-h LC50) ใบสะเดาสารสกัดจากปลานิล และปลาดุกแอฟริการวมทั้ง cladocera และ copepods ปลา การทดสอบปฏิบัติในอควาเรียแก้ว 30 ลิตร ปลา 6 ต่อพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำ ใบสะเดาที่ประกอบด้วยสารสกัดจากเจือจางในน้ำที่ความเข้มข้นต่อไปนี้: 0 (กลุ่มควบคุม), 1, 5, 10, 15, 20, 25 และ 30 g/l สำหรับแพลงตอนสัตว์ การทดสอบปฏิบัติในบีกเกอร์แก้ว 1 ลิตร มีความอุดมสมบูรณ์ของ cladocera (Daphnia sp.) 20 คนหรือ 20 คน copepods (ไซคลอปส์ sp.) ต่อบีกเกอร์ ที่ประกอบด้วยสารสกัดจากใบสะเดาผสมในน้ำที่ความเข้มข้นต่อไปนี้ 0 (กลุ่มควบคุม), 0.05, 0.10, 0.15, 0.20, 0.25, 0.30, 0.35, 0.40 และ 0.45 กรัม/l แต่ละทรีทเม้นต์มี 3 replicates ภาชนะทดสอบตรวจสอบ และตรวจนับทุก 3 วัน เมื่อเริ่มทดสอบบุคคลเพื่อสร้าง ทารกแรกเกิดถูกยกเลิก ห้องปฏิบัติการเงื่อนไขทั้งหมดถูกเก็บรักษาไว้คง ตาย และลักษณะการทำงานผิดปกติปลาเป็น cladocera และ copepoda (Daphnia sp.และไซคลอปส์ sp.) ถูกบันทึกทุก 2 ชม.ในวัน 1 แล้วทุกวัน 3 วันอื่น ๆ ค่าของ 24 h-LC100 และ 96-h LC50 ถูกประเมิน อัตราการอยู่รอดสำหรับ cladocera และ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในการศึกษาปัจจุบันเราตรวจสอบความเป็นพิษของสารสกัดสะเดาใบในการอยู่รอดและมีสุขภาพสถานะของปลานิล (Oreochromis niloticus) ปลาแมวแอฟริกัน (Clarias gariepinus) และผลกระทบทางระบบนิเวศของแพลงก์ตอนสัตว์ชุมชน.
วัสดุและวิธีการ
เตรียมความพร้อมของ น้ำสารสกัดจากใบสะเดา
Azadirachta indica ( A. indica) ใบที่ได้รับจากพื้นที่โดยรอบของห้องปฏิบัติการ Abbassa แห้งและสับละเอียดแล้วละลายในน้ำประปาที่ความเข้มข้น 500 กรัมใบแห้งต่อลิตรของน้ำเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิห้อง (ตามที่อธิบายไว้โดยครูซ et al., 2004) ส่วนผสมที่ถูกกรองและสารสกัด (500 g / l) คือการใช้งานได้ทันทีในการทดลองในการเจือจางที่แตกต่างกัน.
ปลาทดลองและแพลงก์ตอนสัตว์
มีสุขภาพดีเห็นได้ชัดว่าปลานิลแม่น้ำไนล์; ปลานิลและปลาแมวแอฟริกัน; ปลาดุกยักษ์ชั่งน้ำหนัก 50.2 ± 2.5 และ 100 ± 4.5 กรัมตามลำดับที่ถูกเก็บรวบรวมจากฟาร์มปลาของห้องปฏิบัติการกลางเพื่อการวิจัยเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำ Abbassa, Abo-Hammad, Sharkia อียิปต์และปรับตัวในถังน้ำในร่มมาพร้อมกับฆ่าเชื้อด้วยคลอรีนน้ำประปาและการให้อากาศอย่างต่อเนื่อง 2 สัปดาห์. นอกจากนี้กลุ่มตัวอย่างแพลงก์ตอนสัตว์ที่ถูกเก็บรวบรวมจากเว็บไซต์เดียวกัน ปริมาณรวมของคอมโพสิตตัวอย่างประมาณ 30 ลิตรน้ำถูกกรองผ่าน 40 อืมมคอลเลกชันสุทธิตาข่ายตัวอย่างย่อยออกจากหนังสือเล่มนี้ในระหว่างการผสมที่มีขนาดใหญ่เจาะ Hensen-Stemple ปิเปต ปริมาณตัวอย่างย่อยตั้งแต่ 1-10 มล. และแจกแจงที่ 25x ขยาย การกำหนดตลอด 24 ชั่วโมงและ 96 LC100-H LC50 การ
ทดสอบความเป็นพิษแบบคงที่ถูกเรียกใช้ในการกำหนดตายและไม่ตายความเข้มข้น (24-H LC100 และ 96-H LC50) ของสารสกัดจากใบสะเดาเพื่อปลานิลและปลาดุกยักษ์เช่นเดียวกับคลาโดเซอราและโคพีพอด สำหรับปลาการทดสอบได้ดำเนินการในตู้กระจก 30 L, 6 ปลาต่อพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำที่มีส่วนผสมของสารสกัดจากใบสะเดาเจือจางในน้ำประปาที่มีความเข้มข้นต่อไปนี้: 0 (กลุ่มควบคุม), 1, 5, 10, 15, 20, 25 และ 30 กรัม / ลิตร สำหรับแพลงก์ตอนการทดสอบได้ดำเนินการในบีกเกอร์แก้ว 1 ลิตรที่มีความอุดมสมบูรณ์ของ 20 บุคคลของคลาโดเซอรา (Daphnia Sp.) หรือ 20 บุคคลของโคพีพอด (ไซคลอปส์ Sp.) ต่อบีกเกอร์ที่มีสารสกัดจากใบสะเดาเจือจางในน้ำประปาที่มีความเข้มข้นต่อไปนี้ 0 (กลุ่มควบคุม), 0.05, 0.10, 0.15, 0.20, 0.25, 0.30, 0.35, 0.40 และ 0.45 กรัม / ลิตร การรักษาแต่ละครั้งมี 3 ซ้ำ ภาชนะบรรจุการทดสอบได้รับการตรวจสอบและนับทุก 3 วัน เมื่อบุคคลทดสอบเริ่มที่จะทำซ้ำทารกแรกเกิดถูกทิ้ง สภาพห้องปฏิบัติการทั้งหมดได้รับการดูแลอย่างต่อเนื่อง การเสียชีวิตและปลาที่ผิดปกติพฤติกรรมเช่นเดียวกับคลาโดเซอราและ Copepoda (Daphnia Sp. และไซคลอปส์ Sp.) ถูกบันทึกไว้ทุก 2 ชั่วโมงสำหรับวันที่ 1 แล้วทุกวันเป็นเวลาอีก 3 วัน ค่าของ 24 H-LC100 และ 96-H LC50 อยู่ที่ประมาณ อัตราการรอดและคลาโดเซอรา