CSFV can cause acute, sub-acute and

CSFV can cause acute, sub-acute and chronic swine disease and poses a considerable
threat to the swine industry worldwide causing severe economic losses. Control of CSF involves either eradication or vaccination, in which eradication is the preferred วิธี of control in
developed countries such as the Europian Union (EU) contributing to a significant amount of losses attributable to the slaughter of infected pigs. Vaccination on the other hand is the major control strategy in developing countries like China. The Hog Cholera Lapinized Virus (HCLV) (also known as the C สายพันธุ์) was developed in the mid-1950s and is widely used in China and many countries (Moorman et al., J Virol. 70:763-770, 1996). Massive vaccination with the
HCLV vaccine makes it difficult to distinguish between wild-type and the HCLV-สายพันธุ์ of CSFV in vaccinated swine herds (Van Oirshot, Vet Microbiol 96:367-384, 2003). Sub-clinical and
asymptomatic infection with CSFV is universal (Moennig et al., Vet. J. 165, 11-20, 2003; Tu, Virus Res. 81, 29-37, 2001) making infections with wild-t e CSFV not easily recognizable by
farmers and veterinarians, and not detectable by general detection assays, such as virus isolation, antigen-capture ELISA, and fluorescent antibody tests.
Various diagnostic assays have been developed. However, they all have limitations. Virus isolation requires 6-12 days for confirmation of results; ELISA isn't very sensitive and often
produces false negative results; real time PCR assays are faster and more sensitive but are
limited by a high-risk of cross contamination and most importantly. None of these assays are
able to distinguish between wild-type and the vaccines สายพันธุ์ of CSFV. Previously, real-time RT-PCR assays for discriminating wild-type CSFV from the "Riems" vaccine-สายพันธุ์ have been established in the EU (Leifer et al., J. Virol. วิธี 158, 114-122, 2009; Leifer et al., J. Virol. วิธี 166, 98-100, 2010; Leifer et al., J. Gen. Virol. 91, 2687-2697, 2010) and an assay for differentiating between wild-type and the "K-LOM' vaccine-สายพันธุ์ CSFV in Korea was
developed (Cho et al., Can J Vet Res 70:226-229, 2006). In China, a two-step real time RT-PCR assay to distinguish wild-t e CSFV from the HCLV-สายพันธุ์ vaccine based on nucleotide
differences at the probe binding site and a one-step real time RT-PCR assay (wt-rRT-PCR) using a minor groove binding (MGB) probe for detection of mutations in wild-types have been
described.
It is unlikely that a universal detection assay could be used in all countries because
different CSFV vaccine สายพันธุ์ have been administered in different countries, e.g., "Riems" in
the EU, "K-LOM in Korea and "HCLV" in China. Therefore, there is a need to develop an assay that is affordable, easy to execute and easy to interpret results to distinguish between wild-type and vaccine-type for Classical Swine Fever.
Infectious Bronchitis (IB) is a disease prevalent in all countries within poultry industry, with the incidence approaching 100% in most locations. It is the most economically important disease. In young chicks, respiratory disease or nephritis lead to mortalities, reduced weight gain and condemnation at processing, whereas in chickens of laying age, the disease is subclinical and results in reduced egg production and aberrant eggs (Ignjatovic et al., Archives of Virology,
2006). IQ outbreaks continue to occur in vaccinated flocks mainly because it is thought to be
caused by different serotypes, subtypes or variant of IBV, that are generated by nucleotide point mutations, insertions, deletions, or recombination of S1 genes.
The causative agent, Infectious Bronchitis Virus (IBV) belongs to the Coronaviridae
family. It is an enveloped positive-sense, single stranded RNA virus, with a genome size of 27.6 kb in length. The first 20 kb encode the viral RNA-dependent RNA polymerase and proteases. The whole genome has at least ten open reading frames (ORF) from 5' to 3' and are as follows: 5'-la-lb-8(8l, S2)-3a,b,c(E)-M-5a,b-N-Poly(A)-3' encoding four structural proteins, ที่รวมถึง the spike glycoprotein (S), the membrane glycoprotein (M), the phosphorylated nucleocapsid protein (N) and the small membrane protein (E) (Mardani et al., Arch Tirol. 155(10):1581-6, 2010).
IBV was first reported in the USA in 1930 and has since been reported in most countries throughout the four continents of America (Johnson and Marquardt, Avian Dis. 19:82-90, 1975), Europe (Capua et al., Zentralbl Veterinarmed B. 41:83-89, 1994; Cavanagh and Davis, Arch
Virol 130:471-476, 1993; Gough et al., Vet Rec. 130:493-494, 1992), Asia (Wang et al., Avian Dis 41:279-282, 1997) and Australia (Ignjatovic and McWaters, J Gen Virol. 72:2915-2922,
1991; Lohr, Avian Dis. 20:478-482, 1976). In Malaysia, little is known about the prevalence of the disease. The first report of IB disease was as early as 1967 where the disease was mild and vaccination unwarranted (Chong et al., Second symposium on Scientific and Technological
Research in Malaysia and Singapore, pp73-83, 1967; Aziz et al., The 8th Veterinary Association Malaysia Scientific Congress, 23-25th August 1996, Ipoh, pp76-78). Variants have been present since at least 1979 (Lohr, Proceedings of the 1st International Symposium on Infectious
Bronchitis, EF Kaleta & U. Heffels — Redmann (Eds), pp 70-75, 1988; de Wit et al. Avian
Pathology. 40(3):223-235, 2011) with reports of a more virulent สายพันธุ์ causing nephrosis-
nephritis syndrome that lead to high mortality was first reported in 1980 (Heng et al., Kajian Veterinar. 12:1-8, 1980; Aziz 1996). Recent publications related to IBD in Malaysia dates back to year 2000, 2004 and 2009 with clinical reports of variant nepropathogenic IBV สายพันธุ์ since 1995 (Maizan, Proceeding 12th FAVA and 14th VAM congress, 28-28 August 2002, pp116; Yap M.L et al. Proceeding VAM Congress 1-4 September. , 2000; Arshad et al. J. Vet. Malaysia. 14 (1&2): 322002; Balkis et al. Proceedings VAM Congress 2004, Zulperi et al. Virus Genes.
