2.2. MeasurementsImmediately after

2.2. Measurements
Immediately after birth, piglets were dried using paper towels, their umbilical cord was clamped,
and they were ear-tagged and weighed with a digital balance (1 g of precision). After these
procedures, they were placed in a box warmed by a heating lamp where they remained for
5–10 min; then they were moved close to the teats of sows. Piglets were weighed again 24 h after
farrowing to esti- mate colostrum intake according to the method described by Devillers et al.
(2004).
Colostrum yield was estimated in 40 primiparous and
44 multiparous sows used as biological dams, according to the method described by Devillers et
al. (2004). The average interval between birth and first suckling was esti- mated to be 30 min
(Devillers et al., 2007; Quesnel, 2011). When piglets die within 17 h after birth, their
colostrum intake can be underestimated (Devillers et al., 2004). As the exact moment of a piglet’s
death could not be recorded, colostrum yield was estimated only in sows that did not lose
piglets within the first 24 h after farrowing.
To assess the amount of IgG in serum, blood samples from sows (10 ml) were collected via jugular
venipuncture after the end of farrowing (6.04 ± 0.14 h after farrowing onset). Blood samples of
the piglets (4 ml) were obtained at three time points: 23.7 ± 0.06 h after birth (before cross-
fostering), at 10 and 20 days of age; blood was collected from the jugular vein using a vacuum
tube (Vacutainer, Labor Import, São Paulo, Brazil) with a clotting activator. About one hour
after collection, all blood samples were centrifuged for 10 min at 1600 × g and serum samples were
stored at −20 ◦ C until analysis.
Piglets were weighed again at 7, 14, 20, 28 and 42 days of age. All the piglets were weaned at 21
days of age. Piglet mortality was daily recorded. On the first day after birth all piglets
received prophylactic antibiotics (4.4 mg/kg of gentamicin, by the IM route). Tail-docking was
performed
at three days of age when the piglets also received appli-
cations of an anticoccidial (Baycox® , Bayer, 20 mg/kg of Toltrazurila, by the oral route) and
iron dextran glu- coheptonate (Gleptoferril® , Eurofarma, 200 mg/piglet, by the IM route). One
day before weaning all piglets were vaccinated against Mycoplasma hyopneumoniae, porcine
circovirus type II and Haemophilus parasuis conjugated with Streptococcus suis.
The quantity of IgG was assessed by a direct enzyme- linked immunosorbent assay (ELISA).
Ninety-six well microtitration plates were coated with 100 j--L per well of diluted serum
(1:16,900) in 20 mM carbonate buffer (pH 9.6) by incubation overnight at 4 ◦ C. Thereafter,
block- ing was done with 5% cow non-fat dry milk-phosphate
buffered saline (pH 7.2) (BLOTTO) and the plate was incu- bated for 1 h at 37 ◦ C. Plates were
washed three times with PBS and then the horseradish peroxidase conjugate anti- pig IgG (Sigma
A7670) was applied (diluted 1:20,000) and the plate was incubated for 1 h at 37 ◦ C. After washing
the plates three times with PBS, the chromogen and the sub- strate were added (3.4 mg of
phenylenediamine, 5 j--l of 30% H2 O2 in 0.1 M citrate–phosphate buffer, pH 5.0). The reac- tion
was stopped after 15 min with 12.5% H2 SO4 and the optical density (OD) was determined at 492 nm.
