BJ andMSseeds were surface steriliz

BJ andMSseeds were surface sterilized in a solution of 1% hydrogen
peroxide for 15 min to avoid fungal contamination, washed
with deionised water and then germinated on wet paper towels
for 48 h in an incubator (without illumination) at 25 ◦C. Seedlings
were transplanted into glass jars containing 250mL Hoaglands
media (Hoaglands Basal No 2, Sigma–Aldrich). All experiments
were performed in the controlled environment of a plant growth
chamber (Contherm Scientific Ltd) with a 12-h/12-h light/dark
cycle (25 ◦C/18 ◦C). Seedlings were harvested between two and
three weeks following germination and transferred to Petri plates
containing 40 ml of aqueous solutions of KAuCl4 (Sigma–Aldrich,
99.99%). As summarised in Table 1, the influence of Au concentration
(100, 1000, 10,000 ppm), exposure time (24, 48 or 72 h),
solution pH (2, 3, 4, 5 and 6) and plant organ (roots and shoots)
was investigated during the course of experiments. Solution pH
was adjusted by the addition of 0.1M NaOH or 1M HCl. The effect
of longer exposure times (24, 48, 72, 120, 360 h) on Au uptake was
also studied at lower Au concentrations (5, 10, 20, 40 and 80 ppm).
After exposure, plants were harvested, washed with demineralised
water, dried for 48 h at 105 ◦C, weighed and ashed in the
presence of air at 500 ◦C for 4 h. The ash was then digested in
a mixture of 8ml of concentrated HCl and HNO3 acids using
microwave-assisted digestion at 105 ◦C for 15 min (Milestone
ETHOS SEL). The microwave digestion program used for metal
digestion is reported in Table 2. The sample volume was raised
to 10mL with the addition of 1M HCl prior to analysis by ICPOES.
Calibration standards were prepared from a known Au ICP
standard (1000mgL−1). All calibration curves had a correlation
coefficient of >0.99. Amongst the analytical techniques available to
measure metal concentration in digested plant samples, ICP-OES
and FAAS are most common [21]. In this work ICP-OES was chosen
because of its greater sensitivity and higher detection limits (

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