38:383-391, 2009).
Worldwide, several different serotypes and genotypes of IBVs have been identified and new variants are still emerging. One of these new variant is QX-like IB. IB-QX has been
circulating and reported in China since 2004 (Liu & Kong, Avian pathology, 33:321-327, 2004). The virus which is identified as QX has been predominantly associated with various forms of renal pathology. Other researchers have also reported similar สายพันธุ์ in China (Liu et al., J of Gen
Virol, 86:719-725, 2005). In 2007, Cuiping et al. (Vet. Microbio., 122:71, 2007) confirmed the data presented by Liu et al. (2005) reporting the isolation of nephropathogenic สายพันธุ์ from
vaccinated and unvaccinated chicken flocks between 2003 and 2005. Similar findings have also been reported in Russia and other parts of Europe (Bochkov et al., Avian Pathology, 35:379-393, 2006; Landman et al., Proceedings of the 14th World Veterinary Poultry Congress, 22-26 August, 2005, Istanbul, Turkey, pp369).
It is unlikely that a universal detection assay could be used in all countries because
different IBV vaccine สายพันธุ์ have been administered in different countries. Therefore, there is a need to develop an assay that is affordable, easy to execute and easy to interpret results to
distinguish between wild-type and vaccine-type for Infectious Bronchitis (IB).
Despite intensive vaccination programs, Newcastle disease virus (NDV) remains a
constant threat to commercial poultry farms worldwide. NDV is a member of the order
Mononegavirales, family Paramyxoviridae and genus Avulavirus. It is an enveloped virus which has a negative-sense, nonsegmented single-stranded RNA genome consisting of 15, 586
nucleotides. Its genome ประกอบรวมด้วย of six genes: nucleoprotein (NP), phosphoprotein (P), matrix protein (M), fusion glycoprotein (F), hemagglutinin-neuraminidase (HN), glycoprotein and large polymerase protein (L). Of the six genes found in NDV, its two membrane proteins, the F protein and the HN protein are most important in determination of its virulence.
The establishment of real-time PCR วิธี in recent years has brought significant
development to molecular diagnostics of various infectious agents and has rapidly cut-down the turn-around-time for disease diagnostics for quick and accurate results for veterinary
practitioners in the field and farmers. Many PCR assays have been described for the Real Time PCR assay for NDV detection and genotype differentiation using several different TaqMan
probes or SYBR green (Wise et al., J. CIM Microbiol, 42:329-338, 2004). Tan et al. (J. Virol วิธี, 160:149-156, 2009) described a SYBR Green I real-time PCR for the detection and differentiation of NDV genotypes, however this assay required different primer pairs for
detecting the different NDV genotypes and relied heavily on the analysis of the melting peaks to differentiate the three genotypes of NDV. Although SYBR Green 1 assay is the most cost
effective and easiest form of real-time PCR to establish compared to other real-time detection formats, however, the major disadvantage is that the dye molecules binds with any double-
stranded DNA that is present in the reaction ของผสม ที่รวมถึง non-specific PCR products or primer-dimers. Therefore, there is room for improvement in the current molecular diagnostic วิธี for rapid and conclusive results of NDV testing.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

CSFV สามารถทำให้สุกรเฉียบพลัน ย่อยเฉียบพลัน และเรื้อรังโรค และก่อให้เป็นจำนวนมากคุกคามอุตสาหกรรมสุกรทั่วโลกก่อให้เกิดการสูญเสียทางเศรษฐกิจอย่างรุนแรง ควบคุมของ CSF เกี่ยวข้องกับการขจัดหรือวัคซีน ซึ่งนั่นเป็นวิธีการควบคุมใน พัฒนาประเทศเช่นในสหภาพยุโรป (EU) สนับสนุนจำนวนขาดทุนรวมฆ่าของสุกรที่ติดเชื้ออย่างมีนัยสำคัญ วัคซีนคงเป็นกลยุทธ์การควบคุมที่สำคัญในประเทศกำลังพัฒนาเช่นจีน การอหิวาตกโรคหมู Lapinized ไวรัส (HCLV) (หรือที่เรียกว่า C สายพันธุ์จ) ได้รับการพัฒนาในมิ และใช้กันอย่างแพร่หลายในประเทศจีนและหลายประเทศ (Moorman และ al., Virol J. 70:763-770, 1996) วัคซีนขนาดใหญ่ด้วยการ วัคซีน HCLV ทำให้ยากที่จะแยกระหว่างชนิดของป่า และ HCLV-สายพันธุ์ของ CSFV ในสุกรที่ฉีด (Van Oirshot, 96:367 Microbiol เรื่องน่ารู้-384, 2003) ย่อยทางคลินิก และ ติดเชื้อที่แสดงอาการกับ CSFV ที่เป็นสากล (Moennig et al. เรื่องน่ารู้ เจ. 165, 11-20, 2003 ทู ไวรัสทรัพยากร 81, 29-37, 2001) การติดเชื้อกับป่า-t e CSFV ไม่รู้จักได้อย่างง่ายดายโดย เกษตรกรและสัตวแพทย์ และไม่สามารถตรวจสอบได้ โดยการตรวจทั่วไป assays เช่นแยกไวรัส ตรวจหาจับ ELISA และทดสอบอิมมูโนฟลูออเรสเซนต์ได้รับการพัฒนา