2.3. AR measurement and tissue extr

2.3. AR measurement and tissue extraction
Each coral fragment was placed in a glass bottle (inner volume:
134mL), which contained 100 mL of filtered seawater. The filtered seawater
was originally collected from experimental tanks containing the
same nutrient condition as that in which the coral was cultured (LN or
HN) andwas filtered withmembrane filters (pore size: 0.45 μm).Microscopic
examination confirmed that there were no algae in the filtered
seawater. Triplicate control bottles, which contained only filtered seawater
without corals, were also prepared for each nutrient condition.
After the glass bottles were closed, they were placed in experimental
tanks and were incubated for 4 h (1100 to 1500 h) in the same light
and temperature conditions as those under which the corals had been
cultured. After 4 h, the corals were taken out of the bottles, and 5 mL
of 20% formalin was added to each bottle (final conc. 1% v/v) to fix
microbial activity in the seawater. The bottles were stored under dark
in a refrigerator until analysis of the abundance of zooxanthellae
released from corals.
The corals incubated for AR measurement were then separated into
organic soft tissue and the carbonate skeleton by awater-pikmethod. At
least 50 mL of tissue solution was obtained from each coral fragment
and 5 mL of the solution was fixed with 20% formalin (final conc. 2%
v/v) and stored in a refrigerator until analysis of the abundance of
symbiotic zooxanthellae. The remaining tissue solutionwas centrifuged
at 900 ×g for 5 min to separate zooxanthellae (pellet) from animal tissue
(supernatant). After the supernatant was removed, 5 mL of methanol
was added to the pellet to extract Chl a from zooxanthellae. The
methanol solution was stored at −30 °C in the dark until analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. AR แยกวัดและเนื้อเยื่อแต่ละส่วนปะการังที่อยู่ในขวดแก้ว (ไดรฟ์ข้อมูลภายใน:134 mL), ที่อยู่ 100 mL ของน้ำทะเลกรอง น้ำทะเลกรองได้รวบรวมต้นฉบับจากถังทดลองที่ประกอบด้วยการเงื่อนไขเดียวกันธาตุอาหารที่เป็นที่ที่ปะการังที่อ่าง (LN หรือAndwas HN) กรองตัวกรอง withmembrane (รูขุมขนขนาด: 0.45 μm)ด้วยกล้องจุลทรรศน์ตรวจยืนยันว่า มีสาหร่ายไม่อยู่ในที่กรองน้ำทะเล ควบคุม triplicate ขวด ซึ่งประกอบด้วยเพียงกรองน้ำทะเลโดยแนวปะการัง ถูกพร้อมเงื่อนไขแต่ละธาตุอาหารหลังจากที่ปิดขวดแก้ว พวกเขาถูกวางในทดลองถัง และถูก incubated สำหรับ 4 h (h 1100-1500) แสงเดียวกันและอุณหภูมิที่ซึ่งแนวปะการังที่ได้รับอ่าง หลัง 4 h ปะการังถูกนำออกจากขวด และ 5 mL20% formalin ถูกเพิ่มเข้าไปแต่ละขวด (conc. สุดท้าย 1% v/v) เมื่อต้องการแก้ไขกิจกรรมจุลินทรีย์ในน้ำทะเล ขวดถูกเก็บไว้ภายใต้ความมืดในตู้เย็นจนกว่าจะวิเคราะห์ความอุดมสมบูรณ์ของ zooxanthellaeออกจากแนวปะการังปะการังที่ incubated สำหรับวัด AR ได้แล้วแบ่งออกเป็นเนื้อเยื่ออ่อนอินทรีย์และคาร์บอเนตโครงกระดูก โดย awater pikmethod ที่อย่างน้อย 50 มลของเนื้อเยื่อได้รับจากแต่ละส่วนปะการังและ 5 mL ของการแก้ปัญหาได้ถาวร ด้วย 20% formalin (conc. สุดท้าย 2%v/v) และเก็บไว้ในตู้เย็นจนกว่าจะวิเคราะห์ความอุดมสมบูรณ์symbiotic zooxanthellae Solutionwas เนื้อเยื่อเหลือ centrifugedที่ 900 × g สำหรับ 5 นาทีแยก zooxanthellae (เม็ด) จากเนื้อเยื่อสัตว์(supernatant) หลังจาก supernatant ถูกลบ 5 mL ของเมทานอลถูกเพิ่มเม็ดแยก Chl การจาก zooxanthellae ที่เมทานอลโซลูชั่นถูกเก็บไว้ที่ −30 ° C ในมืดจนถึงการวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 เกี่ยวกับการวัดและเนื้อเยื่อการสกัด
แต่ละส่วนปะการังอยู่ในขวดแก้ว ( หมวด :
134ml ด้านใน ) ซึ่งบรรจุ 100 มิลลิลิตรของน้ำกรอง กรองน้ำทะเล
ถูกเก็บจากถังทดลองที่สภาวะธาตุอาหาร
เหมือนกันที่ปะการังเลี้ยง ( LN หรือ
HN ) ดำเนินการกรองตัวกรอง withmembrane ขนาด 0.45 เมตร กระชับรูขุมขนด้วย
μ )การตรวจสอบยืนยันว่าไม่มีสาหร่ายในกรอง
น้ำทะเล ขวดควบคุมทำสำเนาสามฉบับซึ่งมีเฉพาะกรองน้ำทะเล
ไม่มีปะการังที่ถูกจัดเตรียมไว้สำหรับแต่ละธาตุอาหารเงื่อนไข .
หลังจากขวดแก้วปิดสนิท พวกเขาอยู่ในถัง และทำการทดลอง
4 H ( 1100 1500 H )
แสงเหมือนกันอุณหภูมิภายใต้เงื่อนไขและเป็นผู้ที่ได้รับการเพาะเลี้ยงปะการัง
. หลังจาก 4 H , ปะการังถูกเอาออกจากขวด และ 5 ml
20 % ฟอร์มาลินที่ถูกเพิ่มเข้าไปในแต่ละขวด ค๊อง สุดท้าย 1 % v / v ) เพื่อแก้ไข
กิจกรรมของจุลินทรีย์ในน้ำทะเล ขวดที่ถูกเก็บไว้ในที่มืด
ในตู้เย็นจนกว่าการวิเคราะห์ความอุดมสมบูรณ์ของซูซานแทลลี่

ออกมาจากปะการังปะการังโดยการวัด AR แล้วแยกออกเป็น
อินทรีย์เนื้อเยื่ออ่อนและโครงกระดูก คาร์บอเนต โดย awater pikmethod .
อย่างน้อย 50 มิลลิลิตร สารละลายที่ได้จากแต่ละเศษเนื้อเยื่อปะการัง
และ 5 มิลลิลิตรของสารละลายฟอร์มาลิน ( เข้มข้นคงที่ 20% สุดท้าย 2 %
v / v ) และเก็บในตู้เย็นจนกว่าการวิเคราะห์ความอุดมสมบูรณ์ของ
symbiotic ซูซานเทลลี .ที่เหลืออยู่ที่ระดับเนื้อเยื่อ solutionwas
900 ×กรัมเป็นเวลา 5 นาที เพื่อแยกซูแซนเทลลา ( เม็ด ) จาก
เนื้อเยื่อสัตว์ ( น่าน ) หลังจากนำออก 5 ml ของเมทานอล
คือเพิ่มเม็ดสกัด CHL จากซูซานเทลลี .
สารละลายเมทานอลที่อุณหภูมิ 30 องศา C −ในที่มืดจนกว่าการวิเคราะห์ .