BJ andMSseeds ถูกผิว sterilized ในโซลูชันของไฮโดรเจน 1%เพอร์ออกไซด์สำหรับ 15 นาทีเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนเชื้อรา ล้างกับ deionised น้ำ และเปลือกงอกแล้ว บนกระดาษเปียกผ้าเช็ดตัวสำหรับ h 48 ในการบ่มเพาะวิสาหกิจ (ไม่มีไฟส่องสว่าง) ที่ 25 ◦C กล้าไม้มี transplanted ลงในขวดแก้วที่ประกอบด้วย 250 มล Hoaglandsสื่อ (Hoaglands โรคทู ซิก-Aldrich) ทดลองทั้งหมดได้ดำเนินการในสภาพแวดล้อมการควบคุมการเจริญเติบโตของพืชหอการค้า (Contherm วิทยาศาสตร์ Ltd) กับดำ/ไฟที่ 12-h/12-hรอบ (25 ◦C/18 ◦C) กล้าไม้ได้เก็บเกี่ยวระหว่างสอง และสามสัปดาห์ต่อการงอก และการโอนย้ายไปจาน Petriประกอบด้วย 40 ml อควีโซลูชั่นของ KAuCl4 (ซิก-Aldrich99.99%) เป็น summarised ในตารางที่ 1 อิทธิพลของความเข้มข้นของ Au(100, 1000, 10000 ppm), ระยะเวลาการรับแสง (24, 48 หรือ 72 h),แก้ปัญหาค่า pH (2, 3, 4, 5 และ 6) และอวัยวะของพืช (รากและยอด)ถูกตรวจสอบในระหว่างการทดลอง แก้ปัญหาค่า pHถูกปรับปรุง โดยการเพิ่ม 0.1 M NaOH หรือ 1 M HCl ผลของแสงอีกครั้ง (24, 48, 72, 120, 360 h) ในอู ถูกดูดซับนอกจากนี้ยัง ศึกษาที่ต่ำกว่าอูความเข้มข้น (5, 10, 20, 40 และ 80 ppm)หลังจากการเปิดรับแสง พืชเก็บเกี่ยว ล้างด้วย demineralisedน้ำ แห้งสำหรับ h 48 ที่ 105 ◦C ชั่งน้ำหนัก และ ashed ในการสถานะของเครื่องที่ 500 ◦C สำหรับ 4 h เถ้าถูกย่อยแล้วในส่วนผสมของ 8ml เข้มข้น HCl และ HNO3 กรดโดยใช้ไมโครเวฟช่วยย่อยอาหารที่ ◦C 105 สำหรับ 15 นาที (ไมล์สโตนปัด SEL) โปรแกรมย่อยอาหารไมโครเวฟใช้สำหรับโลหะย่อยอาหารรายงานในตารางที่ 2 ปริมาตรตัวอย่างขึ้นกับมล. 10 แห่ง 1 M HCl ก่อนวิเคราะห์โดย ICPOESปรับเทียบมาตรฐานถูกเตรียมจาก ICP Au รู้จักมาตรฐาน (1000mgL−1) เส้นโค้งเทียบทั้งหมดมีความสัมพันธ์สัมประสิทธิ์ของ > 0.99 ในบรรดาเทคนิคการวิเคราะห์ที่พร้อมใช้งานวัดความเข้มข้นโลหะในตัวอย่างพืชเจ่า วิจัยและ FAAS ส่วนใหญ่ทั่วไป [21] ในงานนี้ ได้รับการเลือกวิจัยเนื่องจาก มีความไวสูงความสูงตรวจสอบจำกัด (< 10ppb สำหรับ Au) ข้ามเงื่อนไขตรวจสอบ [22] แต่ละการทดลองได้เหมือนกับสองและทดลองทั้งหมดมี 3 ซ้ำครั้ง จากผลลัพธ์เหล่านี้ outliers ถูกเอาออกโดยใช้มาตรฐานอัลกอริทึมน้อยมัธยฐานของเหลี่ยม ตามคำนวณค่าเฉลี่ยและส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้นของ Auสำหรับการวิเคราะห์สัณฐาน และกายวิภาค โรงงานตัวอย่างถาวรได้ใน 2% glutaraldehyde ตามคายน้ำแอลกอฮอล์ฝังตัวอยู่ใน Spurrs เรซิน และเตาอบรักษาที่ 60 ◦C สำหรับ 24 ชม [23]ประมาณ 1 เมตรส่วนหนาถูกตัดใช้ microtome เป็น(ไล Microsystems) ส่วนที่สีกับ toluidine 0.2%สีน้ำเงิน ความร้อนคงที่ แล้วดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง (Nikon Sensicam)ในเบื้องต้น - PIXE วิเคราะห์มือส่วนต่าง ๆ ของราก และเกิดของ BJ และ MS ได้รับ เหล่านี้ถูกลดลงทันทีลงในไนโตรเจนเหลว ตาม ด้วยการอบแห้งสำหรับ 24 h. ตรึงแห้งแช่แข็งส่วนติดตั้งบนเทปคาร์บอนขึ้นภายในมาตรฐานANSTO อลูมิเนียม microprobe ใส่ตัวอย่าง สำหรับส่วนเหลือของ - PIXE experiments วิธีแก้ไขของ Bidwell et al[24] ถูกใช้ มีแผ่นวงกลมของเนื้อเยื่อราก ก้าน และใบตัดใช้เจาะรู และใส่ในอูผู้ถือตัวอย่างเตรียมมี 1-hexadecane (เพื่อแยกก๊าซฟอง) ก่อนที่จะโหลดเข้าไปในตัวตู้แช่ความดันสูง (LeicaEMHPF) แช่ตัวอย่างความดันสูงมีการถ่ายโอนสื่อแทนการแช่แข็ง (diethyl อีเทอร์) ที่แช่ใบส่วนถูกแทน ด้วยอีเทอร์ diethyl ผ่านแล้วสดใช้ตะแกรงโมเลกุลใน 3 มิติที่ −90 ◦C ตัวอย่างดีแล้วค่อย ๆ ยก ◦C to−30 ในอัตรา 1 ◦Ch−1 และจัดขึ้น 48 hอุณหภูมินี้สามารถทำ สุดท้ายขึ้นอุณหภูมิห้องอุณหภูมิที่ 1 ◦Ch−1 ตรึงเทียบเท่าตัวอย่างได้ในเวลาต่อมาถูกแทรกซึม ด้วยการเพิ่มอัตราส่วนของยางของ Spurr กว่า 72 h(ยางของ Spurr: ดี 2:8 ใน 24 h, 5:5 ใน 24 ชม และ 8:2 ใน 24 ชม) ก่อนสุดท้าย กำลังถูกแทรกซึม ด้วยเรซิน 100% Spurr ค้างคืนสำหรับ 12 hเมื่อแทนสมบูรณ์ อย่างถูกฝังอยู่ในสดresin และรักษาประมาณ 6-10 เมตรส่วนที่ 60 ◦C สำหรับ 24 h.ถูกตัดใช้ microtome เป็นมีดแก้วแห้ง (Microsystems ไล),แล้ว ติดตั้งลงในมาตรฐาน ANSTO อลูมิเนียมใส่พร้อมสำหรับการวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

BJ andMSseeds ถูกฆ่าเชื้อพื้นผิวในการแก้ปัญหาของไฮโดรเจน 1%
เปอร์ออกไซด์เป็นเวลา 15 นาทีเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนของเชื้อราล้าง
ด้วยน้ำ deionised และงอกแล้วบนกระดาษเปียก
เป็นเวลา 48 ชั่วโมงในการฟักไข่ (โดยไม่ต้องส่องสว่าง) ที่อุณหภูมิ 25 ◦C ต้นกล้าที่
ได้รับการปลูกถ่ายลงในขวดแก้วที่มี 250mL Hoaglands
สื่อ (Hoaglands ฐานที่ 2, Sigma-Aldrich) การทดสอบทั้งหมด
ได้ดำเนินการในสภาพแวดล้อมที่ควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
ในห้อง (Contherm วิทยาศาสตร์ จำกัด ) กับ 12 ชั่วโมง / 12 ชั่วโมงแสง / มืด
รอบ (25 ◦C / 18 ◦C) ต้นกล้าที่เก็บเกี่ยวระหว่างสองและ
สามสัปดาห์ต่อการงอกและโอนไปยังแผ่น Petri
มี 40 มิลลิลิตรของสารละลายของ KAuCl4 (Sigma-Aldrich,
99.99%) ขณะที่สรุปไว้ในตารางที่ 1 อิทธิพลของความเข้มข้น Au
(100, 1000, 10,000 ppm), เวลารับแสง (24, 48 หรือ 72 ชั่วโมง)
สารละลาย (2, 3, 4, 5 และ 6) และอวัยวะพืช (รากและ หน่อ)
ถูกตรวจสอบในช่วงของการทดลอง สารละลายที่
มีการปรับโดยนอกเหนือจาก 0.1M NaOH หรือ 1M HCl ผลกระทบ
ของการเปิดรับอีกต่อครั้ง (24, 48, 72, 120, 360 ต่อชั่วโมง) ในการดูด Au ถูก
ยังศึกษาในระดับความเข้มข้นที่ต่ำกว่า Au (5, 10, 20, 40 และ 80 ppm).
หลังจากได้รับพืชเก็บเกี่ยว, การล้างด้วย ปราศจากแร่ธาตุ
น้ำแห้งเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 105 ◦Cชั่งน้ำหนักและ ashed ใน
การปรากฏตัวของอากาศที่ 500 ◦Cเป็นเวลา 4 ชั่วโมง เถ้าถูกย่อยแล้วใน
ส่วนผสมของ 8ml เข้มข้น HCl และกรด HNO3 ใช้
ไมโครเวฟการย่อยอาหารช่วยที่ 105 ◦Cเป็นเวลา 15 นาที (Milestone
ETHOS SEL) โปรแกรมการย่อยอาหารไมโครเวฟที่ใช้ในการโลหะ
การย่อยอาหารจะมีการรายงานในตารางที่ 2 ปริมาณตัวอย่างที่ถูกยกขึ้น
เพื่อ 10ml ด้วยนอกเหนือจาก 1M HCl ก่อนที่จะมีการวิเคราะห์โดย ICPOES.