assays วินิจฉัยต่าง ๆ อย่างไรก็ตาม พวกเขาทั้งหมดมีข้อจำกัด แยกไวรัสต้อง 6-12 วันสำหรับการยืนยันผลลัพธ์ ELISA ไม่มีความสำคัญมาก และมักจะ ทำให้เกิดผลลบเท็จ assays เวลาจริง PCR มีความไวมาก และรวดเร็ว แต่ จำกัด โดยอิกของ ข้ามปนเปื้อน และที่สำคัญ Assays เหล่านี้ไม่มี สามารถแยกแยะชนิดของป่าและสายพันธุ์รู้ของ CSFV ก่อนหน้านี้ RT-PCR แบบเรียลไทม์ assays สำหรับรับการจำแนกป่าชนิด CSFV จาก "Riems" วัคซีน-สายพันธุ์ได้ถูกก่อตั้งขึ้นใน EU (Leifer et al., J. Virol วิธี 158, 114-122, 2009 Al. et Leifer, J. Virol วิธี 166, 98-100, 2010 Al. และ Leifer, Virol ทั่วไปเจ 91, 2687-2697, 2010) และการทดสอบสำหรับความแตกต่างระหว่างชนิดของป่าและ " K-ลม ' วัคซีนสายพันธุ์ CSFV ในเกาหลีได้ พัฒนา (Cho et al., 70:226 สามารถ Res เรื่องน่ารู้ของ J-229, 2006) ในประเทศจีน การวิเคราะห์เวลาจริง RT-PCR สองขั้นตอนเพื่อแยกป่า-t e CSFV จากวัคซีน HCLV สายพันธุ์ตามนิวคลีโอไทด์ ความแตกต่างในเว็บไซต์รวมโพรบและเป็นขั้นตอนเดียวจริงเวลา RT-PCR assay (wt rRT PCR) ใช้โพรบผูก (MGB) เป็นร่องเล็กน้อยสำหรับตรวจหาการกลายพันธุ์ในป่าชนิดได้ อธิบายก็ไม่น่าว่า วิเคราะห์ตรวจสากลสามารถใช้ในประเทศเนื่องจากสายพันธุ์วัคซีน CSFV แตกต่างกันมีการบริหารงานในประเทศต่าง ๆ เช่น "Riems" ในยุโรป "K-ลมในเกาหลีและ"HCLV"ในประเทศจีน ดังนั้น ไม่จำเป็นต้องพัฒนาทดสอบที่ราคาไม่แพง ง่ายต่อการปฏิบัติ และง่ายต่อการแปลผลเพื่อแยกระหว่างชนิดของป่าและชนิดของวัคซีนสำหรับไข้สุกรคลาสสิกInfectious Bronchitis (IB) is a disease prevalent in all countries within poultry industry, with the incidence approaching 100% in most locations. It is the most economically important disease. In young chicks, respiratory disease or nephritis lead to mortalities, reduced weight gain and condemnation at processing, whereas in chickens of laying age, the disease is subclinical and results in reduced egg production and aberrant eggs (Ignjatovic et al., Archives of Virology, 2006). IQ outbreaks continue to occur in vaccinated flocks mainly because it is thought to be caused by different serotypes, subtypes or variant of IBV, that are generated by nucleotide point mutations, insertions, deletions, or recombination of S1 genes.The causative agent, Infectious Bronchitis Virus (IBV) belongs to the Coronaviridaefamily. It is an enveloped positive-sense, single stranded RNA virus, with a genome size of 27.6 kb in length. The first 20 kb encode the viral RNA-dependent RNA polymerase and proteases. The whole genome has at least ten open reading frames (ORF) from 5' to 3' and are as follows: 5'-la-lb-8(8l, S2)-3a,b,c(E)-M-5a,b-N-Poly(A)-3' encoding four structural proteins, ที่รวมถึง the spike glycoprotein (S), the membrane glycoprotein (M), the phosphorylated nucleocapsid protein (N) and the small membrane protein (E) (Mardani et al., Arch Tirol. 155(10):1581-6, 2010).IBV was first reported in the USA in 1930 and has since been reported in most countries throughout the four continents of America (Johnson and Marquardt, Avian Dis. 19:82-90, 1975), Europe (Capua et al., Zentralbl Veterinarmed B. 41:83-89, 1994; Cavanagh and Davis, Arch Virol 130:471-476, 1993; Gough et al., Vet Rec. 130:493-494, 1992), Asia (Wang et al., Avian Dis 41:279-282, 1997) and Australia (Ignjatovic and McWaters, J Gen Virol. 72:2915-2922, 1991; Lohr, Avian Dis. 20:478-482, 1976). In Malaysia, little is known about the prevalence of the disease. The first report of IB disease was as early as 1967 where the disease was mild and vaccination unwarranted (Chong et al., Second symposium on Scientific and Technological Research in Malaysia and Singapore, pp73-83, 1967; Aziz et al., The 8th Veterinary Association Malaysia Scientific Congress, 23-25th August 1996, Ipoh, pp76-78). Variants have been present since at least 1979 (Lohr, Proceedings of the 1st International Symposium on Infectious Bronchitis, EF Kaleta & U. Heffels — Redmann (Eds), pp 70-75, 1988; de Wit et al. Avian Pathology. 40(3):223-235, 2011) with reports of a more virulent สายพันธุ์ causing nephrosis-nephritis syndrome that lead to high mortality was first reported in 1980 (Heng et al., Kajian Veterinar. 12:1-8, 1980; Aziz 1996). Recent publications related to IBD in Malaysia dates back to year 2000, 2004 and 2009 with clinical reports of variant nepropathogenic IBV สายพันธุ์ since 1995 (Maizan, Proceeding 12th FAVA and 14th VAM congress, 28-28 August 2002, pp116; Yap M.L et al. Proceeding VAM Congress 1-4 September. , 2000; Arshad et al. J. Vet. Malaysia. 14 (1&2): 322002; Balkis et al. Proceedings VAM Congress 2004, Zulperi et al. Virus Genes. 38:383-391, 2009).