Incuba- tion of the anti-pig IgG conjugate in non-IgG coated wells of the microtitration plate was
used as control. The standard curve was obtained by incubating a known concentration of swine IgG
(0.1–2.0 j--g/ml) in the same plate and condi- tions. The intra-assay CV was 4% and inter-assay CV
was
16% for the serum analyses.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2 การประเมินทันทีหลังคลอด ทรูดที่แห้งโดยใช้ผ้าขนหนูกระดาษ สะดือของพวกเขาถูก clamped และพวก แท็กหู และชั่งน้ำหนักที่ มียอดดิจิตอล (1 กรัมของความแม่นยำ) หลังจากนี้ ขั้นตอน พวกเขาถูกวางในกล่อง warmed โดยโคมไฟร้อนที่พวกเขายังคงอยู่ใน5 – 10 นาที แล้ว พวกเขาก็ย้ายใกล้กับ teats ของ sows ทรูดมีน้ำหนักอีก 24 ชมหลังจาก farrowing การบริโภค colostrum esti เมทตามวิธีการอธิบายไว้โดย Devillers et al (2004)มีประเมินผลผลิต colostrum ใน 40 primiparous และ44 multiparous sows ใช้เป็นเขื่อนชีวภาพ ตามวิธีการอธิบายไว้ โดย Devillers et al. (2004) ช่วงเวลาเฉลี่ยระหว่างเกิดและ first หันถูก esti-mated เป็น 30 นาที (Devillers et al., 2007 Quesnel, 2011) เมื่อทรูดตายภายใน 17 h หลังคลอด ของพวกเขา บริโภค colostrum สามารถ underestimated (Devillers et al., 2004) เป็นเวลาที่แน่นอนของลูกสุกร ไม่สามารถบันทึกความตาย ผลผลิต colostrum ได้ประมาณใน sows ที่ไม่สูญเสียเท่านั้น ทรูดภายใน first 24 ชมหลังจาก farrowingการประเมินจำนวน IgG ในซีรั่ม ตัวอย่างเลือดจาก sows (10 ml) ถูกเก็บรวบรวมผ่าน jugular การเจาะหลอดเลือดดำหลังสิ้นสุด farrowing (6.04 ± 0.14 h หลังจาก farrowing เริ่มมีอาการ) ตัวอย่างเลือด ทรูด (4 ml) ก็ได้เวลาจุดสาม: 23.7 ± 0.06 h หลังคลอด (ก่อนข้าม- อุปถัมภ์), 10 และ 20 วันอายุ มีการรวบรวมเลือดจากหลอดเลือดดำ jugular ที่ใช้สุญญากาศ หลอด (Vacutainer นำเข้าแรงงาน เซาเปาลู บราซิล) มี activator โรค ประมาณหนึ่งชั่วโมง หลังจากคอลเลกชัน มี centrifuged ตัวอย่างเลือดทั้งหมดใน 10 นาทีที่ 1600 × g และตัวอย่างซีรั่มดีเก็บไว้ที่ −20 ◦ C จนถึงการวิเคราะห์ทรูดขึ้นชั่งน้ำหนักอีกครั้งในวันที่ 7, 14, 20, 28 และ 42 อายุ ทรูดทั้งหมดถูกหย่านมถึงที่ 21 วันของอายุ ทุกวันมีบันทึกการตายของลูกสุกร วัน first หลังจากเกิดทั้งหมดทรูด ได้รับยาปฏิชีวนะทาน (4.4 mg/kg ของ gentamicin โดยเส้นทาง IM) หางเทียบได้ ดำเนินการในสามวันของอายุเมื่อทรูดที่ยังรับ appli-เป็นของหายากของการ anticoccidial (Baycox ® ไบเออร์ 20 มิลลิกรัม/กิโลกรัมของ Toltrazurila โดยเส้นทางปาก) และ เหล็กเดกซ์แทรน glu-coheptonate (Gleptoferril ® Eurofarma, 200 มิลลิกรัม/ลูกสุกร โดยเส้นทาง IM) หนึ่ง วันก่อน weaning ทรูดทั้งหมดถูกฉีดกับ hyopneumoniae Mycoplasma ช่วง circovirus พิมพ์ parasuis II และ Haemophilus กลวง ด้วยอุณหภูมิ suisมีประเมินปริมาณของ IgG โดยเอนไซม์โดยตรง - immunosorbent เชื่อมโยง assay (ELISA) ไนน์ตี้ซิกซ์ microtitration ดีแผ่นถูกเคลือบ ด้วย 100 j - L ต่อด้วยเซรั่มแตกออก (1:16, 900) ใน 20 มม. carbonate บัฟเฟอร์ (pH 9.6) โดยบ่มข้ามคืนที่ 4 ◦ C. หลังจากนั้น บล็อกกำลังทำกับ 5% วัวไขมันไม่แห้งนมฟอสเฟตbuffered น้ำเกลือ (pH 7.2) (BLOTTO) และจาน incu-bated สำหรับ 1 h ที่ 37 ◦ C. แผ่นได้ ล้าง 3 ครั้ง ด้วย PBS แล้ว horseradish peroxidase conjugate ป้องกันหมู IgG (ซิกมา A7670) ถูกนำไปใช้ (แตกออก 1:20, 000) และจานถูก