มาตรฐานการสอบเทียบที่เตรียมจากที่รู้จักกัน Au ICP
มาตรฐาน (1000mgL-1) เส้นโค้งการสอบเทียบทั้งหมดมีความสัมพันธ์
ค่าสัมประสิทธิ์ของ> 0.99 ในบรรดาเทคนิคการวิเคราะห์ที่มีให้
วัดความเข้มข้นของโลหะในตัวอย่างพืชย่อย ICP-OES
และ FAAS จะพบมากที่สุด [21] ในงานนี้ ICP-OES ได้รับเลือก
เพราะความไวมากขึ้นและข้อ จำกัด ที่สูงกว่าการตรวจสอบ (<10
ppb สำหรับ Au) ข้ามเงื่อนไขการตรวจสอบ [22] แต่ละการทดลอง
มีสองซ้ำและการทดลองทั้งหมดถูกซ้ำสาม
ครั้ง จากผลเหล่านี้ผิดปกติถูกถอดออกโดยใช้มาตรฐาน
อย่างน้อยเฉลี่ยของสี่เหลี่ยมอัลกอริทึมตามด้วยการคำนวณ
ค่าเฉลี่ยและค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้น Au.
สำหรับการวิเคราะห์ลักษณะทางสัณฐานวิทยาและกายวิภาคตัวอย่างพืชที่
ได้รับการแก้ไขใน glutaraldehyde 2% ตามด้วยเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ การคายน้ำ
ที่ฝังอยู่ในเรซิน Spurrs แล้วหายเตาอบที่อุณหภูมิ 60 ◦Cเป็นเวลา 24 ชั่วโมง [23].
ประมาณ 1? m หนาส่วนที่ถูกตัดออกโดยใช้ไมโคร
(Leica Microsystems) ส่วนที่ถูกย้อมด้วย 0.2% toluidine
สีฟ้าความร้อนคงที่และดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง (Nikon Sensicam).
สำหรับเบื้องต้น? ส่วนมือวิเคราะห์ -PIXE ของรากและ
ลำต้นของ BJ และ MS ที่ได้รับ เหล่านี้ลดลงทันที
ลงในไนโตรเจนเหลวตามมาด้วยการอบแห้งแช่แข็งเป็นเวลา 24 ชั่วโมง แช่แข็งแห้ง
ส่วนที่ถูกติดตั้งอยู่บนเทปคาร์บอนจัดขึ้นภายในมาตรฐาน
อลูมิเนียม ANSTO ใส่สารตัวอย่าง microprobe สำหรับส่วนที่เหลือ
ของ? -PIXE ทดลองวิธีการแก้ไขของ Bidwell et al.
[24] ถูกนำมาใช้ แผ่นวงกลมของรากลำต้นและใบเนื้อเยื่อถูก
ตัดโดยใช้หลุมเจาะและวางไว้ใน Au ถือตัวอย่างที่เตรียมไว้
กับ 1- hexadecane (ที่จะไม่รวมฟองก๊าซ) ก่อนที่จะโหลดลงใน
ช่องแช่แข็งแรงดันสูง (LeicaEMHPF) ตัวอย่างแช่แข็งแรงดันสูง
ถูกโอนไปยังสื่อทดแทนแช่แข็ง (อีเทอร์)
ส่วนใบแช่แข็งถูกแทนที่แล้วกับอีเทอร์กว่า
ตะแกรงโมเลกุลสดใหม่เพื่อเปิดใช้งาน 3 D ที่ -90 ◦C ตัวอย่างที่ถูก
ยกขึ้นแล้วค่อยๆ-30 ◦Cในอัตรา 1 ◦Ch-1 และถือเป็นเวลา 48 ชั่วโมง
ที่อุณหภูมินี้ อุณหภูมิในที่สุดก็ถูกยกขึ้นไปที่ห้อง
อุณหภูมิ ณ วันที่ 1 ◦Ch-1 แช่แข็งตัวอย่างแทนถูกต่อมา
แทรกซึมกับการเพิ่มอัตราส่วนของเรซิน Spurr กว่า 72 ชั่วโมง
(เรซิน Spurr ของ: DEE 2: 8 เป็นเวลา 24 ชั่วโมง, 5: 5 เป็นเวลา 24 ชั่วโมงและ 8: 2 เป็นเวลา 24 ชั่วโมง) ก่อน
ที่จะถูกแทรกซึมด้วย 100% เรซิน Spurr ของค้างคืนเป็นเวลา 12 ชม.