Worldwide, several different serotypes and genotypes of IBVs have been identified and new variants are still emerging. One of these new variant is QX-like IB. IB-QX has been
circulating and reported in China since 2004 (Liu & Kong, Avian pathology, 33:321-327, 2004). The virus which is identified as QX has been predominantly associated with various forms of renal pathology. Other researchers have also reported similar สายพันธุ์ in China (Liu et al., J of Gen
Virol, 86:719-725, 2005). In 2007, Cuiping et al. (Vet. Microbio., 122:71, 2007) confirmed the data presented by Liu et al. (2005) reporting the isolation of nephropathogenic สายพันธุ์ from
vaccinated and unvaccinated chicken flocks between 2003 and 2005. Similar findings have also been reported in Russia and other parts of Europe (Bochkov et al., Avian Pathology, 35:379-393, 2006; Landman et al., Proceedings of the 14th World Veterinary Poultry Congress, 22-26 August, 2005, Istanbul, Turkey, pp369).
It is unlikely that a universal detection assay could be used in all countries because
different IBV vaccine สายพันธุ์ have been administered in different countries. Therefore, there is a need to develop an assay that is affordable, easy to execute and easy to interpret results to
distinguish between wild-type and vaccine-type for Infectious Bronchitis (IB).
Despite intensive vaccination programs, Newcastle disease virus (NDV) remains a
constant threat to commercial poultry farms worldwide. NDV is a member of the order
Mononegavirales, family Paramyxoviridae and genus Avulavirus. It is an enveloped virus which has a negative-sense, nonsegmented single-stranded RNA genome consisting of 15, 586
nucleotides. Its genome ประกอบรวมด้วย of six genes: nucleoprotein (NP), phosphoprotein (P), matrix protein (M), fusion glycoprotein (F), hemagglutinin-neuraminidase (HN), glycoprotein and large polymerase protein (L). Of the six genes found in NDV, its two membrane proteins, the F protein and the HN protein are most important in determination of its virulence.
The establishment of real-time PCR วิธี in recent years has brought significant
development to molecular diagnostics of various infectious agents and has rapidly cut-down the turn-around-time for disease diagnostics for quick and accurate results for veterinary
practitioners in the field and farmers. Many PCR assays have been described for the Real Time PCR assay for NDV detection and genotype differentiation using several different TaqMan
probes or SYBR green (Wise et al., J. CIM Microbiol, 42:329-338, 2004). Tan et al. (J. Virol วิธี, 160:149-156, 2009) described a SYBR Green I real-time PCR for the detection and differentiation of NDV genotypes, however this assay required different primer pairs for
detecting the different NDV genotypes and relied heavily on the analysis of the melting peaks to differentiate the three genotypes of NDV. Although SYBR Green 1 assay is the most cost
effective and easiest form of real-time PCR to establish compared to other real-time detection formats, however, the major disadvantage is that the dye molecules binds with any double-
stranded DNA that is present in the reaction ของผสม ที่รวมถึง non-specific PCR products or primer-dimers. Therefore, there is room for improvement in the current molecular diagnostic วิธี for rapid and conclusive results of NDV testing.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

CSFV เฉียบพลันอาจทำให้เกิดการย่อยเฉียบพลันและเรื้อรังโรคสุกรและโพสท่ามาก
เป็นภัยคุกคามต่ออุตสาหกรรมการเลี้ยงสุกรทั่วโลกก่อให้เกิดความสูญเสียทางเศรษฐกิจอย่างรุนแรง การควบคุมของน้ำไขสันหลังเกี่ยวข้องกับการอย่างใดอย่างหนึ่งหรือกำจัดการฉีดวัคซีนซึ่งในการกำจัดเป็นที่ต้องการของวิธีการควบคุมใน
ประเทศที่พัฒนาแล้วเช่นสหภาพ Europian (EU) ที่เอื้อต่อจำนวนเงินที่สำคัญของการสูญเสียที่เกี่ยวข้องกับการฆ่าหมูที่ติดเชื้อ การฉีดวัคซีนในมืออื่น ๆ ที่เป็นกลยุทธ์การควบคุมที่สำคัญในประเทศกำลังพัฒนาเช่นจีน หมูอหิวาตกโรค Lapinized ไวรัส (HCLV) (หรือที่เรียกว่าสายพันธุ์ C) ได้รับการพัฒนาในช่วงกลางทศวรรษ 1950 และมีการใช้กันอย่างแพร่หลายในประเทศจีนและหลายประเทศ (Moorman et al, เจ Virol 70:.. 763-770, 1996) . ขนาดใหญ่ที่มีการฉีดวัคซีน
วัคซีน HCLV ทำให้ยากที่จะแยกแยะความแตกต่างระหว่างป่าชนิดและสายพันธุ์ HCLV- ของ CSFV ในฝูงสุกรฉีดวัคซีน (Van Oirshot, สัตวแพทย์ Microbiol 96: 367-384 2003) ตำบลทางคลินิกและ
การติดเชื้อที่ไม่มีอาการกับ CSFV เป็นสากล (Moennig, et al, สัตวแพทย์เจ 165, 11-20, 2003... เฉิงตู, ไวรัส Res 81, 29-37, 2001) การติดเชื้อป่าทีอี CSFV ไม่ จำได้ง่ายโดย
เกษตรกรและสัตวแพทย์และไม่สามารถตรวจพบโดยการตรวจการตรวจสอบทั่วไปเช่นการแยกเชื้อไวรัส, ELISA แอนติเจนจับภาพและการทดสอบแอนติบอดีเรืองแสง.