incubated สำหรับ h 1 ที่ 37 ◦ C. หลังจากซักผ้า แผ่นครั้งที่สาม ด้วย PBS, chromogen การ และ strate ย่อยเพิ่ม (3.4 มิลลิกรัมของ phenylenediamine, 5 j - l 30% H2 O2 ใน 0.1 M ซิเต – ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ ค่า pH 5.0) สเตรชัน reac หยุดหลังจาก 15 นาที 12.5% H2 SO4 และความหนาแน่นออปติคอล (OD) กำหนดที่ 492 nm Incuba สเตรชันของค่าสังยุคหมูป้องกันของ IgG ในบ่อเคลือบไม่ใช่ IgG ของแผ่น microtitration ได้ ใช้เป็นตัวควบคุม เส้นโค้งมาตรฐานได้รับ โดย incubating เข้มข้นรู้จักของสุกร IgG (0.1-2.0 เจ - g/ml) ในแผ่นเดียวกันและ tions เบาะ ๆ ว่าพวกเขา CV ภายในวิเคราะห์ได้ 4% และทดสอบระหว่าง CV ถูก16% สำหรับวิเคราะห์เซรั่ม

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 วัด
ทันทีหลังจากที่คลอดลูกสุกรแห้งโดยใช้ผ้าขนหนูกระดาษ, สายสะดือของพวกเขาถูกยึด,
และพวกเขาก็หูที่ติดแท็กและชั่งน้ำหนักที่มียอดคงเหลือดิจิตอล (1 กรัมของความแม่นยำ) หลังจากที่ทั้ง
วิธีการที่พวกเขาถูกวางไว้ในกล่องอุ่นด้วยความร้อนหลอดไฟที่พวกเขายังคงใช้เวลา
5-10 นาที; แล้วพวกเขาก็ถูกย้ายไปใกล้กับจุกนมของแม่สุกร ลูกสุกรได้รับการชั่งน้ำหนักอีกครั้ง 24 ชั่วโมงหลัง
คลอดเพื่อ esti- การบริโภคนมน้ำเหลืองคู่ตามวิธีการอธิบายโดย Devillers et al.
(2004).
Colostrum อัตราผลตอบแทนอยู่ที่ประมาณ 40 คลอดบุตรคนแรกและ
44 แม่สุกร multiparous ใช้เป็นเขื่อนทางชีวภาพตามวิธีการที่อธิบายไว้โดย Devillers และ
อัล (2004) ช่วงเวลาเฉลี่ยระหว่างเกิดและไฟดูดนมแรกเป็น esti- แต่งงานแล้วจะเป็น 30 นาที
(Devillers et al, 2007;. เควสเน 2011) เมื่อลูกสุกรตายภายใน 17 ชั่วโมงหลังคลอดของพวกเขา
บริโภคนมน้ำเหลืองสามารถ underestimated (Devillers et al., 2004) ในฐานะที่เป็นช่วงเวลาที่แน่นอนของลูกหมูที่
ตายไม่สามารถบันทึกผลผลิตน้ำนมเหลืองเป็นที่คาดกันเฉพาะในแม่สุกรที่ไม่ได้สูญเสีย
ลูกสุกรภายในสายแรก 24 ชั่วโมงหลังจากที่คลอด.
เพื่อประเมินปริมาณของ IgG ในซีรั่มตัวอย่างเลือดจากแม่สุกร (10 มล.) ถูกเก็บรวบรวมผ่านทางคอ
เจาะเลือดหลังจากการสิ้นสุดของคลอด (6.04 ± 0.14 ชั่วโมงหลังคลอดอาการ) ตัวอย่างเลือดของ
ลูกสุกร (4 มล.) ที่ได้รับสามจุดเวลา: 23.7 ± 0.06 ชั่วโมงหลังคลอด (ก่อนที่จะข้าม
อุปถัมภ์), ที่ 10 และ 20 วันของอายุ เลือดที่เก็บมาจากเส้นเลือดใช้สูญญากาศ
หลอด (Vacutainer, นำเข้าแรงงาน, รัฐเซาเปาลู, บราซิล) กับกระตุ้นการแข็งตัว ประมาณหนึ่งชั่วโมง
หลังจากเก็บตัวอย่างเลือดทั้งหมดถูกปั่นเป็นเวลา 10 นาทีที่ 1600 ×กรัมและตัวอย่างซีรั่มที่ถูก
เก็บไว้ที่อุณหภูมิ -20 C ◦จนการวิเคราะห์.
ลูกสุกรได้รับการชั่งน้ำหนักอีกครั้งที่ 7, 14, 20, 28 และอายุ 42 วัน ลูกสุกรทั้งหมดถูกหย่านมที่ 21
วันอายุ การตายของลูกสุกรที่ถูกบันทึกไว้ในชีวิตประจำวัน ในสายวันแรกหลังคลอดลูกสุกรทั้งหมด
ที่ได้รับยาปฏิชีวนะป้องกันโรค (4.4 mg / kg ของ GENTAMICIN โดยเส้นทาง IM) หางเชื่อมต่อได้รับการ
ดำเนินการ
ที่สามวันของอายุเมื่อลูกสุกรพลิเคชั่นยังได้รับการ
ประจุบวกของ anticoccidial (Baycox®, ไบเออร์, 20 mg / kg ของ Toltrazurila โดยเส้นทางปาก) และ
เหล็ก dextran glu- coheptonate (Gleptoferril®, Eurofarma 200 มิลลิกรัม / ลูกสุกรโดยเส้นทาง IM) หนึ่ง
วันก่อนหย่านมลูกสุกรทั้งหมดถูกฉีดวัคซีนป้องกัน Mycoplasma hyopneumoniae, สุกร
ชนิด circovirus ครั้งที่สองและ Haemophilus parasuis ผันกับ Streptococcus suis.