เมื่อได้รับการทดแทนตัวอย่างที่สมบูรณ์ถูกฝังอยู่ในสด
เรซินและหายที่ 60 ◦Cเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ประมาณ 6-10 เมตรส่วนที่
ถูกตัดใช้มีดแก้วแห้ง microtome (Leica Microsystems)
แล้วติดตั้งลงบนผู้ถืออลูมิเนียม ANSTO มาตรฐานพร้อม
สำหรับการวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

BJ andmsseeds ถูกฟอกฆ่าเชื้อด้วยสารละลายไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ 1 %
15 นาทีเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนเชื้อรา ล้างด้วยน้ำแล้ว
deionised งอกบนผ้าขนหนูกระดาษเปียก
48 ชั่วโมงในตู้อบ ( ไม่มีไฟ ) ที่ 25 ◦ C . ต้นกล้า
ถูกปลูกถ่ายไปยังขวดแก้วบรรจุ 250ml hoaglands
สื่อ ( hoaglands แรกเริ่ม ไม่มี 2 , Sigma –ดิช ) โดย
กำลังดำเนินการในสภาพแวดล้อมที่ควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
( ห้อง contherm ทางวิทยาศาสตร์ LTD ) กับ 12-h 12-h / แสง / มืด
วัฏจักร ( 25 ◦ C / 18 ◦ C ) ต้นกล้าถูกเก็บเกี่ยวระหว่างสองและสามสัปดาห์ต่อไปนี้การงอกและ

โอนไปยังจาน Petri ประกอบด้วย 40 มิลลิลิตรของสารละลายของ kaucl4 ( Sigma ) Aldrich
99.99% ) เป็นสรุปในตารางที่ 1 อิทธิพลของความเข้มข้นของ AU
( 1001 , 000 , 000 ppm ) เวลาเปิดรับแสง ( 24 , 48 และ 72 ชั่วโมง )
พีเอช ( 2 , 3 , 4 , 5 และ 6 ) และอวัยวะของพืช ( รากและหน่อ )
พบในระหว่างการทดลอง พีเอช
จะปรับเพิ่ม 0.1m NaOH หรือ 1m hcl . ผล
ครั้งแสงอีกต่อไป ( 24 , 48 , 72 , 120 , 360 H ) ในการเป็น Au
ยังศึกษาระดับมัธยมศึกษาตอนต้นหรือความเข้มข้น 5 , 10 , 20 , 40 และ 80 ppm ) .
หลังจากการเปิดรับแสงพืชที่ถูกเก็บเกี่ยว , การล้างด้วย demineralised
น้ำแห้ง 48 H ที่ 105 ◦ C และในชั่ง Ashed
สถานะของอากาศที่ 500 ◦ C เป็นเวลา 4 ชั่วโมง ผสมแล้วย่อยใน
ส่วนผสมที่เข้มข้น และ 8ml กรดดินประสิวกรด HCl ใช้
microwave-assisted การย่อยอาหารที่ 105 ◦เป็นเวลา 15 นาที ( ขั้น
ethos SEL ) โปรแกรมที่ใช้ไมโครเวฟการย่อยอาหารการย่อยอาหารโลหะ
รายงานในตารางที่ 2ตัวอย่างเล่มโต
เพื่อสำหรับกับเพิ่ม 1M HCl ก่อนการวิเคราะห์ด้วย icpoes .