การตรวจวินิจฉัยต่าง ๆ ได้รับการพัฒนา แต่พวกเขาทั้งหมดมีข้อ จำกัด การแยกเชื้อไวรัสต้อง 6-12 วันเพื่อยืนยันผล; วิธี ELISA ไม่ได้มีความสำคัญมากและมักจะ
ก่อให้เกิดผลลัพธ์เชิงลบเท็จ เวลาการตรวจ PCR จริงได้เร็วขึ้นและมีความสำคัญมากขึ้น แต่จะ
จำกัด โดยมีความเสี่ยงสูงของการปนเปื้อนและที่สำคัญที่สุด ไม่มีการตรวจเหล่านี้มีความ
สามารถที่จะแยกแยะความแตกต่างระหว่างป่าชนิดและวัคซีนสายพันธุ์ของ CSFV ก่อนหน้านี้เวลาจริงการตรวจ RT-PCR สำหรับแบ่งแยก CSFV ป่าชนิดจาก "Riems" vaccine- สายพันธุ์ที่ได้รับการจัดตั้งขึ้นในสหภาพยุโรป (Leifer et al, เจ Virol วิธี 158, 114-122 2009;.. Leifer et al, เจ Virol วิธี 166, 98-100 2010;.... Leifer et al, เจพล Virol 91, 2687-2697, 2010) และการทดสอบสำหรับความแตกต่างระหว่างป่าชนิดและ "K- LOM 'vaccine- สายพันธุ์ CSFV ในเกาหลีได้รับการ
พัฒนา (โช, et al, สามารถ Vet J Res 70:. 226-229, 2006). ในประเทศจีนสองขั้นตอนเวลาจริงการทดสอบ RT-PCR ที่จะแยกแยะป่าทีอี CSFV จาก HCLV- สายพันธุ์วัคซีนขึ้นอยู่กับเบื่อหน่าย
ความแตกต่างที่มีผลผูกพันสอบสวนเว็บไซต์และขั้นตอนเดียวเวลาจริงการทดสอบ RT-PCR (WT-RRT-PCR) โดยใช้ร่องเล็ก ๆ น้อย ๆ ที่มีผลผูกพัน (MGB) สอบสวนในการตรวจหาการกลายพันธุ์ใน wild- ชนิดที่ได้รับการ
อธิบาย.
มันไม่น่าที่การทดสอบการตรวจสอบสากลสามารถนำมาใช้ในทุกประเทศเพราะ
วัคซีน CSFV สายพันธุ์ที่แตกต่างกันได้รับยาในประเทศที่แตกต่างกันเช่น "Riems" ใน
สหภาพยุโรป "K-LOM ในเกาหลีและ" HCLV "ในประเทศจีน ดังนั้นจึงมีความจำเป็นในการพัฒนาการทดสอบที่มีราคาไม่แพงและง่ายต่อการดำเนินการและง่ายต่อการตีความผลที่จะแยกแยะระหว่างป่าชนิดและวัคซีนชนิดสำหรับไข้สุกรคลาสสิก.
ติดเชื้อหลอดลมอักเสบ (IB) เป็นโรคที่แพร่หลายในทุกประเทศที่อยู่ใน อุตสาหกรรมสัตว์ปีกที่มีอุบัติการณ์ใกล้ 100% ในสถานที่มากที่สุด มันเป็นโรคที่สำคัญที่สุดทางเศรษฐกิจ ในลูกไก่หนุ่มโรคทางเดินหายใจโรคไตอักเสบหรือนำไปสู่การตายการเพิ่มของน้ำหนักที่ลดลงและการลงโทษที่ประมวลผลในขณะที่ไก่ของการวางอายุโรคที่ไม่แสดงอาการและผลในการลดการผลิตไข่และไข่ผิดปกติ (Ignjatovic et al., คลังเก็บของไวรัสวิทยา
2006) การระบาดของโรคไอคิวยังคงเกิดขึ้นในฝูงวัคซีนส่วนใหญ่เป็นเพราะมันเป็นความคิดที่จะ
เกิดจากสายพันธุ์ที่แตกต่างกันชนิดย่อยหรือแตกต่างจากหลอดลมอักเสบติดต่อที่ถูกสร้างขึ้นจากการกลายพันธุ์จุดเบื่อหน่ายแทรกลบหรือรวมตัวกันอีกของยีน S1.
