2.3. Alcohol fermentationsSaccharom

2.3. Alcohol fermentations
Saccharomyces cerevisiae (ATCC #24858) and recombinant E. coli
KO11 (ATCC #55124), a derivative of E. coli B (ATCC #11303) that
contains the Zymomonas mobilis ethanol production genes integrated
into the pflB gene (Ohta et al., 1991), were used as ethanol
producers. S. cerevisiae was cultured at 30 C for 18 h in 50 mL
MGYP medium (0.3% malt extract, 1% glucose, 0.3% yeast extract,
and 0.5% peptone) in a 250 mL flask. E. coli KO11 was cultured at
30 C for 14 h in 50 mL of LB (0.3% yeast extract, 1.0% peptone,
and 1.0% NaCl) in a 250 mL flask (Lee et al., 2010). Cell growth
was monitored by measuring the absorbance at 600 nm (OD600)
with an Ultrospec 3000 spectrophotometer (Pharmacia Biotech,
Piscataway, NJ, USA).
For ethanol fermentation of algae hydrolysates, 10% of a S. cerevisiae
or E. coli culture was added to 50 g/L pretreated algal biomass
supplemented with concentrated LB (final concentration of
10 g/L peptone, 5 g/L yeast extract and 10 g/L NaCl). Fermentation
was conducted in 50 mL of liquid volume at 30 C and 150 rpm.
For fermentations in mannitol-containing media, sterile, concentrated
sugar solutions were added to 2 LB medium, and the liquid
volume was adjusted to 90 mL in a 250 mL Erlenmeyer flask.
Ten milliliters of an overnight culture of E. coli KO11 was added,
and fermentation was conducted at 30 C with agitation at
150 rpm.
For simultaneous saccharification and ethanol fermentation,
180 g (dry weight) of the brown alga L. japonica was incubated in
1 L of 0.1 N HCl at 121 C for 15 min. The hydrolysate was cooled
and pH-adjusted to 5.5 and 0.01 g of commercial hydrolytic enzymes
were added per g of dry algae. The mixture was inoculated
with 10% (v/v) of overnight-cultured S. cerevisiae or E. coli KO11
culture grown and incubated at 30 C with shaking at 150 rpm.
For sequential fermentation, the hydrolysate was fermented first
with S. cerevisiae, the culture was centrifuged at 1000g for
10 min and the supernatant was inoculated with 10% (v/v) of
E. coli KO11 culture and incubated at 30 C for 24 h.
2.4. S

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. แอลกอฮอล์หมักแหนมวททช E. coli และ saccharomyces cerevisiae (ATCC #24858)KO11 (ATCC #55124), เป็นอนุพันธ์ของ E. coli B (ATCC #11303) ที่ประกอบด้วย Zymomonas mobilis เอทานอลผลิตยีนรวมเป็นยีน pflB (Ohta et al., 1991), ใช้เป็นเอทานอลผู้ผลิต S. cerevisiae มีอ่างที่ 30 C ใน 18 h ใน 50 mLMGYP กลาง (0.3% มอลต์สกัด กลูโคส 1%, 0.3% ยีสต์ สกัดและ peptone 0.5%) ในหนาว 250 mL KO11 e. coli มีอ่างที่C 30 สำหรับ h 14 ใน 50 mL ของปอนด์ (สารสกัดจากยีสต์ 0.3%, 1.0% peptoneและ 1.0% NaCl) ในหนาว 250 mL (Lee et al., 2010) เจริญเติบโตของเซลล์ถูกตรวจสอบ โดยการวัด absorbance ที่ 600 nm (OD600)ด้วยการ Ultrospec 3000 เครื่องทดสอบกรดด่าง (Pharmacia ชีวภาพปิสกาตาเวย์ NJ สหรัฐอเมริกา)สำหรับสาหร่าย hydrolysates, 10% ของ S. cerevisiae การหมักเอทานอลหรือวัฒนธรรม E. coli ถูกเพิ่มชีวมวล algal 50 g/L pretreatedเสริม ด้วยเข้มข้นปอนด์ (สุดท้ายเข้มข้นpeptone 10 g/L สารสกัดจากยีสต์ 5 g/L และ 10 g/L NaCl) หมักได้ดำเนินการใน 50 mL ของปริมาตรของเหลวที่ 30 C 150 rpmการหมักแหนมใน mannitol ที่ประกอบด้วยเข้มข้นสื่อ ฆ่าเชื้อเพิ่มโซลูชั่นน้ำตาลปานกลาง 2 ปอนด์ และของเหลวไดรฟ์ข้อมูลถูกปรับปรุงไป 90 mL ใน 250 mL Erlenmeyer หนาวMilliliters สิบของวัฒนธรรมเป็นบัตรกำนัลของ E. coli KO11 เพิ่มและหมักได้ที่ 30 C มีอาการกังวลต่อที่150 รอบต่อนาทีSaccharification พร้อมการหมักเอทานอล180 กรัม (น้ำหนักแห้ง) ของ japonica brown alga L. ถูก incubated ในL 1 ของ 0.1 N HCl ที่ 121 C สำหรับ 15 นาที ด้วยการได้ระบายความร้อนด้วยปรับ pH 5.5 และ 0.01 g ของไฮโดรไลติกเอนไซม์ทางการค้ามีเพิ่มต่อกรัมของสาหร่ายแห้ง ส่วนผสมคือ inoculated10% (v/v) ของแอร์พอร์ตโอเวอร์ไนท์อ่าง S. cerevisiae หรือ E. coli KO11วัฒนธรรมโต และ incubated ด้วยการสั่นที่ 150 rpm ที่ 30 Cสำหรับหมักตามลำดับ ด้วยการถูกหมักก่อนมี S. cerevisiae วัฒนธรรมถูก centrifuged ที่ 1000 กรัมสำหรับ10 นาทีและ supernatant ถูก inoculated 10% (v/v) ของE. coli KO11 วัฒนธรรม และ incubated ที่ 30 C ใน 24 ชม2.4. S