มาตรฐานการสอบเทียบที่เตรียมจากรู้จัก AU ICP
มาตรฐาน ( 1000mgl − 1 ) เส้นโค้งสอบเทียบทั้งหมดมีความสัมพันธ์
2 > 0.99 . ท่ามกลางเทคนิคการวิเคราะห์โลหะใช้ได้

วัดความเข้มข้นในโรงงานตัวอย่างและรูปแบบย่อย ,
FAAS พบมากที่สุด [ 21 ]ในงานวิจัยนี้ได้เลือกรูปแบบ
เพราะความไวมากขึ้นและสูงกว่าการตรวจสอบจำกัด ( พีพี < 10
สำหรับ AU ) ข้ามเงื่อนไขตรวจสอบ [ 22 ] แต่ละการทดลอง
มี 2 ซ้ำ และทดลองซ้ำ 3
ครั้ง จากผลลัพธ์เหล่านี้เมื่อถูกลบโดยใช้มาตรฐาน
อย่างน้อยเฉลี่ยของสี่เหลี่ยมขั้นตอนวิธีตามการคำนวณของ
ค่าเฉลี่ย และส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้น Au
สำหรับการวิเคราะห์ทางสัณฐานวิทยาและกายวิภาคของพืช
ตัวอย่างถูกกำหนดใน 2 % glutaraldehyde ตามด้วยน้ำแอลกอฮอล์
ฝังตัวอยู่ใน spurrs เรซินแล้วหายใน 60 ◦เตาอบเป็นเวลา 24 ชั่วโมง [ 23 ] .
ประมาณ 1  ม. หนาบางส่วนถูกตัดโดยใช้เครื่องตัดชิ้นเนื้อ
( Leica Microsystems ) บางส่วนถูกย้อมด้วย 0.2% โทลูอิดีน
สีฟ้าความร้อนคงที่ และดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์ ( Nikon sensicam ) .
สำหรับเบื้องต้น  - การวิเคราะห์ pixe มือในส่วนของรากและลำต้นของ BJ
และคุณได้รับ เหล่านี้ได้ทันที )
ลงในไนโตรเจนเหลว ตามด้วยการอบแห้งแช่แข็งแช่แข็งเป็นเวลา 24 ชั่วโมงส่วนแห้ง
ติดบนเทปคาร์บอนที่จัดขึ้นภายในมาตรฐาน
ansto อะลูมิเนียมไมโครโพรบ ตัวอย่าง ผู้ถือ สำหรับส่วนที่เหลือ
ของ  - pixe การทดลองดัดแปลงวิธี บิดเวลล์ et al .
[ 24 ] ใช้ แผ่นวงกลมของราก ลำต้น และใบ เนื้อเยื่อที่ใช้เจาะ
ตัดและวางไว้ใน Au ตัวอย่างผู้ถือเตรียม
1 - เฮกซาเคกเคน ( รวมฟองก๊าซ ) ก่อนที่จะโหลดลงในช่องแช่แข็ง
แรงดันสูง ( leicaemhpf ) ความดันสูง คือ ตัวอย่าง
แช่แข็งแช่แข็งทดแทนสื่อ ( diethyl ether )
ส่วนใบแช่แข็งแล้วทดแทนด้วยไดเอทิลอีเทอร์กว่า
สดเปิดตะแกรงโมเลกุล 3 D − 90 ◦ C จำนวน
แล้วค่อยๆยก 30 −◦ C อัตรา 1 ◦ CH − 1 และจัดขึ้นเป็นเวลา 48 ชั่วโมง
ที่อุณหภูมินี้ อุณหภูมิก็เลี้ยงที่อุณหภูมิห้อง
1 ◦ CH − 1 แช่แข็งจำนวนในภายหลัง
แทนแทรกซึมด้วยการเพิ่มอัตราส่วนของสเปอร์ของเรซินกว่า 72 H
( สเปอร์ของเรซิน : ดี 2 : 8 สำหรับ 24 ชั่วโมง , 24 ชั่วโมง , 5 : 5 และ 8 : 2 24 ชั่วโมง ) ก่อน
ในที่สุดก็ถูกแทรกซึมด้วย 100% สเปอร์ของเรซินค้างคืน 12 H .
เมื่อทดแทนคือตัวอย่างที่สมบูรณ์ถูกฝังอยู่ใน เรซิน สด
รักษา ที่ 60 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ◦ประมาณ 6 – 10  ส่วน
M