สาเหตุติดเชื้อหลอดลมอักเสบ ไวรัส (IBV) เป็น Coronaviridae
ครอบครัว มันเป็นห่อหุ้มความรู้สึกในเชิงบวกไวรัส RNA ควั่นเดียวที่มีขนาดจีโนมของ 27.6 กิโลยาว ครั้งแรก 20 กิโลไบต์เข้ารหัส rna โพลิเมอร์ขึ้นอยู่กับอาร์เอ็นเอไวรัสและโปรตีเอส ทั้งจีโนมมีอย่างน้อยสิบเฟรมอ่านเปิด (ORF) จาก 5 '3' และมีรายละเอียดดังนี้ 5'-la-ปอนด์-8 (8l, S2) -3a b, c (E) -M-5A , BN-Poly () -3 'สี่เข้ารหัสโปรตีนโครงสร้างที่รวมถึงเข็มไกลโคโปรตีน (S), ไกลโคโปรตีนเมมเบรน (M), นิวคลีโอโปรตีน phosphorylated (N) และโปรตีนเมมเบรนขนาดเล็ก (E) (Mardani et . อัลประตูชัย ทิโรล 155 (10):. 1581-6, 2010).
IBV มีรายงานครั้งแรกในประเทศสหรัฐอเมริกาในปี 1930 และได้รับการรายงานในประเทศส่วนใหญ่ทั่วทั้งสี่ทวีปอเมริกา (จอห์นสันและ Marquardt, นก Dis 19: 82-90, 1975), ยุโรป (ปัว, et al, Zentralbl Veterinarmed บี 41:. 83-89, 1994; หนากเดวิส, Arch
Virol 130: 471-476 1993; et al, กอฟ, สัตวแพทย์ Rec. 130: 493-494, 1992), เอเชีย (วัง, et al, นก Dis 41: 279-282, 1997) และออสเตรเลีย (Ignjatovic และ McWaters เจพล Virol 72: 2915-2922..
1991; Lohr, นก Dis 20: 478-482, 1976) ในประเทศมาเลเซียเป็นที่รู้จักกันเล็ก ๆ น้อย ๆ เกี่ยวกับความชุกของการเกิดโรค รายงานครั้งแรกของโรค IB ก็เป็นช่วงต้น 1967 ที่เป็นโรคเป็นรุนแรงและการฉีดวัคซีนเหตุผล (ปากช่อง, et al, การประชุมสัมมนาที่สองในวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี.
การวิจัยในประเทศมาเลเซียและสิงคโปร์ pp73-83 1967. อาซิซ, et al, 8 สมาคมสัตวแพทย์มาเลเซียวิทยาศาสตร์รัฐสภา 23-25th สิงหาคม 1996, อีโปห์, pp76-78) สายพันธุ์ที่ได้รับในปัจจุบันอย่างน้อยตั้งแต่ 1979 (Lohr, การดำเนินการของการประชุมวิชาการนานาชาติครั้งที่ 1 เมื่อวันที่ติดเชื้อ
หลอดลมอักเสบ, EF Kaleta & U. Heffels - Redmann (บรรณาธิการ), หน้า 70-75, 1988; เดวิทย์ et al, นก.
พยาธิวิทยา 40 (. 3): 223-235 2011) กับรายงานของความรุนแรงมากขึ้นสายพันธุ์ที่ก่อให้เกิด nephrosis-
โรคไตอักเสบที่นำไปสู่การตายสูงมีรายงานครั้งแรกในปี 1980 (เฮง, et al, Kajian Veterinar 12:.. 1-8, 1980; Aziz 1996) สิ่งพิมพ์ล่าสุดที่เกี่ยวข้องกับ IBD ในประเทศมาเลเซียวันที่กลับไปในปี 2000 ปี 2004 และปี 2009 โดยมีรายงานทางคลินิกของตัวแปร nepropathogenic หลอดลมอักเสบติดต่อสายพันธุ์ตั้งแต่ปี 1995 (Maizan, ดำเนิน FAVA 12 และ 14 รัฐสภาฟันธง, 28-28 สิงหาคม 2002 pp116; Yap ML et al, . รายงานฟันธงสภาคองเกรส 1-4 กันยายน 2000; ชาด et al, เจสัตวแพทย์มาเลเซีย 14 (1 & 2):. 322002; Balkis et al, การดำเนินการมีเพศสัมพันธ์ฟันธงปี 2004 Zulperi et al, ยีนไวรัส......
38: 383-391 2009).
ทั่วโลกสายพันธุ์ที่แตกต่างกันและยีนของ IBVs ได้รับการระบุสายพันธุ์ใหม่ที่ยังคงเกิดขึ้นใหม่ หนึ่งในตัวแปรใหม่เหล่านี้เป็น QX เหมือน IB IB-QX ได้รับการ
หมุนเวียนและมีการรายงานในประเทศจีนตั้งแต่ปี 2004 (หลิวและฮ่องกงพยาธิวิทยานก, 33: 321-327, 2004) ไวรัสซึ่งถูกระบุว่าเป็น QX ได้รับการเชื่อมโยงส่วนใหญ่มีรูปแบบต่างๆของพยาธิสภาพการทำงานของไต รายงานวิจัยอื่น ๆ ยังมีสายพันธุ์ที่คล้ายกันในประเทศจีน (Liu et al, เจของพล.