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 เครื่องดื่มแอลกอฮอล์หมักแหนม
Saccharomyces cerevisiae (ATCC # 24858) และ recombinant เชื้อ E. coli
KO11 (ATCC # 55124) ที่มาของเชื้อ E. coli B (ATCC # 11303)
ที่มีZymomonas mobilis
ยีนผลิตเอทานอบูรณาการเข้าไปในยีนpflB (Ohta et al, ., 1991)
ถูกนำมาใช้เป็นเอทานอลผลิต S. cerevisiae เป็นเลี้ยงวันที่ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 18 ชั่วโมงใน 50
มลกลางMGYP (สารสกัดจากมอลต์ 0.3% กลูโคส 1% สารสกัดจากยีสต์ 0.3%
และ 0.5% เปปโตน) ในขวด 250 มิลลิลิตร เชื้อ E. coli KO11 เป็นที่เพาะเลี้ยงที่
30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 14 ชั่วโมงใน 50 มิลลิลิตร LB (สารสกัดจากยีสต์ 0.3%, 1.0% เปปโตน,
และ 1.0% NaCl) ในขวดมิลลิลิตร 250 (Lee et al., 2010) เจริญเติบโตของเซลล์ได้รับการตรวจสอบโดยการวัดการดูดกลืนแสงที่ 600 นาโนเมตร (OD600) กับ Ultrospec 3000 spectrophotometer (Pharmacia ไบโอเทค, พิสแคต, นิวเจอร์ซีย์สหรัฐอเมริกา). สำหรับการหมักเอทานอลไฮโดรไลเซสาหร่าย 10% ของเอส cerevisiae หรืออีโคไลเป็นวัฒนธรรม เพิ่มถึง 50 กรัม / ลิตรปรับสภาพชีวมวลสาหร่ายเสริมด้วยความเข้มข้นLB (ความเข้มข้นสุดท้ายของ10 กรัม / ลิตรเปปโตน, 5 กรัม / ลิตรและสารสกัดจากยีสต์ 10 กรัม / ลิตรโซเดียมคลอไรด์) หมักได้ดำเนินการใน 50 มลของปริมาณของเหลวที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสและ 150 รอบต่อนาที. สำหรับการหมักในแมนนิทอลที่มีสื่อการฆ่าเชื้อเข้มข้นแก้ปัญหาน้ำตาลที่ถูกเพิ่มเข้า 2 ขนาดกลาง LB และของเหลวปริมาณการปรับถึง90 มิลลิลิตรใน 250 มิลลิลิตร Erlenmeyer ขวด. สิบมิลลิลิตรวัฒนธรรมในชั่วข้ามคืนของเชื้อ E. coli KO11 เสริมและการหมักได้ดำเนินการวันที่30 C ที่มีการกวนที่150 รอบต่อนาที. สำหรับ saccharification พร้อมกันและการหมักเอทานอล180 กรัม (น้ำหนักแห้ง) จากสาหร่ายสีน้ำตาลลิตร japonica เป็น บ่มใน1 ลิตร 0.1 N HCl ที่ 121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 นาที ไฮโดรไลเย็นและค่า pH ที่ปรับ 5.5 และ 0.01 กรัมของเอนไซม์ย่อยสลายในเชิงพาณิชย์ที่ถูกเพิ่มต่อกรัมของสาหร่ายแห้ง ส่วนผสมที่ถูกเชื้อ10% (v / v) ค้างคืนเลี้ยง S. cerevisiae หรือเชื้อ E. coli KO11 วัฒนธรรมที่ปลูกและบ่มที่ 30 องศาและมีการเขย่าที่ 150 รอบต่อนาที. สำหรับการหมักลำดับไฮโดรไลที่ถูกหมักครั้งแรกกับเอส cerevisiae วัฒนธรรมที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 1000g สำหรับ 10 นาทีและใสได้รับเชื้อด้วย 10% (v / v) ของอี coli วัฒนธรรม KO11 และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชม. 2.4 S