ปริมาณ IgG ได้รับการประเมินโดย enzyme- โดยตรงการเชื่อมโยงการทดสอบอิมมูโน (ELISA).
เก้าสิบหกแผ่น microtitration ดีมีเคลือบ 100 J - L ต่อกันดีของซีรั่มเจือจาง
(1: 16,900) ใน 20 มิลลิบัฟเฟอร์คาร์บอเนต (pH 9.6) โดยบ่มค้างคืนที่ 4 ◦ C. หลังจากนั้น
บล็อคไอเอ็นจีได้ทำ 5% วัวไม่มีไขมัน milk- แห้ง ฟอสเฟต
น้ำเกลือบัฟเฟอร์ (pH 7.2) (เมา) และแผ่นถูกซึ้งลด incu- เป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 ◦ C. แผ่นถูก
ล้างสามครั้งกับพีบีเอสและจากนั้นผัน peroxidase มะรุมต้าน IgG หมู (Sigma
A7670) ถูกนำมาใช้ (ปรับลด 1: 20,000) และแผ่นถูกบ่มเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 ◦ C. หลังจากล้าง
จานสามครั้งกับพีบีเอส chromogen และย่อย Strate ถูกเพิ่ม (3.4 มิลลิกรัม
Phenylenediamine 5 J - ลิตร 30% H2 O2 ใน 0.1 M บัฟเฟอร์ซิเตรทฟอสเฟตค่า pH 5.0) การ reac-
ก็หยุดหลังจาก 15 นาที 12.5% ​​H2 SO4 และความหนาแน่นของแสง (OD) ถูกกำหนดที่ 492 นาโนเมตร.
การ Incuba- ของผัน IgG ต่อต้านหมูในที่ไม่ IgG เคลือบหลุมของแผ่น microtitration ถูก
นำมาใช้เป็น การควบคุม กราฟมาตรฐานที่ได้รับจากการบ่มความเข้มข้นเป็นที่รู้จักกันของ IgG สุกร
(0.1-2.0 J - g / ml) ในจานเดียวกันและสภาวะ CV ภายในทดสอบ 4% และ CV ระหว่างการทดสอบ
เป็น
16% สำหรับการวิเคราะห์ซีรั่ม

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . การวัด
ทันทีหลังคลอด จำนวนลูกสุกรแห้งด้วยผ้าขนหนูกระดาษ , สายสะดือของพวกเขาถูกยึด ,
และพวกเขาถูกหูและชั่งด้วยเครื่องชั่งดิจิตอล ( 1 กรัมความละเอียด ) หลังจากขั้นตอนเหล่านี้
, พวกเขาถูกวางไว้ในกล่องอุ่นด้วยไฟความร้อนที่พวกเขายังคงอยู่กับ
5 – 10 นาที จากนั้นก็ย้ายไปใกล้เคียงกับนมของแม่สุกร ตัวก็หนักอีก 24 ชั่วโมงหลังจาก
โรงเรือนให้เจ้า - คู่ colostrum บริโภคตามวิธีการที่อธิบายโดย devillers et al .

( 2004 ) ผลผลิตน้ำนมประมาณ 40 และ 44 การทดลองสุกรในระยะ
ใช้เป็นเขื่อนทางชีวภาพ ตามวิธีการที่อธิบายโดย devillers et
อัล ( 2004 ) ช่วงเวลาเฉลี่ยระหว่างการเกิดและจึงตัดสินใจเดินทางไปยังเป็นเจ้า - 3 เป็น 30 นาที
( devillers et al . , 2007 ; quesnel , 2011 )เมื่อลูกสุกรตายภายใน 17 ชั่วโมงหลังคลอด ปริมาณน้ำนมของตน
สามารถประเมิน ( devillers et al . , 2004 ) เป็นช่วงเวลาที่แน่นอนของ
ลูกหมูตายไม่สามารถบันทึกผลผลิตน้ำนมประมาณเท่านั้นในแม่สุกรที่ไม่ได้สูญเสีย
สุกรภายใน 24 ชั่วโมงหลังจากจึงตัดสินใจเดินทางโรงเรือน .