Virol 86: 719-725 2005719-725 2005) ในปี 2007 Cuiping et al, (Vet Microbio 122:.. 71, 2007) ได้รับการยืนยันข้อมูลที่นำเสนอโดย Liu et al, (2005) รายงานการแยก nephropathogenic สายพันธุ์จาก
ฝูงไก่ฉีดวัคซีนและวัคซีนระหว่างปี 2003 และ 2005 ผลการวิจัยที่คล้ายกันได้รับรายงานในรัสเซียและส่วนอื่น ๆ ของยุโรป (Bochkov, et al, นกพยาธิวิทยา 35:. 379-393 2006 .. แลนด์, et al, การดำเนินการของโลก 14 สัตวแพทย์สัตว์ปีกรัฐสภา 22-26 สิงหาคม 2005, อิสตันบูล, ตุรกี, pp369)
มันไม่น่าที่การทดสอบการตรวจสอบสากลสามารถนำมาใช้ในทุกประเทศเพราะ
ที่แตกต่างกันวัคซีนหลอดลมอักเสบติดต่อสายพันธุ์มี รับยาในประเทศที่แตกต่างกัน ดังนั้นจึงมีความจำเป็นในการพัฒนาการทดสอบที่มีราคาไม่แพงและง่ายต่อการดำเนินการและง่ายต่อการตีความผลที่จะ
แยกแยะความแตกต่างระหว่างป่าชนิดและวัคซีนชนิดสำหรับติดเชื้อหลอดลมอักเสบ (IB).
แม้จะมีโปรแกรมการฉีดวัคซีนเข้มข้นไวรัสโรคนิวคาสเซิ (NDV) ยังคงเป็น
ภัยคุกคามอย่างต่อเนื่องเพื่อฟาร์มสัตว์ปีกเชิงพาณิชย์ทั่วโลก NDV เป็นสมาชิกของการสั่งซื้อ
Mononegavirales ครอบครัว Paramyxoviridae และสกุล Avulavirus มันเป็นไวรัส enveloped ซึ่งมีความรู้สึกเชิงลบจีโนมอาร์เอ็นเอสายเดี่ยวสาย nonsegmented ประกอบด้วย 15 586
นิวคลีโอ จีโนมของมันประกอบรวมด้วยหกยีน: นิวคลีโอ (NP) phosphoprotein (P) โปรตีนเมทริกซ์ (M), ฟิวชั่นไกลโคโปรตีน (F) hemagglutinin-neuraminidase (HN), ไกลโคโปรตีนและโปรตีนโพลิเมอร์ขนาดใหญ่ (L) ในหกของยีนที่พบใน NDV สองโปรตีนของโปรตีน F และโปรตีน HN มีความสำคัญมากที่สุดในการกำหนดความรุนแรงของมัน.
สถานประกอบการของเรียลไทม์ PCR วิธีในปีที่ผ่านมาได้นำอย่างมีนัยสำคัญ
ในการพัฒนาเพื่อการวินิจฉัยระดับโมเลกุลของการติดเชื้อต่างๆ ตัวแทนและมีอย่างรวดเร็วลดลงเปิดรอบเวลาสำหรับการวินิจฉัยโรคให้ได้ผลลัพธ์ที่รวดเร็วและถูกต้องสำหรับสัตวแพทย์
ผู้ปฏิบัติงานในภาคสนามและเกษตรกร การตรวจ PCR หลายคนได้รับการอธิบายสำหรับการทดสอบแบบ Real Time PCR ในการตรวจหา NDV และความแตกต่างโดยใช้ยีน TaqMan แตกต่างกันหลาย
ฟิวส์หรือ SYBR สีเขียว (ฉลาด et al, เจ CIM Microbiol, 42:. 329-338, 2004) Tan et al, (เจ Virol วิธี 160: 149-156 2009) อธิบายสีเขียว SYBR ฉัน PCR เรียลไทม์สำหรับการตรวจสอบและความแตกต่างของยีน NDV แต่การทดสอบนี้ต้องคู่ไพรเมอร์ที่แตกต่างกันสำหรับ
การตรวจสอบยีน NDV แตกต่างกันและอาศัยอย่างหนัก การวิเคราะห์ของยอดเขาละลายความแตกต่างของยีนสาม NDV แม้ว่า SYBR สีเขียว 1 ทดสอบเป็นค่าใช้จ่ายมากที่สุด
ที่มีประสิทธิภาพและรูปแบบที่ง่ายที่สุดของ PCR เรียลไทม์ที่จะสร้างเมื่อเทียบกับเวลาจริงการตรวจสอบรูปแบบอื่น ๆ แต่ข้อเสียที่สำคัญคือการที่โมเลกุลของสีย้อมผูกกับดับเบิล
ควั่นดีเอ็นเอที่มีอยู่ใน ปฏิกิริยาของผสมที่รวมถึงผลิตภัณฑ์ PCR ที่ไม่เฉพาะเจาะจงหรือไพรเมอร์ dimers- ดังนั้นจึงมีห้องพักสำหรับการปรับปรุงในปัจจุบันวิธีการวินิจฉัยระดับโมเลกุลเพื่อให้ได้ผลลัพธ์ที่รวดเร็วและข้อสรุปของการทดสอบ NDV

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

และสามารถก่อให้เกิดเฉียบพลันย่อยเฉียบพลันและเรื้อรังและสุกรโรคคุกคามมาก
เพื่ออุตสาหกรรมสุกรทั่วโลก ก่อให้เกิดความสูญเสียทางเศรษฐกิจอย่างรุนแรง ควบคุมการทำอย่างใดอย่างหนึ่งหรือเกี่ยวข้องกับการฉีดวัคซีน ซึ่งเป็นที่ต้องการวิธีการควบคุม
ประเทศพัฒนาแล้ว เช่น สหภาพยุโรป ( อียู ) ราคาต่อปริมาณความสูญเสียจากการฆ่าของสุกรที่ติดเชื้อ วัคซีนในมืออื่น ๆที่เป็นกลยุทธ์การควบคุมที่สำคัญในการพัฒนาประเทศ เช่น จีนหมูอหิวาตกโรค lapinized ไวรัส ( hclv ) ( ยังเรียกว่า C สายพันธุ์ ) ที่ถูกพัฒนาขึ้นใน - และใช้กันอย่างแพร่หลายในจีนและประเทศมากมาย ( มุร์เมิน et al . , J virol . 70:763-770 , 1996 ) ใหญ่ด้วย
hclv วัคซีนวัคซีนทำให้ยากที่จะแยกแยะระหว่างผลิตและ hclv - สายพันธุ์ของรูปแบบในฝูงสุกรที่ฉีดวัคซีน ( รถตู้ oirshot vet 96 : ธนิดา เหรียญทอง B Sc367-384 , 2003 ) ย่อยทางคลินิกและการติดเชื้อโรคและเป็นสากลด้วย
( moennig et al . , สัตวแพทย์ J . 165 , 11-20 , 2003 ; tu , ไวรัส res . 81 , 29-37 , 2001 ) การทำเชื้อกับ wild-t E และไม่ค่อยรู้จัก โดย
เกษตรกรและสัตวแพทย์ และไม่สามารถใช้ตรวจจับทั่วไป เช่น การแยกเชื้อไวรัสแอนติเจน แอนติบอดีจับ ELISA และการทดสอบ
เรืองแสงตรวจวินิจฉัยต่างๆได้รับการพัฒนา แต่พวกเขาก็มีข้อจำกัด การแยกเชื้อไวรัสต้อง 6-12 วัน เพื่อยืนยันผล ; ELISA ไม่อ่อนไหวง่าย และมักจะสร้างผลลัพธ์เชิงลบเท็จ
; เวลา PCR จริง ) จะได้เร็วขึ้น และอ่อนไหว แต่จำกัดด้วย
เสี่ยงการปนเปื้อนข้ามและที่สำคัญที่สุด . ไม่มีวิธีการเหล่านี้
สามารถแยกแยะระหว่างผลิตและสายพันธุ์วัคซีนของรูปแบบ . ก่อนหน้านี้วิธี RT-PCR แบบเรียลไทม์สำหรับจำแนกกลุ่มของรูปแบบจาก " riems " วัคซีน - สายพันธุ์ได้รับการก่อตั้งขึ้นในสหภาพยุโรป ( เลเฟอร์ et al . , J . virol . วิธี 158 114-122 , 2009 ; เลเฟอร์ et al . , J . virol . วิธี 166 23 , 2010 ; เลเฟอร์ et al . , J . ( virol . 2687-2697 91 ,2553 ) และใช้สำหรับความแตกต่างระหว่างยาและวัคซีน " k-lom ' สายพันธุ์และในเกาหลี
พัฒนา ( โช et al . , J สัตวแพทย์ RES 70:226-229 , 2006 ) ในประเทศจีนมี 2 วิธีวิธีที่จะแยกแยะเวลาจริงและ wild-t E จาก hclv - วัคซีนสายพันธุ์จากนิวคลีโอไทด์
ความแตกต่างในการตรวจสอบเว็บไซต์และ Real-Time RT-PCR วิเคราะห์เวลาจริง ( WT RRT PCR ) โดยใช้ร่องเล็กมัด ( mgb probe ) การตรวจหาชนิดการกลายพันธุ์ในป่าได้

อธิบาย มันไม่น่าที่ใช้ตรวจจับสากลสามารถใช้ในประเทศทั้งหมด เพราะสายพันธุ์ได้รับวัคซีน
ที่แตกต่างกันและวิธีการประเทศที่แตกต่างกันเช่น " riems
" ในสหภาพยุโรป" k-lom ในเกาหลี และ " hclv " ในประเทศจีน เพราะฉะนั้น จึงต้องพัฒนาวิธีที่มีราคาไม่แพง , ง่ายต่อการใช้ และง่ายต่อการตีความผลลัพธ์ที่จะแยกแยะระหว่างยา และวัคซีนชนิดสุกรคลาสสิกไข้
โรคหลอดลมอักเสบติดต่อ ( IB ) เป็นโรคที่แพร่หลายในประเทศทั้งหมดภายในอุตสาหกรรมสัตว์ปีกที่มีอุบัติการณ์เข้าใกล้ 100 % ในสถานที่มากที่สุดมันคือโรคที่สำคัญทางเศรษฐกิจ ลูกไก่เล็ก โรคระบบทางเดินหายใจ หรืออักเสบนำไปสู่ mortalities , ลดน้ำหนักและการคัดค้านในการประมวลผล ในขณะที่ไก่วาง อายุ โรคที่เป็นซับคลินิเคิลและผลในการลดการผลิตไข่และไข่ผิดปกติ ( ignjatovic et al . , ข้อมูลไวรัสวิทยา
, 2006 )