เพื่อประเมินปริมาณของ IgG ในซีรัม ตัวอย่างเลือดจากแม่สุกร ( 10 ml ) ถูกเก็บรวบรวมผ่านลำคอ
การเจาะเลือดหลังโรงเรือน ( 6.04 ± 0.14 H หลังโรงเรือน onset ) เลือดของสุกร (
4 ml ) ที่ได้รับในเวลา 3 จุด : 23.7 ± 0.06 H หลังคลอด ( ก่อนข้าม -
อุปถัมภ์ ) , ที่ 10 และ 20 วัน อายุ เลือดถูกเก็บจากเส้นเลือดดำใหญ่ใช้หลอดสุญญากาศ
( vacutainer นำเข้าแรงงานเซาเปาลู , บราซิล ) มีิกิจกรรม ประมาณหนึ่งชั่วโมง
หลังจากการเก็บตัวอย่างเลือดทั้งหมดที่ระดับ 10 นาทีที่ 1600 × G และตัวอย่างซีรั่มถูก
เก็บไว้ที่ 20 −◦ C จนถึงการวิเคราะห์ .
ลูกหมูถูกชั่งน้ำหนักอีกครั้งที่ 7 , 14 , 21 , 28 และ 42 วันของอายุ ลูกสุกรหย่านมที่ทั้งสิ้น 21
วันของอายุ ลูกหมูตายเป็นบันทึกทุกวัน . ในวันแรกหลังคลอด จึงทั้งสุกร
ได้รับแผ่นเซลโลเฟน ( 4.4 มก. / กก. ของยาเจนตาไมซิน ,โดยเส้นทางอิม ) หาง docking คือ
)
3 วันอายุเมื่อลูกยังได้รับใช้ -
ไอออนบวกของ anticoccidial ( baycox ® , ไบเออร์ , 20 มก. / กก. ของ toltrazurila โดยเส้นทางช่องปาก ) และ
เหล็ก dextran GLU - coheptonate ( gleptoferril ® eurofarma , 200 มิลลิกรัม / ลูกสุกร โดยเส้นทาง IM ) . หนึ่งก่อนหย่านมลูกสุกรได้ทุกวัน

hyopneumoniae ฉีดวัคซีนป้องกันเชื้อไมโครพลาสมาเลือดหมู ,เซอร์โคไวรัสชนิดที่ 2 และ โฮโมฟิลัส parasuis conjugated กับ Streptococcus ซุย .
ปริมาณ IgG ถูกประเมิน โดยเอนไซม์ - ตรงลิงค์ immunosorbent assay ( ELISA )
เก้าสิบหกดี microtitration แผ่นถูกเคลือบด้วย 100 J . . . . ผมต่อแต่เมื่อเซรั่ม
( 1:16900 ) ในบัฟเฟอร์เนต 20 มม. ( pH 9.6 ) โดยบ่มค้างคืนที่ 4 ◦ C
หลังจากนั้นบล็อก - อิงได้ 5% ไม่ใช่วัวไขมันนมแห้งเกลือฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.2 )
( เมามาก ) และจาน incu - ลดเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิ 37 ◦ C จานถูกล้างด้วย pbs
3 ครั้งแล้ว มะรุมมี anti - IgG ) หมู ( Sigma
a7670 ) คือประยุกต์ ( เจือจาง 1:20000 ) และจาน บ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ◦หลังจากล้าง
จานสามครั้งกับพีบีเอสมีโครโมเจน และ Sub - ? เพิ่ม ( 3.4 มิลลิกรัม ฟีนิลีนไดอะมีน
5 J . . . . ผม 30 % H2 O2 ใน 0.1 M phosphate buffer pH 5.0 และซิเทรต ( , ) ที่ให้การ - tion
ก็หยุด หลัง 15 นาที กับ 12.5 % H2 ปา และความหนาแน่นของแสง ( OD ) ตั้งใจที่ 492 นาโนเมตร
incuba - tion ของ IgG anti หมูคู่ไม่เคลือบบ่อ IgG ของ microtitration จาน
ใช้เป็นตัวควบคุมเส้นโค้งมาตรฐานได้โดยการแช่รู้จักปริมาณสุกร IgG
( 0.1 – 2.0 J -- g / ml ) ในจานเดียวกัน และ condi - ยินดีด้วย . ภายในการทดสอบพันธุ์และทดสอบพันธุ์ระหว่าง 4 %

16 ) เป็นเซรั่ม วิเคราะห์